ORIGINAL_ARTICLE
تهیه ی آزمایشگاهی سرم هایپر ایمن علیه ویروس تب سه روزه گاو جدا شده در ایران
با توجه به کاربردهای متعدد آنتی بادی پلی کلونال در زمینه های تحقیقاتی و بالینی، ابداع روشهای تهیه ی سرم هایپرایمن علیه عوامل بیماریزا از اهمیت بسیار برخوردار است. در تحقیق انجام شده با سعی بر تولید آنتی بادی علیه ویروس تب سه روزه ی گاو، روشی برای تولید سرم هایپرایمن ابداع گردید. بدین منظور ویروس کامل با عیار 50TCID 106.7 در سه دوز و با در نظر گرفتن فواصل زمانی صفر، یک و چهار هفته، به روش وریدی و بدون استفاده از یاور(Adjuvant) به خرگوش تزریق شد. دستیابی به سرم هایپرایمن با عیار بالا نتیجه ی مطلوب این تحقیق است، بطوریکه میانگین آنتی بادیهای خنثی کننده علیه ویروس1625 برآورد گردید. که در مقایسه با مطالعات گذشته، کارایی بالای خود را در تولید آنتی بادی علیه عامل ویروسی نشان می دهد. سرم هایپرایمن بدست آمده از این مطالعه قطعاً بعنوان یک ماده بیولوژیک در زمینه های تحقیقاتی و در صورت لزوم تجاری، مفید و راهبردی خواهد بود. همچنین به عنوان یک روش در تولید سرمهای هایپرایمن علیه ویروسهای دیگر میتواند مورد توجه محققین و صاحب نظران قرار گیرد.
https://animal.ijbio.ir/article_1418_5be5651d688a23311d581c66f6a6e68e.pdf
2019-08-23
79
84
آنتیبادی پلیکلونال
خرگوش
رابدوویروس
شکوفه
الماسی
shokoofeh.almasi@yahoo.com
1
بخش تشخیص بیماری های ویروسی دام، موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
مهران
بخشش
m.bakhshesh@rvsri.ac.ir
2
بخش تشخیص بیماری های ویروسی دام، موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
1- Attyat, M. K., and Wafaa, R., 2015."Efficacy of canine parvovirus hyperimmune serum prepared in horses for treatment of canine parvo and feline panleucopenia infections." Behna veterinary medical journal, 28(2), PP: 34‐39
1
2- Bakhshesh, M, and Abdollahi, D., 2015. "Bovine Ephemeral fever in Iran: Diagnosis, isolation and molecular characterization." Journal of arthropod-borne diseases 9(2), 195 p.
2
3- Cooper, H. M., and Paterson, Y., 2009. "Production of polyclonal antisera." Current protocols in neuroscience, 5.5. 1-5.5. 10.
3
4- Cybinski, D., and H., Zakrzewski, 1983. "The isolation and preliminary characterization of a rhabdovirus in Australia related to bovine ephemeral fever virus." Veterinary Microbiology 8(3), PP: 221-235.
4
5- Hanly, W. C., Artwohl, J. E., and Bennett, B. T., 1995. "Review of polyclonal antibody production procedures in mammals and poultry." ILAR journal 37(3), PP: 93-118.
5
6- Hsieh, Y. C., Wang, S. Y., Lee, Y., Chen, S. H., Mak, P. O., and Chu, C. Y., 2006. "DNA sequence analysis of glycoprotein G gene of bovine ephemeral fever virus and development of a double oil emulsion vaccine against bovine ephemeral fever." Journal of veterinary medical science 68(6), PP: 543-548.
6
7- Hussain, I., Rasool, M., and Mahmood, M., 2004. "Production of hyperimmune serum against infectious bursal disease virus in rabbits." Pak. Vet. J 24, PP: 179-183.
7
8- Islam, M., Parvin, M., Akhter, J., Islam, M., Siddique, M., and M.Rashid 2014. "Clinical Evaluation of Hyperimmune Serum for the Treatment of Newcastle Disease in Indigenous Layer Birds." Progressive Agriculture 24(1-2), PP: 79-84.
8
9- Kato, T., Aizawa, M., Takayoshi, K., Kokuba, T., Yanase, T., Shirafuji, H., Tsuda T., and Yamakawa M., 2009. "Phylogenetic relationships of the G gene sequence of bovine ephemeral fever virus isolated in Japan, Taiwan and Australia." Veterinary microbiology 137(3), PP: 217-223.
9
10- Leenaars, M., and Hendriksen C. F., 2005. "Critical steps in the production of polyclonal and monoclonal antibodies: evaluation and recommendations." Ilar Journal 46(3), PP: 269-279.
10
11- Protocol-Rabbits, P.A.P. 2007. Polyclonal Antibody production Protocol-Rabbit Florida State University. www.research.fsu.edu/media/ 1851/antibody-production_polyclonal.pdf.
11
12- Reed, L. J., and Muench, H., 1938. "A SIMPLE METHOD OF ESTIMATING FIFTY PER CENT ENDPOINTS." American journal of epidemiology 27(3), PP: 493-497.
12
13- Samiullah, M., Rizvi, F., Anjum A., and Shah M., 2006. "Raising hyperimmune serum against Avian Paramyxovirus (APMV-1) and Pigeon Paramyxovirus (PPMV-1) in rabbits and their cross reactivity." Pakistan Journal of Biological Sciences 9(11), PP: 2184-2186.
13
14- Siegrist, C. A., 2012. Vaccine immunology, section1, Chapter 2 in Vaccines, 6th edition; Edited by Plotkin,S., W,Orenstein., P, Offit. Saunders Elsevier, Philadelphia, USA, PP: 17-37.
14
15- Webster, R., 1965. "The immune response to influenza virus: I. Effect of the route and schedule of vaccination on the time course of the immune response, as measured by three serological methods." Immunology 9(6), 501 p.
15
16- Yazdani, F., Bakhshesh, M., Esmaelizad, M., Sadigh, Z.A., 2017. "Expression of G1-epitope of bovine ephemeral fever virus in E. coli: A novel candidate to develop ELISA kit". Veterinary Research Forum 8 (3): 209-213
16
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی سطح هورمون های استروئیدی و تکوین تخمک های ماهی ماده ی بالغ گورامی سه خال Trichogaster trichopterusدر مواجهه با عصاره الکلی گیاه پنج انگشت (Vitex agnus castus) و فلوکسیتین
کاهش قدرت باروری از دیرباز جزو مشکلات هر دو جنس نر وماده بوده است. پنج انگشت گیاهی است از تیره شاه پسند که در طب سنتی به عنوان کاهنده مشکلات قاعدگی مورد استفاده قرار می گرفت. فلوکستین دارویی ضد افسردگی از خانواده ی داروهای مهارکننده ی انتخابی باز جذب سروتونین (SSRIs) می باشد. هدف از این مطالعه بررسی اثر عصاره الکلی گیاه پنج انگشت و داروی فلوکستین بر سطح هورمونهای استروییدی و بافت تخمدان در ماهی ماده بالغ گورامی سه خال بود. بدین منظور تعداد 120قطعه ماهی ماده بالغ گورامی سه خال با میانگین وزنی (4-3) گرم در 10 گروه به گروههای کنترل1 (دست نخورده)،کنترل2 (تزریق با اتانول) و تیمار های دریافت کننده دوزهای mg/kg 10.20.30.50 از عصاره الکلی میوه گیاه پنج انگشت و mg/kg 5/7 ،5 ،3، 1 از داروی فلوکستین تقسیم شدند. کلیه تجویزها در 10 نوبت و در 3 تکرار، به صورت یکروز درمیان در طول مدت 20روز و به صورت تزریقی درون عضله انجام گرفت. پس از بیهوش نمودن ماهیان، بافت تخمدان و سطح هورمونهای استروییدی بررسی شدند. نتایج آماری سطح هورمون های استروییدی در میان گروههای کنترل و تیمار، اختلاف معناداری را نشان داد (0.05> P). همچنین نتایج، اثر مهاری عصاره گیاه پنج انگشت و فلوکستین را بر بلوغ تخمک از خود نشان دادند. بررسی یافته های حاصل از این پژوهش نشان داد که عصاره گیاه پنج انگشت و فلوکستین با افزایش دوز، سطح هورمونهای جنسی در ماهی ماده ی بالغ گورامی سه خال را کاهش دادند.
https://animal.ijbio.ir/article_1417_4aff963fce9275b23814b26af6956976.pdf
2019-08-23
85
95
ماهی گورامی سه خال
گیاه پنج انگشت
فلوکستین
هورمونهای استروئیدی
تخمدان
معصومه
بطحائی
bathaee.mas@gmail.com
1
گروه علوم پایه، دانشکده داروسازی و علوم دارویی، علوم پزشکی تهران، ،دانشگاه آزاد اسلامی، تهران،ایران
AUTHOR
طاهره
ناجی
tnaji2002@gmail.com
2
گروه علوم پایه، دانشکده داروسازی و علوم دارویی، علوم پزشکی تهران، ،دانشگاه آزاد اسلامی، تهران،ایران
LEAD_AUTHOR
همایون
حسین زاده صحافی
h_hosseinzadeh@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، تهران، ایران، صندوق پستی: 141556116
AUTHOR
1- آب پیکر، ز.، لهراسبی، پ.، و منصفی، م. ا.، 1394. مقایسه عصاره آبی بذر وبرگ شوید(Anethum graveolens L) بر تغییرات هیستورمورفولوژیک رحم و تخمدان موش صحرایی، مجله پژوهشهای جانوری، دوره 28، شماره2، صفحات 124-116.
1
2-آزاد بخت، م.، بها الدینی، ا.، و شوریده ضیابری، س. م.، 1384. بررسی تأثیر عصاره فلاونوئیدی میوه و برگ گیاه پنجانگشت بر تغییرات میزان سرمی هورمون پرولاکتین در موشهای صحرایی ماده، فصلنامه گیاهان دارویی، دوره 4، شماره 16، صفحه57.
2
3-اخوان، س.، زندوکیلی، ف.، عرب، م.، و کریمی، ح.، 1390. مقایسه اثر درمانی فلوکستین، سیتالوپرام، استروژن و پروژسترون و دارونما در بهبود گرگرفتگی در زنان پری منوپاز، مجله علوم پزشکی دانشگاه کردستان، دوره16، شماره3، صفحات 31-38.
3
4- باقری زیاری، ص.، ناجی، ط.، و حسینزاده صحافی، ه.، 1394. اثرات LHRH-A2،17 بتا استرادیول و عصارهی سرشاخهی هوایی مرزنجوش بر القا باروری در ماهی گورامی سه خال، مجله نشریه توسعهی آبزی پروری، سال 9، شماره 3، صفحات 59-69.
4
5- پیرسلوارانی، م.، شیروی، ع.، و حیدری نصرآبادی، م.، 1390. بررسی اثر عصاره آبی گیاه رازیانه و پنجانگشت بر محور HPG و اسپرماتوژنز در موش سوری نر نژاد NMRI، مجله زیستشناسی جانوری، دوره4، شماره 1، صفحات 7-18.
5
6- حسین زاده صحافی، ه.، 1380. بیولوژی تولیدمثل ماهی با تأکید برماهیان ایران، انتشارات معاونت توسعه آبزیپروری، اداره کل ترویج مؤسسه نشرجهاد وابسته به دانشگاه تهران، صفحه 272.
6
7- رمضانی، م.، نصری، س.، و بهادران، ح.، 2008. اثر عصاره توتال میوه گیاه پنجانگشت بر اسپرماتوژنز موش نژاد بالب سی ارمغان دانش، دوره13، شماره 3 ، صفحات 35-44 .
7
8-فلاحتکار، ب.، رعنای اخوان، س.، طلوعی گیلانی، م. ح.، و مجازی امیری، ب.، 1393. اثر ایمپلنت هورمون 17-بتا استرادیول در مرحله پیش زرده سازی، مجله پژوهشهای جانوری، دوره27، شماره2، صفحات 239-250.
8
9-نجاتی، س. ا.، 2016. اثر عصاره الکلی گیاه پنجانگشت و ویتامین E بر میزان سرمی آنزیمهای کبدی، گلوکز، پروفایل لیپیدی و انسولین در موشهای صحرایی ماده بالغ، مجله زیستشناسی جانوری، دوره 9، شماره 2، صفحات 94-87.
9
10-نصری، س.، عریان، ش.، حائری روحانی، س. ع.، امین، غ.، و تقی زاده، م.، 1384. تأثیر عصاره میوه گیاه پنجانگشت و تداخل آن با بروموکریپتین بر میزان هورمون لوتئینی و تستوسترون در موش سوری نر، مجله پزشکی هرمزگان، دوره 9، شماره 2، صفحات 113- 118.
10
11- Asdadi, A., Hamdouch, A., Oukacha, A., Moutaj, R., Gharby, S., Harhar, H., El Hadek, M., Chebli, B., and Hassani, L. I., 2015. Study on chemical analysis, antioxidant and in vitro antifungal activities of essential oil from wild Vitex agnus-castus L., seeds growing in area of argan tree of Morocco against clinical strains of Candida responsible for nosocomial infections. Journal of Medical Mycology, 25(4), PP: 118-127.
11
12- Atmaca, M., Kumru, S., and Tezcan, E., 2003. Fluoxetine versus Vitex agnus castus extract in the treatment of premenstrual dysphoric disorder. Human Psychopharmacology: Clinical and Experimental, 18(3), PP: 191-195.
12
13- Chhabra, G. S., and Kulkarni, K. S., 2014. Evaluation of anti-inflammatory activity of Vitex agnus castus leaves. Quantitative analysis of flavonoids as possible active constituents. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, 3(1), PP: 183-189.
13
14- Crime, L. W., and Glebe, B. D., 1990. Reproduction In: Methods for Fish Biology edit, Schreck and MoyleAmerican Fisheries Society Publication, PP: 529-55.
14
15- Degani, G., Jakson, K., and Marmelstein, G., 1995 .The effect of LHRH analogue on sex steroid profiles in female Trichogaster trichopterus(Anabantidae, Pallas). Journal of aquaculture in the tropics, 10, PP: 297-307.
15
16- Dorelle, L. S., Da Cuña, R. H., Vázquez, G. R., Höcht, C., Shimizu, A., and Genovese, G., Nostro, F. L., 2017. The SSRI fluoxetine exhibits mild effects on the reproductive axis in the cichlid fish Cichlasoma dimerus (Teleostei, Cichliformes). Chemosphere, 171, PP: 370-378.
16
17- Lister, A., Regan, C., Van Zwol, J., and Van Der Kraak, G., 2009. Inhibition of egg production in zebrafish by fluoxetine and municipal effluents: a mechanistic evaluation. Aquatic toxicology, 95(4), PP: 320-329.
17
18-Lee, W. K., and Yang, S. W., 2002. Relationship between ovarian development and serum levels of gonadal steroid hormones, and induction of oocyte maturation and ovulation in the cultured female Korean spotted sea bass Lateolabrax maculatus (Jeom-nong-eo). Aquaculture, 207(1), PP: 169-183.
18
19- Lenhardt, M., Finn, R. N., Cakic, P., Kolarevic, J., Krpocetkovic, J., Radovic, I., and Fyhn, H. J., 2005. Analysis of the post-vitellogenic oocytes of three species of Danubian Acipenseridae. Belgian journal of zoology, 135(2), 205p.
19
20- Malaivijitnond, S., Kiatthaipipat, P., Cherdshewasart, W., Watanabe, G., and Taya, K., 2004. Different effects of Pueraria mirifica, a herb containing phytoestrogens, on LH and FSH secretion in gonad ectomized female and male rats. Journal of pharmacological sciences, 96(4), PP: 428-35.
20
21- Mennigen, J. A., Lado, W. E., Zamora, J. M., Duarte-Gutermna, P., Langlois, V. S., Metcalfe, C. D., Chang, J. P., Moon, T. W., and Trudeau, V. L., 2010. Waterborne fluoxetine disrupts the reproductive axis in sexually mature male goldfish, Carassius auratus. Aquatic Toxicology 100, PP: 354-64.
21
22-Mennigen, J. A., Zamora, J. M., Chang, J. P., and Trudeau, V. L., 2017. Endocrine disrupting effects of waterborne fluoxetine exposure on the reproductive axis of female goldfish, Carassius auratus. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology and Pharmacology, 202, PP: 70-78.
22
23- Naji, T., Ghafouri, S., and Sahafi, H. H., 2014. The Histological Effects of Cucurbita pepo, Silybum marianum, Linum usitatissmum, Vitex agnus_castus 17β estradiol on ovarian tissue in three Spot Gorami (Trichogaster trichopterus). Bull. Env. Pharmacol. Life Sci, 3, PP: 120-127.
23
24- Ortiz-Delgado, J. B., Porcelloni, S., Fossi, C., and Sarasquete, C., 2008. Histochemical characterisation of oocytes of the swordfish Xiphias gladius. Scientia Marina, 72(3), PP: 549-64.
24
25- Piwowarska, J., Chimiak, A., Matsumoto, H., Dziklińska, A., Radziwoń-Zaleska, M., Szelenberger, W., and Pachecka, J., 2012. Serum cortisol concentration in patients with major depression after treatment with fluoxetine. Psychiatry research 198(3), PP: 407-11.
25
26-Prilepskaya, V. N., Ledina, A. V., Tagiyeva, A. V., and Revazova, F. S., 2006. Vitex agnus castus: successful treatment of moderate to severe premenstrual syndrome. Maturitas, 55, PP: 55-63.
26
27- Raap, D. K., Evans, S., Garcia, F., Li, Q., Muma, N. A., Wolf, W. A., Battaglia, G., and Van De Kar, L. D., 1999. Daily injections of fluoxetine induce dose-dependent desensitization of hypothalamic 5-HT1A receptors: reductions in neuroendocrine responses to 8-OH-DPAT and in levels of Gz and Gi proteins. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics, 288(1), PP: 98-106.
27
28- Rafieian-Kopaei, M., and Movahedi, M., 2017. Systematic Review of Premenstrual, Postmenstrual and Infertility Disorders of Vitex Agnus Castus. Electronic physician. 9(1), 3685 p.
28
29- Sattari, A., Mirzargar, S. S., Abrishamifar, A., Lourakzadegan, R., Bahonar, A., Mousavi, H. E., and Niasari, A., 2009. Comparison of electroanesthesia with chemical anesthesia (MS222 and Clove Oil) in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) using plasma cortisol and glucose responses as physiological stress indicators. Asian Journal of Animal and Veterinary Advance, 4, PP: 306-313.
29
30- Sosic-Jurjevic, B., Ajdzanovic, V., Filipovic, B., Trifunovic, S., Jaric, I., Ristic, N., and Milosevic, V., 2016. Functional morphology of pituitary-thyroid and-adrenocortical axes in middle-aged male rats treated with Vitex agnus castus essential oil. Acta histochemical, 118(7), PP: 736-45.
30
31-Tandon, V, and Gupta, R., 2004. Histomorphological changes induced by Vitex negundo in albino rats. Indian journal of pharmacology, 36(3), 176 p.
31
32- Uphouse, L., Hensler, J. G., Sarkar, J., and Grossie, B., 2006. Fluoxetine disrupts food intake and estrous cyclicity in Fischer female rats. Brain research, 1072(1), PP: 79-90.
32
33- Wallace, R. A., 1985. Vitellogenesis and oocyte growth in nonmammalian vertebrates. In Oogenesis,Springer US, PP: 127-177.
33
34- Webb, M. A., Allert, J. A., Kappenman, K. M., Marcos, J., Feist, G. W., Schreck, C. B., and Shackleton, C. H., 2007. Identification of plasma glucocorticoids in pallid sturgeon in response to stress. General and Comparative Endocrinology, 154(1), PP: 98-104.
34
35- Webster, D. E., Lu, J., Chen, S. N., Farnsworth, N. R., and Wang, Z. J., 2006. Activation of the μ-opiate receptor by Vitex agnus-castus methanol extracts: Implication for its use in PMS. Journal of ethnopharmacology, 106(2), PP: 216-221.
35
ORIGINAL_ARTICLE
اثر اسانس نعناع بر کاهش استرس در زمان حمل و نقل ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio)
مواد بیهوشکننده در آبزیپروری عمدتاً برای راحتی دستکاری و به حداقل رساندن استرس و جراحات فیزیکی ماهی طی فرایندهای مختلف ضروری است. هدف از این مطالعه ارزیابی اثرات اسانس نعناع بر کاهش استرس کپور معمولی با وزن 2/0± 5/1 گرم در زمان حمل و نقل بود. ماهیان در معرض غلظتهای مختلف اسانس نعناع (0 (بعنوان شاهد)، 10، 20 و 30 میکرولیتر در لیتر) قرار گرفتند. سطوح کورتیزول، گلوکز، پروتئین کل، آلبومین و ایمونوگلوبولین یک ساعت بعد از حمل و نقل اندازهگیری شد. نتایج این مطالعه نشان داد که گروه شاهد به طور معنی داری بالاترین سطوح کورتیزول و گلوکز و پایینترین سطوح پروتئین کل و ایمونوگلوبولین را در مقایسه با سایر تیمارها دارد. همچنین تفاوت معنیداری بین مقادیر آلبومین در تیمارهای آزمایشی وجود نداشت (P>0.05). نتایج این مطالعه نشان داد که کاربرد اسانس نعناع در سطح 10 میکرولیتر در لیتر در حمل و نقل ماهی کپور معمولی میتواند استرس ماهیان را کاهش دهد.
https://animal.ijbio.ir/article_1419_2d6531fd12a947b3ae39db279dfb8a5e.pdf
2019-08-23
96
102
کپور معمولی
استرس
بیهوشی
نعناع
حمل و نقل
معصومه
چهاربرجی
roghi_safari@yahoo.com
1
دانش آموخته کارشناسی ارشد دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیغی گرگان
AUTHOR
محمدرضا
ایمانپور
imanpoor@gau.ac.ir
2
هیات علمی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
رقیه
صفری
fisheriessafari@yahoo.com
3
هیات علمی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
LEAD_AUTHOR
علی
جافر
jafar55@yahoo.com
4
هیات علمی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
1- پیغان، ر.، خواجه، غ.، نداف، ه.، و لرکی، س.، 1392. بررسی تأثیر بیهوشی با پروپوفول بر برخی فاکتورهای بیوشیمیایی سرم خون ماهی کپور علفخوار (Ctenopharyn godoniddella). نشریه دامپزشکی، شماره 100، صفحات 22-16.
1
2- تجار، س.، خدادادی، م.، و جواهری، م.، 1395. مقایسه اثرات 2-فنوکسی اتانول، عصاره گل میخک و PI222 بهعنوان بیهوشی بر میزان گلوکز و هورمون کورتیزول پلاسمای خون در ماهی کپور نقرهای، نشریه توسعه آبزیپروری، سال 10، شماره 1، صفحات 23-11.
2
3- جهانبخشی، ع.، هدایتی، س. ع.، و جوادی موسوی، م.، 1393. تأثیر ماده 2-فنوکسی اتانول بهعنوان ماده بیهوشکننده بر شاخصهای خونی ماهی کلمه (Rutilus rutilus caspicus)، مجله پژوهشهای جانوری، جلد 27، شماره 3، صفحات 348-337.
3
4- راهداری، ع.، خسروانی زاده، ع.، دهمرده، ح.، قرایی، ا.، و میردارهریجانی، ج.، 1394. اثرات بیهوشکننده و تغییرات بیوشیمیایی اسانس نعناع در ماهی سفیدک سیستان، تغذیه و بیوشیمیایی، سال 2، شماره 3، صفحات 34-23.
4
5- روحی، ز.، ایمانپور، م. ر.، و جوادی موسوی، م.، 1394. اثر امولسیون نعناع (کاروون) و متیلسالیسیلات بر بیهوشی ماهی سفید (Rutilus frisii kutum)، مجله پژوهشهای جانوری، جلد 28، شماره 4، صفحات 456-450.
5
6- روحی، ز.، ایمانپور، م. ر.، محمدی، ح.، و محمدی، م.، 1395. اثرات میخک و امولسیون اسانس نعناع و متیلسالیسیلات بر بیهوشی و گلوکز خون ماهی قزلآلای رنگینکمان، مجله پژوهشهای جانوری، جلد 29، شماره 2، صفحات 194-186.
6
7- سلطانی، م.، امید بیگی، ر.، رضوانی، س.، مهرابی، م.، و چیتساز، ح.، 1380. مطالعه اثرات هوشبری اسانس و عصاره گل میخک در ماهی قزلآلای رنگینکمان تحت برخی شرایط کیفی آب، مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، دوره 56، شماره 4، صفحات 89-85.
7
8- سلطانی، م.، ظریفمنش، ط.، و ذریهزهرا، س. ج.، 1391. مطالعه تأثیر اسانس آویشن شیرازی (Zataria multiflora) بر میزان سیستم عامل مکمل و لیزوزیم خون ماهی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss)، مجله علمی شیلات ایران، سال 21، شماره 4، صفحات 13-22.
8
9- شکوری، م.، و ابدالی، س.، 1396. بررسی اثر سمیت سرب بر برخی از پارامترهای بیوشیمیایی خون بچه ماهی فیتوفاگ پرورشی، مجله پژوهش علوم و فنون دریایی، سال 12، شماره 1، صفحات 12-1.
9
10- صفری، ر.، و روحی، ز.، 1395. کاربرد داروهای بیهوشکننده آبزیان در ماهیان زینتی، آبزیان زینتی، سال 3، شماره 2، صفحات 37-31.
10
11- کیهانی، س. ح.، حسینیفرد، م.، و قاسمنژاد بصرا، ح.، 1392. بررسی تأثیر عصاره آبی، متانولی، اتانولی و اسانس گیاه لرک (Pterocarya fraxinifolia) بهعنوان یک ماده بیهوشکننده بر روی ماهی کپور معمولی، فصلنامه علوم تکثیر و آبزیپروری، سال 1، پیششماره 2، صفحات 78-71.
11
12- محمدی، م.، علیشاهی، م.، و آرمون، ا.، 1395. تأثیر عصاره دانه گیاه اسفرزه بر فاکتورهای ایمنی غیراختصاصی بچه ماهی قزلآلای رنگینکمان، نشریه دامپزشکی در پژوهش و سازندگی، شماره 111، صفحات 105-97.
12
13- مرتضویزاده، س. ع.، پیغان، ر.، یونسزاده فشالمی، م.، و شریفیان، م.، 1391. غلظت مناسب داروی بیهوشی پروپوفول در ماهی بنی (Barbus sharperyi). مجله علمی شیلات ایران، سال 21، شماره 2، صفحات 142-133.
13
14- هاشمی، م.، سجادی، م.، ساعدی، م.، و وصالی، ا.، 1391. تأثیر استفاده از زئولیت و اسانس میخک بر بازماندگی و کاهش استرس در زمان حملونقل ماهی قزلآلای رنگینکمان، علوم و فنون شیلات، دوره 1، شماره 1، صفحات 75-63.
14
15- هاشمی، م.، سجادی، م.، کامرانی، ا.، و امدادی، ب.، 1391. تأثیر استفاده از زئولیت و اسانس گل میخک در زمان حملونقل ماهی قزلآلای رنگینکمان بر روی بازماندگی و فاکتورهای کیفی آب، مجله بهرهبرداری و پرورش آبزیان، جلد 1، شماره 2، صفحات 112-97.
15
16- یگانه، س.، و ملکی، پ.، 1392. مقایسه اثر بیهوشکنندگی عصاره سنبلالطیب (Valeriana officinalis)، بادرنجبویه (Melissa officinalis) و مریمگلی (Salvia officinalis) بر روی بچهماهی کپور معمولی. نشریه بهرهبرداری و پرورش آبزیان، جلد 2، شماره 2، صفحات 77-65.
16
17- Adhama, K., Khairallaa, A., Abu- Shabanaa, M.,Abdel- Maguida N. and Abdel- Moneim, A. 1997. Environmental stress in lake maryut and physiological response of Tilapia zilli. Journal of Environmental Science and Health, 32: 2585- 2598.
17
18- Barton, B. C., 2002. Stress in fishes: A diversity of responses with particular reference to changes in circulating corticosteroids. Integrative and Comparative Biology, 42, PP: 517–525.
18
19- Boyer, S. E., and White, J. S., Stier, A. C., and Osenberg, C. W., 2009. Effects of the fish anesthetic, clove oil (eugenol), on coral health and growth. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 369, PP: 53-57.
19
20- Brick, M. E., and Cech, J. J., 2002. Metabolic responses of juvenile striped bass to exercise and handling stress with various recovery environments. Transactions of the American Fisheries Society, 131(5), PP: 855-864.
20
21- Carmichael, G. J., 1984. Long distance truck transport of intensively reared largemouth bass. The Progressive Fish-Culturist, 46(2), PP: 111-115.
21
22- Gatica, M. C., Monti, G. E., Krowles, T. G., Warriss, P. D., and Gallo, C. B., 2010. Effects ofcommercial live transportation and preslaughter handling of Atlantic salmon onblood constituents. Archivos the MedicinaVeterinaria, 42, PP: 73-78.
22
23- Gomułka, P., Wlasow, T., Szczepkowski, M., Misiewicz, L., and Ziomek, E., 2014. The effect of propofolanaesthesia on haematological and biochemical blood profile of European whitefish. Turkish Journal of Fish Aquatic Sciences, 14, PP: 331-337.
23
24- Gressler, L. T., Riffel, A. P. K., Parodi, T. V., Saccol, E. M. H., Koakoski, G., Costa, S. T., Pavanato, M. A., Heinzmann, B. M., Caron, B., Schmidt, D., Llesuy, S. F., Barcellos, L. J. G., and Baldisserotto, B., 2012. Silver catfish (Rhamdiaquelen) immersion anesthesia with essential oil of Aloysiatriphylla (L’Hérit) Britton or tricainemethanesulfonate: effect on stress response and antioxidant status. Aquaculture Research, 45, PP: 1061-1072.
24
25- Grutter, A. S., and Pankhurst, N. W., 2000. The effects of capture, handling, confinement and ectoparasite load on plasma levels of cortisol, glucose and lactate in the coral reef fish (Hemigymnusmelapterus). Journal of Fish Biology, 57(2), PP: 391-401
25
26- Jeney, G., Galeotti, M., Volpatti, D., Geny, Z., and Anderson, D., P., 1997. Prevention of stress inrainbow trout (Oncorhunchusmikiss) fed diets containing different doses of glucan. Aquaculture, 154, PP: 1-15.
26
27- Kavitha, C., Malarvizhi, A., Kumaran, S. S., and Ramesh, M., 2010. Toxicological effects of arsenate exposure on hematological, biochemical and liver transaminases activity in an Indian major carp (Catlacatla). Food and Chemical Toxicology, 48, PP: 2848-2854.
27
28- Kumar, S., Sahu, N. P., Pal, A. K., Choudhury, D., Yengkokpam, S., and Mukherjee, S. C., 2005. Effect of dietary carbohydrate on haematology,respiratory burst activity and histologicalchanges in (Labeorohita) juveniles. Fish andShellfish Immunology, 19, PP: 331–344.
28
29- Parodi, T. V., Cunha, M. A., Becker, A. G., Zeppenfeld, C. C., Martins, D. I., Koakoski, G., Barcellos, L. G., Heinzmann, B. M., and Baldisserotto, B., 2014. Anesthetic activity of the essential oil of Aloysiatriphylla and effectiveness in reducing stress during transport of albino and gray strains of silver catfish (Rhamdiaquelen). Fish Physiology and Biochemistry, 40(2), PP: 323-334.
29
30- Pascual, P., Pedrajas, J. R., Toribio, F., Lopez-Barea, J., and Peinado, J., 2003. Effect of food deprivation on oxidative stress biomarkers in fish (Sparusaurata). Chemico-Biological Interactions, 145, PP: 191-199.
30
31- Roohi, Z., and Imanpoor, M. R., 2015. The efficacy of the oils of spearmint and methyl salicylate as new anesthetics and their effect on glucose levels in common carp juveniles. Aquaculture, 437, PP: 327-332.
31
32- Small, B. C., 2003. Anesthetic efficacy of metomidate and comparison of plasma cortisol responses to tricainemethanesulfonate, quinaldine and clove oil anesthetized channel catfish (Ictaluruspunctatus). Aquaculture, 218, PP: 177-185.
32
33- Sndeddon, L. U., 2012. Clinical anesthesia and analgesia in fish. Journal of Exotic Pet Medicine, 21, PP: 32-43.
33
34- Velisek, J., Wlasow, T., Gomulka, P., Svobodova, Z., Novotny, L., and Ziomek, E., 2006. Effects of clove oil an aesthesia on European catfish (Silurusglanis). ActaVeterinaria Brno, 75, PP: 99-106.
34
35- Wagner, E., Arndt, R., and Hilton, B., 2002. Physiological stress responses, egg survival and sperm motility for rainbow trout broodstock anesthetizes with clove oil, tricainemethanesulfonate or carbon dioxide. Aquaculture, 211, PP: 353- 366.
35
36- Zahl, I. H., Samuelsen, O., and Kiessling, A., 2012. Anaesthesia of farmed fish: implication for welfare. Fish Physiology and Biochemistry, 38, PP: 201-218.
36
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی فعالیت ضد التهابی و آنتی اکسیدانی آب تهی شده از دوتریوم و اسانس نعنا بر روی آسیب ریوی ناشی از CLP
سپسیس علت عمده مرگ و میر بیماران در بخش مراقبت های ویژه است. با وجود درمان های حمایتی جدید و بکارگیری آنتی بیوتیک های قوی، سپسیس همچنان از جمله عوامل خطرزا در زندگی مبتلایان می باشد. لذا هدف از این مطالعه، بررسی تأثیر آب تهی شده از دوتریوم (DDW) و اسانس نعنا روی رت های سپتیکی القا شده با مدل CLP :Cecal Ligation and) Puncture) میباشد. ازاینرو، رت ها به 7 گروه :کنترل منفی (Laparotomy)، CLP ، گروههای تیمار با DDW (15 و 30 ppm) و همراه با اسانس نعنا mg/kg b.w)100) و کنترل مثبت (ایندومتاسین) تقسیم شدند. 24 ساعت پس از جراحی پارامترهای دخیل در آسیب اکسیداتیو و بیان ژن COX-2 در بافت ریه اندازهگیری شد. نتایج این تحقیق نشان میدهد سپسیس موجب کاهش FRAP و GSH و افزایش میزان LP ، MPO، PGE2 و بیان ژن COX-2 میگردد، ولی بر روی آنزیم GST اثری ندارد. تیمار حیوانات با DDW به تنهایی و همزمان با اسانس نعنا به اندازه ایندومتاسین، در تعدیل سطح این پارامترها مؤثر بوده است، بطوریکه سبب افزایش میزان FRAP و GSH و کاهش میزانLP ، MPO، PGE2 و بیان ژن COX- 2شده است. همچنین مطالعات پاتولوژی نشان میدهد که سپسیس منجر به ایجاد آسیبهایی در بافت ریه شده که این آسیبها در اثر تیمار با DDW و اسانس نعنا کاهش یافتهاند. بنابراین سپسیس موجب آسیب اکسیداتیو بافت ریه شده و استفاده از این ترکیبات با تأثیر بر روی پارامترهای استرس اکسیداتیو و آنتیاکسیدانی میتواند در جلوگیری و بهبود این آسیبها مؤثر باشد.
https://animal.ijbio.ir/article_1423_c0e7f445c60e32e6982c8bbfbd1abbdf.pdf
2019-08-23
103
116
سپسیس
اسانس نعنا
آب تهی شده از دوتریوم
فعالیت ضدالتهابی
استرس اکسیداتیو
آزاده
رسولی
a.rasouli_57@yahoo.com
1
دانشجوی دکتری بیوشیمی ، دانشگاه پیام نور واحد تهران شرق ، تهران ، ایران
AUTHOR
فائزه
فاطمی
ffatemi@aeoi.org.ir
2
پژوهشکده مواد و سوخت هسته ای، پژوهشگاه علوم و فنون هسته ای، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
محمدی ملایری
dr.malayeri@yahoo.com
3
استادیار گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد گرمسار، گرمسار، ایران
AUTHOR
رضا
حاجی حسینی
r.hajihosseini@shargh.tpnu.ac.ir
4
استاد دانشگاه پیام نور، گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، تهران، ایران
AUTHOR
اتوسا
وزیری
a_vaziri@pnu.ac.ir
5
استادیار دانشگاه پیام نور، گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، تهران، ایران
AUTHOR
زهرا
موسوی
zhrs.mousavi@gmail.com
6
کارشناس ارشد فیزیولوژی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد قم، قم، ایران
AUTHOR
ماریا
فروتن راد
m_froutanrad@yahoo.com
7
دانشجوی ارشد بیوشیمی، دانشگاه پیام نور واحد تهران شرق، تهران، ایران
AUTHOR
سمانه
اوتادی
samaneh600tadi@gmail.com
8
دانشجوی ارشد بیوشیمی، دانشگاه پیام نور واحد تهران شرق، تهران، ایران
AUTHOR
1. دادخواه، ا.، فاطمی، ف.، محمدی ملایری، م. ر.، رسولی، آ.، کاروین آشتیانی، م. ح.، موسوی، ز.، و ناییج ص.، 1397. تأثیر اسانس نعنا بر روی استرس اکسیداتیو و بیان ژن COX-2 در پیشگیری از سپسیس، مجله پژوهشهای سلولی و مولکولی. جلد 31، شماره 4، صفحه 567-581.
1
2. دادخواه، الف.، خلج، ق.، فاطمی، ف.، دینی، س.، ناییج، ص.، و فدایی منفرد، م.، 1395. بررسی اثر محافظتی اسانس گلپر
2
(Persicum Heracleum) در مسمومیت حاد کبدی ناشی از استامینوفن در موشهای نژاد ویستار، مجله پژوهشهای جانوری (مجله زیستشناسی ایران)، جلد 29، شماره 3، صفحه 292-306.
3
3. Ahmadvand, H., Amiri, H., Dalvand, H., and Bagheri, S., 2014. Various antioxidant properties of essential oil and hydroalcoholic extract of Artemisa persica, Journal of Birjand University of Medical Sciences, 20 (4), PP: 416-424.
4
4. Aksoy, A. N., Toker, A., Celik, M., Aksoy, M., Halici, Z., and Aksoy, H., 2014. The effect of progesterone on systemic inflammation and oxidative stress in the rat model of sepsis, Indian Journal of Pharmacology, 46, PP: 622-626.
5
5. Andresen, M., Regueira, T., Bruhn, A., Perez, D., Strobel, P., Dougnac, A., and et al., 2008. Lipoperoxidation and protein oxidative damage exhibit different kinetics during septic shock. Mediators Inflamm 16 p.
6
6. Barishev, M. G., Dzhimak, S. S., Frolov, V. U., Bolotin, S. N., and Dolgov, M. A., 2013. Technologies for obtaining deuterium depleted water. International Journal of Engineering Research and Applications, 3, PP: 523-526.
7
7. Benzie, I. F., and Strain, J. J., 1996. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of "antioxidant power": the FRAP assay, Analytical Biochemistry, 239(1), PP: 70-6.
8
8. Cherian, S., Jameson, S., Rajarajeswari, C., Helena, V., Latha, L., Anu Rekha, M. R., and et al., 2007. Oxidative stress in sepsis in children. Indian Journal of Medical Research, 125(2), PP: 143-8.
9
9. Crofford, L. J., Lipsky, P. E., Brooks, P., Abramson, S. B., Simon, L. S., and Van de Putte, L. B., 2000. Basic biology and clinical application of specific cyclooxygenase-2 inhibitors, Arthritis & Rheumatology, 43(1), PP: 4-13.
10
10. Esmaeili, B., Rezaee, S. A. R., Layegh, P., Tavakkol Afshari, J., Dye, P. h., Ghayoor Karimiani, E., and et al., 2011. Expression of IL-17 and COX2 Gene in Peripheral Blood Leukocytes of Vitiligo Patients. Iran Journal Allergy Asthma Immunology, 10(2), PP: 81-89.
11
11. Fatemi, F., Allameh, A., Khalafi, H., and Ashrafihelan, J., 2010. Hepatoprotective effects of g-irradiated caraway essential oils in experimental sepsis. Applied Radiation and Isotopes, 68, PP: 280-285.
12
12. Ghaderi, P., Ahmadi, R., Balkanyian, F., Moridikyia, A., Mahdavi, E., and Tavakoli, P., 2014. In-vitro antibacterial activity of bunium persicumand Mentha longifolia against Bacillus subtilis and Staphylococcus aureus. International Conference on Chemical, Agricultural and Medical Sciences (CAMS-2014) May 2-3, 2014 Antalya (Turkey). 13. Habig, W. H., Pabst, M. J., and Jakoby, W. B., 1974. Glutathione S-transferases. The first enzymatic step in mercapturic acid formation, Journal of Biological Chemistry, 249(22), PP: 7130-9.
13
14. Harirforoosh, S., Asghar, W., and Jamali, F., 2013. Adverse Effects of Nonsteroidal Antiinflammatory Drugs: An Update of Gastrointestinal, Cardiovascular and Renal Complications. Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences, 16(5), PP: 821-847.
14
15. Hillegass, L. M., Griswold, D. E., Brickson, B., and Albrightson- Winslow, C., 1990. Assessment of myeloperoxidase activity in whole rat kidney, Journal of Pharmacological and Toxicological Methods, 24, PP: 285-95.
15
16. Hubbard, W. J., Choudhry, M., Schwacha, M. G., and Kerby, J. D., 2005. Cecal ligation and puncture. Shock 24, PP: 52-57.
16
17. Jaitovitch-Groisman, I., Fotohi, N., Schecter, R. L., and Woo, A., 2000. Modulation of glutathion-s-transferase alpha by hepatitis Bvirus and the chemopreventive drug Oltipraz, Journal of Biological Chemistry, 275(43), PP: 33395-403.
17
18. Juncal, V. R., Neto, L. A. D., Camelier, A. A., Messeder, O. H. C., and Farias, A. M. D. C., 2011. Clinical impact of sepsis at admission to the ICU of a private hospital in Salvador, Brazilian Journal of Pulmonology, 37(1), PP: 85-92.
18
19. Kamatou, G. P. P., Viljoen, A. M., Gono-Bwalya, A. B., Van Zyl, R. L., Van Vuuren, S. F., Lourens, A. C. U., and et al., 2005. The in vitro pharmacological activities and a chemical investigation of three South African Salvia species, Journal of Ethnopharmacology, 102, PP: 382-90.
19
20. Keller, S. A., Paxian, M., Lee, S. M., Clemens, M. G., and Huynh, T., 2005. Kupffer Cell Ablation Attenuates Cyclooxygenase-2 Expression after Trauma and Sepsis, Journal of Surgical Research, 124, PP: 126-133.
20
21. Krempels, K., Somlyai, I., Somlyai, G. 2008. A retrospective evaluation of the effects of deuterium depleted water consumption on 4 patients with brain metastases from lung cancer. Integrative Cancer Therapies 7: 172-81.
21
22. Kinghorn, A. D., Pan, L., Fletcher, J. N., and Chai, H., 2011. The relevance of higher plants in lead compound discovery programs, Journal of Natural Products, 74, PP: 1539-1555.
22
23. Kothari, N., Keshari, R. S., Bogra, J., Kohli, M., Abbas, H., Malik, A., and et al., 2011. Increased myeloperoxidase enzyme activity in plasma is an indicator of inflammation and onset of sepsis, Journal of Critical Care, 26(4), 435 p.e1-7.
23
24. Kovacs, A., Guller, I., Krempels, K., Somlyai, I., Janosi, I., Gyongyi, Z., and et al., 2011. Deuterium Depletion May Delay the Progression of Prostate Cancer, Journal of Cancer Therapy, 2, PP: 548-556.
24
25. Martin, G. S., Mannino, D. M., Eaton, S., and Moss, M., 2003. The epidemiology of sepsis in the United States from 1979 through 2000, The New England Journal of Medicine, 348(16), PP: 1546-54.
25
26. Nelson, S. D., 1995. Mechanisms of the formation and disposition of reactive metabolites that can cause acute liver injury, Drug Metabolism Reviews, 27, PP: 147-177.
26
27. Newman, D. J., and Cragg, G. M., 2012. Natural products as sources of new drugs over the 30 years from 1981 to 2010, Journal of Natural Products, 75, PP: 311-335.
27
28. Nordberg, J., and Arner, E., 2001. Reactive oxygen species, antioxidant, and the mammalian thioredoxin system, Free Radical Biology & Medicine, 31(11), PP: 1287-312.
28
29. Olariu, L., Petcu, M., Cuna, S., Tulcan, C., Gravila, C., Petrovici, S., and et al., 2010. Deuterium Depleted Water Behavior in Chromium (VI) Intoxicated Female rats, Journal of Biotechnology, 1, 72 p.
29
30. Ortolani, O., Conti, A., De Gaudio, A. R., Moraldi, E., Cantini, Q., and Novelli, G., 2000. The effect of glutathione and N-acetylcysteine on lipoperoxidative damage in patients with early septic shock. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine, 161(6), 1907 p.
30
31. Podrez, E. A., Abu-Soud, H. M., Stanley, L., and Hazen, S. L., 2000. Myeloperoxidase-generated oxidants and atherosclerosis. Free Radical Biology & Medicine, 28(12), PP: 1717-1725.
31
32. Rasooli, A., Fatemi, F., Akbarzadeh, K., Dini, S., Bahremand, S. H., 2016. Synergistic protective activity of deuterium depleted water (DDW) and satureja rechingeri essential oil on hepatic oxidative injuries induced by acetaminophen in rats, Journal of Essential Oil Bearing Plants, 19(5), PP: 1086-1101.
32
33. Razavi, S. M., Zarrini, G., and Molavi, G., 2012. The evaluation of some biological activity of Mentha longifolia (L.) Huds growing wild in Iran, Pharmacologia 3(10), PP: 535-538.
33
34. Saeidi, S., Hassanpour, K., Ghamgosha, M., Heiat, M., Taheri, R. A., Mirhosseini, A., and et al., 2014. Antibacterial activity of ethyl acetate and aqueous extracts of Menthalongifolia L. and hydroalcoholic extract of Zataria multiflora Boiss, Plants against important human pathogens, Asian Pac Journal Trop Biomed 4(12), PP: 972-975.
34
35. Seldak, J., and Limdsay, 1986. Estimation of total protein bound and non-protein sulfidryl groups in tissue with Elman, s reagent. Analytical Biochemistry, 25, PP: 192-205.
35
36. Şener, G., Toklu, H., Ercan, F., and Erkanli, G., 2005. Protective effect of b-glucan against oxidative organ injury in a rat model of sepsis, International Immunopharmacology, (2005) 5, PP: 1387-96.
36
37. Sharma, R. A., Dalgleish, A. G., Steward, W. P., and O'byrne, K. J., 2003. Angiogenesis and the immune response as targets for the prevention and treatment of colorectal cancer (Review), Oncology Reports, 10, PP: 1625-1631.
37
38. Stanisavljević, D. M., Stojičević, S. S., Đorđević, S. M., Zlatković, B. P., Veličković, D. T., Karabegović, I. T., and et al., 2012. Antioxidant activity, the content of total phenols and flavonoids in the ethanol extracts of Mentha longifolia (L.) Hudson dried by the use of different techniques, Chemical Industry & Chemical Engineering Quarterly, 18(3), PP: 411-420.
38
39. Stearns-Kurosawa, D. J., Osuchowski, M. F., Valentine, C., Kurosawa, S., and Remick, D. G., 2011. The pathogenesis of sepsis, Annual Review Of Pathology-Mechanisms Of Disease, 6, PP: 19-48.
39
40. Strong, V. E. M., and Mackrell, P. J., 2000. Concannon E. M, Naama H. A, Schaefer P. A, Shaftan G. W, Stapleton P. P, Daly J. M, Blocking prostaglandin E2 after trauma attenuates pro-inflammatory cytokines and improves survival, Shock 14, PP: 374-9.
40
41. Surh, Y. J., Chun, K. S., Cha, H. H., Han, S. S., Keum, Y. S., Park, K. K., and et al., 2001. Molecular mechanisms underlying chemopreventive activities of anti-inflammatory phytochemicals: down-regulation of COX-2 and iNOS through suppression of NF-kappa B activation, Mutation Research, 480(481), PP: 243-68.
41
42. Unnithan, C. R., Gebreselassie, H., Sushen, U., Reddy, D. N., Woldu, A., and Muuz, M., 2013. Chemical composition and antibacterial activity of essential oil of Mentha longifolia L of Mekole, Ethiopia, Journal of Biological and Scientific Opinion, 1(3), PP: 151-153.
42
43. Villa, P., Saccani, A., and Sica, A., 2002. Glutathione protects mice from lethal sepsis by limiting inflammation and potentiating host defense, Journal of Infectious Diseases, 185, PP: 1115-20.
43
44. Wang, H., Liu, C., Fang, W., and Yang, H., 2012. Research progress of the inhibitory effect of deuterium-depleted water on cancers, Nan Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao 32(10), PP: 1454-6.
44
45. Wang, H. L., Li, Y. X., Niu, Y. T., Zheng, J., Wu, J., Shi, G. J., and et al., 2015. Observing anti-inflammatory and anti-nociceptive activities of glycyrrhizin through regulating COX-2 and pro-inflammatory cytokines expressions in mice, Inflammation 38, PP: 2269-2278.
45
46. Wills, E. D., 1969. Lipid peroxide formation in microsomes: General consideration, Biochemical journal, 113, PP: 315-324.
46
47. Zargari, A., 1990. Medicinal Plants, (4nd edn), Tehran University Publications, PP: 14-18.
47
48. Zhang, R., Brennan, M. L., Shen, Z., MacPherson, J. C., Schmitt, D., Molenda, C. E., and et al., 2002. Myeloperoxidase Functions as a Major Enzymatic Catalyst for initiation of Lipid Peroxidation at Sites of Inflammation, Journal of Biochemistry, 277(48), PP: 46116-22.
48
ORIGINAL_ARTICLE
زیست شناسی تولید مثل اکتوکورال Plumarella flabellata جمع آوری شده از زیستگاه های مصنوعی خلیج فارس
مرجان های اکتوکورال هم از لحاظ شکل ظاهری و هم به لحاظ پراکنش جغرافیایی، گروه متفاوتی از سایر مرجان ها بوده و اطلاعات اندکی در ارتباط با زیست شناسی تولید مثل آنها موجود می باشد. لذا تحقیق حاضر با هدف بررسی زیست شناسی تولید مثل مرجان گونه Plumarella flabellate جمع آوری شده از زیستگا های مصنوعی در سواحل ایرانی در شمال خلیج فارس صورت پذیرفت. در این راستا کلنی هایی با اندازه های مختلف جمع آوری شدند تا رابطه میان اندازه کلنی و مراحل جنسی آنها تعیین گردد. گنادها تنها در کلنی هایی با ارتفاع بیش از 15 سانتیمتر مشاهده شدند. علاوه بر این، هر دو نوع گناد نر و ماده در امتداد مزانترها در گونه P. flabellate مشاهده و در نتیجه این گونه، یک گونه هرمافرودیت در نظر گرفته شد. در هیچ کدام از نمونه های مورد مطالعه پلانولا مشاهده نگردید و بنابراین به نظر می رسد، گونه P. flabellate موجود در آب های ایرانی خلیج فارس از نوع مولدین با لقاح خارجی باشد. گناد در تمام نمونه های جمع آوری شده در هر فصل، در مرحله تکاملی مشابه بود. بر اساس نتایج مطالعه حاضر، تخمگذاری گونه P. flabellateدر فاصله اوائل خرداد تامرداد رخ داده و البته با شرایط محیطی به ویژه افزایش دمای آب و افزایش طول روز در ارتباط است. تحقیق حاضر نشان داد که این گونه در زیستگاه های مصنوعی ایجاد شده، پتانسیل تولید مثلی قابل توجهی داشته که با غالبیت این گونه در تپه ها مصنوعی موجود در شمال غرب خلیج فارس مرتبط است.
https://animal.ijbio.ir/article_1490_d94bca69d2212e33253aee038a383cab.pdf
2019-08-23
117
124
اکتوکورال
Plumarella flabellate
تولیدمثل
خلیج فارس
نگین
سلامات
salamatnegin@gmail.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه علوم وفنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران.
LEAD_AUTHOR
عطاران، گ.، و دلاور، ع.، 1394. بررسی مورفولوژی و مولکولی ژلهفیش گونهی (Cnidaria: Scyphozoa) Pelagia noctiluca با پتانسیل تشکیل بلوم در سواحل جنوب شرق ایران (دریای عمان )، مجله پژوهشهای جانوری، جلد 28، شماره 1، صفحات 71-62.
1
موسوی ده موردی، ل.، و سواری، ا.، 1392. بررسی نقش فاکتورهای فیزیکی و شیمیایی آب در تراکم شانهدار Pleurobrachia sp در خورهای دورق و غزاله در استان خوزستان، مجله پژوهشهای جانوری، جلد 26، شماره 4، صفحات 489-478.
2
Benayahu, Y, 1991. Reproduction and developmental pathways of Red Sea Xeniidae (Octocorallia, Alcyonacea). Hydrobiol, 216, PP: 125-130.
3
Ben-Yosef, D. Z., and Benayahu, Y., 1999. The gorgonian coral Acabaria biserialis: life history of a successful colonizer of artificial substrata. Mar Biol, 135, PP: 473-481.
4
Cervino, J. M., Hayes, R. L., Honovich, M., Goreau, T. J., Jones, S., and Rubec, P. J., 2003. Changes in zooxanthellae density, morphology, and mitotic index in hermatypic corals and anemones exposed to cyanide. Mar Poll Bull, 46, PP: 573-586.
5
Coma, R., Zabala, M., and Gili, J. M., 1995. Reproduction and cycle of gonadal development in the Mediterranean gorgonian Paramuricea clavata. Mar Ecol Pro Ser, 117, PP: 173-183.
6
Cordes, E. E., Nybakken, J. W., and VanDykhuizen, G., 2001. Reproduction and growth of Anthomastis ritteri (Octocorallia: Alcyonacea) from Monterey Bay California, USA. Mar Biol, 138, PP: 491-501.
7
Dahan, M., and Y., Benayahu, 1997. Reproduction of Dendronephthya hemprichi (Cnidaria: Octocorallia): year-round spawning in an azooxanthellate soft coral. Mar Biol, 129, PP: 573-579.
8
Excoffon, A. C., Navella, M. L., Acuña, F. H., and Garese, A., 2011. Oocyte production, fecundity, and size at the onset of reproduction of Tripalea clavaria (Cnidaria: Octocorallia: Anthothelidae) in the Southwestern Atlantic. Zoological Stud, 50, PP: 434-442.
9
Edwards, D. C. B., and Moore, C. G., 2009. Reproduction in the sea pen Funiculina quadrangularis (Anthozoa: Pennatulacea). Estuar Coast Shelf Sci, 82, PP: 161-168.
10
Fitzsimmons-Sosa, K., Hallock, P., Wheaton, J., Hackett, K. E., and Callahan, M. K., 2004. Annual cycles of gonadal development of six common gorgonians from Biscayne National Park, Florida, USA. Carib J Sci, 40, PP: 144-150.
11
Gutierrez-Rodriguez, C., and Lasker, H. R., 2004. Reproductive biology, development, and planula behavior in the Caribbean gorgonian Pseudopterogorgia elisabethae. Inver Biol, 123, PP: 54-67.
12
Hwang, S. J., and Song, J. I., 2007. Reproductive biology and larval development of the temperate soft coral Dendronephthya gigantean (Alcyonacea: Nephtheidae). Mar Biol, 152, PP: 273-284.
13
Hwang, S. J., and Song, J. I., 2012. Sexual reproduction of the soft coral Dendronephthya castanea (Alcyonacea: Nephtheidae). Anim Cells Syst, 16, PP: 135-144.
14
Kapela, W., and Lasker, H. R., 1999. Size-dependant reproduction in the Caribbean gorgonian Pseudoplexaura porosa. Mar Biol, 135, PP: 107-114.
15
Lasker, H. R., Kim, K., and Coffroth, M. A., 1996. Reproductive and genetic variation among Caribbean gorgonians: the differentiation of Plexaura kuna, new species. Bull Mar Sci, 58, PP: 277 -288.
16
Linares, C., Coma, R., Mariani, S., Díaz, D., Hereu, B., and Zabala, M., 2008. Early life history of the Mediterranean gorgonian Paramuricea clavata: implications for population dynamics. Inver Biol, 127, PP: 1-11.
17
Penland, L., Kloulechad, J., Idip, D., and van Woesik, R., 2004. Coral spawning in the western Pacific Ocean is related to solar insolation: evidence of multiple spawning events in Palau. Coral Reefs, 23, PP: 133-140.
18
Permata, W. D., Kinzie, R. A., and Hidakal, M., 2000. Histological studies on the origin of planulae of the coral Pocillopora damicornis. Mar Ecol Prog Ser, 200, PP: 191-200.
19
Pires, D. O., Castro, C. B., and Silva, J. C., 2009. Reproductive biology of the deep-sea pennatulacean Anthoptilum murrayi (Cnidaria,Octocorallia). Mar Ecol Prog Ser, 307, PP: 103-112.
20
Ribes, M., Coma, R., Rossi, S., and Micheli, M., 2007. Cycle of gonadal development in Eunicella singularis (Cnidaria: Octocorallia): trends in sexual reproduction in gorgonians, Inver Biol, 126, PP: 307-317.
21
Richmond, R., and Hunter, C., 1990. Reproduction and recruitment of corals: comparisons among the Caribbean, the tropical Pacific, and the Red Sea. Mar Ecol Pro Ser, 60, PP: 185–203.
22
Shlesinger, Y., Goulet, Y. L., and Loya, Y., 1998. Reproductive patterns of scleractinian corals in the northern Red Sea. Mar Biol, 132, PP: 691-701.
23
ORIGINAL_ARTICLE
اثر شنبلیله بر پروفایل سرمی در موش بزرگ آزمایشگاهی دریافت کننده رژیم غذایی پر کلسترول و مقایسه با اثر آتورواستاتین
زمینه و هدف: امروزه گیاهان دارویی به خاطر نقشی که در درمان بسیاری از بیماریها دارند، مورد توجه قرار گرفتهاند. هدف از این مطالعه تعیین اثر هیپوکلسترولمیک پودر دانهی شنبلیله و مقایسهی آن با آتورواستاتین در موش بزرگ آزمایشگاهی دریافت کنندهی رژیم غذایی پر کلسترول بود.روش بررسی: تعداد 40 سر موش بزرگ آزمایشگاهی نر با وزن 180 تا 200 گرم دو هفته تحت نظر گرفته شدند. سپس به طور تصادفی در 4 گروه 10 تایی تقسیم شدند. گروه1 (تغذیه با غذای طبیعیND)، گروه2 (تغذیه با غذای با کلسترول بالا HCD: غذای طبیعی مخلوط با 2 کلسترول و 5/0 کولیک اسید)، گروه3 (تغذیه با HCD مخلوط با g/kg bwt/day 8 پودر دانه شنبلیلهHCD+FNG)، گروه4 ( تغذیه با HCD و mg/kg bwt / day 5/0 امولسیون آبی آتورواستاتین HCD+Ator از طریق لوله دهانی). پس از 6 هفته، سطح سرمی تریگلیسرید، کلسترول تام، لیپوپروتئین با دانسیته بالا (HDL-c) ، آلانین آمینوترانسفراز (ALT) ، آسپارتیک آمینوترانسفراز (AST) و قند خون ناشتا (FBS) سنجیده شدند. لیپویروتئین با دانسیته پایین (LDL-c) با رابطه فریدوالد تخمین زده شد. یافتهها: در گروههای 3و4، در مقایسه با گروه 2 ، سطوح سرمی کلسترول، تریگلیسرید، LDL-c،VLDL-c ، ALT و FBS کاهش (001/0 p<) و سطح سرمی HDL-c افزایش یافت(05/0 p<) نتیجه گیری: شنبلیله دارای فعالیتهای هیپولیپیدمیک و هیپوگلیسمیک در موش های بزرگ آزمایشگاهی دریافت کنندهی رژیم غذایی پر کلسترول بود و دیس لیپیدمی ناشی از آن را اصلاح نمود. پودر دانه شنبلیله بطور معنی داری فعالیت هیپولیپیدمیک و هیپوگلیسمیک ضعیفتری نسبت به آتورواستاتین نشان داد.
https://animal.ijbio.ir/article_1416_14c6203657457f321c37d9ad4d126458.pdf
2019-08-23
125
134
آتورواستاتین
شنبلیله
کلسترول
LDL-c
سیده نگین
کسائی
neginkassaee@gmail.com
1
دانشکده داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی همدان، همدان، ایران
AUTHOR
سید مهرداد
کسائی
kassaee2001@yahoo.com
2
استادیار بیوشیمی، دانشکده علوم پایه ، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد همدان
LEAD_AUTHOR
1- Ahmadi, R., and Pishghadam, S., 2017. Effect of hydro alcoholic Cinnamomum zeylanicum extract on leptine , triglyceride , total cholestrol levels and body weight in Male Wistar rats exposed to air pollution. Journal of Animal Researches(Iranian Journal of Biology), 30( 1), PP: 15-24.
1
2- Baker, W. L., Gutierrez-Williams, G., White, C. M., Kluge, J., and Coleman, C. I., 2008. Effect of Cinnamon on Glucose Control and Lipid Parameters. Diabetes Care, 31, PP: 41–43.
2
3- Basch, E., Ulbricht, C., Kuo, G., Szapary, P., Smith, M., 2003. Therapeutic Applications of Fenugreek. Alternative Medicine Review, 8, PP: 20-27.
3
4- Belguith-Hadriche, O., Bouaziz, M., Jamoussi, K., Simmonds, M., El Feki, A., and Makni-Ayedi, F., 2013. Comparative Study on Hypocholesterolemic and Antioxidant Activities of Various Extracts of fenugreek Seeds. Food Chemistry, 138, PP:1448-1453.
4
5- Bocan, T., Mueller, S., Brown, E., Lee, P., Bocan, M., Rea, T., et al., 1998. HMG-CoA Reductase and ACAT Inhibitors Act Synergistically to Lower Plasma Cholesterol and Limit Atherosclerotic Lesion Development in the Cholesterol-Fed Rabbit. Atherosclerosis, 139, PP:21-30.
5
6- Dadkhah, A., Fatemi, F., Naij, S., Dini, S., Khalaj, G., and Fadaee Monfared, M., 2016. Considering the effect of Golpar (Heracleum Persicum) essential oils on the acute hepatotoxcity induced by acetaminophen in Wistar rats. Journal of Animal Researches(Iranian Journal of Biology), 29(3), PP: 292-306
6
7- Fredrikson, G., Hedblad, B., Berglund, G., and Nilsson, J., 2003. Plasma Oxidized LDL: A Predictor for Acute Myocardial Infarction? Journal of Internal Medicine, 253, PP: 425-429.
7
8- Goodarzi, M. T., Tootoonchi, A., Karimi, J., and Abbasi Oshaghi, E., 2013. Anti-Diabetic Effects of Aqueous Extracts of Three Iranian Medicinal Plants in Type 2 Diabetic Rats Induced by High Fructose Diet. Avicenna Journal of Medical Biochemistry, 1(1), PP: 7-13.
8
9- Ji, G., Zhao, X., Leng, L., Liu, P., and Jiang, Z., 2011. Comparison of Dietary Control and Atorvastatin on High Fat Diet Induced Hepatic Steatosis and Hyperlipidemia in Rats. Lipids in Health and Disease, 10(23), PP: 1-10
9
10- Jian, G., Ze-qin, L., Ping, Z., and Hai-bo, Z., 2011. Lipid-Lowering Effect of Cordycepin (3'-deoxyadenosine) from Cordyceps Militaris on Hyperlipidemic Hamsters and Rats. Acta Pharmaceut ica Sinica, 46(6), PP: 669-676.
10
11- Khosla, P., Gupta, D. D., and Nagpal, R. K., 1995. Effect of Trigonella foenum graecum (Fenurgreek) on Blood Glucosein Normal AND Diabetic Rats. Indian J Physiol Pharmacol, 39, PP: 173-174.
11
12- Mang, B., Wolters, M., Schmitt, B., Kelb, K., Lichtinghagen, R., and Stichtenoth, D., et al., 2006. Effects of a Cinnamon Extract on Plasma Glucose, HbA1C and Serum Lipids in Diabetes Mellitus Type 2. European Journal of Clinical Investigation, 36, PP: 340–344.
12
13- Mohammadi, A., and Abbasi Oshaghi, E., 2014. Effect of Garlic on Lipid Profile and Expression of LXR Alpha in Intestine and Liver of Hypercholesterolemic Mice. Journal of Diabetes and Metabolic Disorders, 13, PP: 20-23.
13
14- Onyeike, E., Monanu, M., and Okoye, C., 2012. Changes in The Blood Lipid Profile of Wistar albinorats Fed Rich Cholesterol Diet. Annals of Biological Research, 3(11), PP: 5186-5191.
14
15- Pahan, K., 2006. Lipid-Lowering drugs. Cellular and Molecular Life Sciences, 63(10), PP:1165-1178.
15
16- Prasanna, M., 2000. Hypolipidemic Effect of Fenugreek: A Clinical Study. Indian Journal of Pharmacology, 32, PP: 34-36.
16
17- Ramulu, P., Giridharan, N., and Udayasekhararao, P., 2011. Hypolipidemic Effect of Soluble Dietary Fiber(galactomannan) Isolated From Fenugreek Seeds in WNIN (GR-Ob) Obese Rats. Journal of Medicinal Plants Research, 5(19), PP: 4804-4813.
17
18- Rahman, S., Begum, H., Rahman, Z., Ara, F., Iqbal, M., and Mohammad Yousuf, A., 2013. Effect of Cinnamon (Cinnamomum cassia) as a Lipid Lowering Agent on Hypercholesterolemic Rats. Journal of Enam Medical College, 3(2), PP: 94-98.
18
19- Sahu, S., Chawal, R., and Uppal, B., 2005. Comparison of Two Methods of Estimation of Low Density Lipoprotein Cholesterol, The Direct Versus Friedewald Estimation. Indian Journal of Clinical Biochemistry, 20 (2), PP: 54-61
19
20- Said, A. M., Al-Khashali, D., Al-Khateeb, E., Al-Wakeel, N., 2011. The Hepatoprotective Activity of Fenugreek Seeds' Extract Against Carbontetrachloride Induced Liver Toxicity in Rats. American Journal of Plant Sciences, 9(1), PP: 94-103
20
21- Sharma, R. D., Raghuram, T. C., Dayasagar Rao V., 1991. Hypolipidaemic effect of fenugreek seeds. A clinical study. Phytother, 3, PP:145-147.
21
22- Sohrevardi, N., Sohrevardi, F., 2012. Essential oil Composition and Antioxidant Activity of Trigonella Foenum Graecum L. Plant. International Journal of Agriculture and Crop Sciences, 4(12), PP: 793-797.
22
23- Subhashini, N., Thangathirupathi, A., and Lavanya, N., 2011. Antioxidant Activity of Trigonella Foenum Graecum Using Various In Vitro And Ex Vivo Models. International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences, 3(2), PP: 96-102.
23
24- Tebib, K., Besanacon, P., and Rouanet, J. M., 1994. Dietary Grape Seed Tannins Affect Lipoproteins, Lipoprotein Lipases and Tissue Lipids in Rats Fed Hypercholesterolemic Diets. American Institute of Nutrition, 98, PP: 2451-2457.
24
25- Vats, V., Grover, J., and Rathi, S., 2002. Evaluation of Anti-Hyperglycemic and Hypoglycemic Effect of Trigonella foenum-graecum Linn, Ocimum Sanctum Linn and Pterocarpus Marsupium Linn in Normal and Alloxanized Diabetic Rats. Journal of Ethnopharmacology, 79, PP: 95–100.
25
26- Vijayakumar, M., Pandey, V., Mishra, G., and Bhat, M., 2010. Hypolipidemic Effect of Fenugreek Seeds Is Mediated Through Inhibition of Fat Accumulation and Upregulation of LDL Receptor. Obesity, 18(4), PP: 667-674.
26
ORIGINAL_ARTICLE
توانایی تجمع فلزات سنگین در پوسته دوکفه ای Cerastoderma lamarcki در سواحل جنوب غربی دریای خزر، استان گیلان
در این تحقیق، میزان غلظت فلزات سنگین نیکل، آهن، کادمیوم، آلومینیوم، کروم، مس، روی، سرب و وانادیوم در رسوبات و پوسته صدف Cerastodema lamarcki در 10 ایستگاه از سواحل جنوب غربی دریای خزر در محدوده استان گیلان در بهمن ماه 1393 مورد مطالعه قرار گرفت. غلظت فلزات در نمونه های پوسته و رسوب، پس از آمادهسازی و هضم اسیدی با استفاده از دستگاه ICP - OES تعیین شدند. نتایج نشان دادند که پوسته صدف مورد مطالعه توانایی مناسبی برای تجمع فلزات مس، سرب، روی, کروم و کادمیوم دارد و می تواند برای این عناصر بعنوان یک پایشگر زیستی مناسب در سواحل استان گیلان مورد استفاده قرار گیرد. نتایج آنالیز خوشهای نشان داد که عناصر آهن و آلومینیوم در رسوبات، مستقل ازسایر عناصر می باشند. محاسبه فاکتور غنی شدهگی(EF)، نشان داد که رسوبات سواحل غربی گیلان برای فلزات مس، سرب، وانادیوم، کروم و نیکل از غنی شدگی متوسطی برخودار هستند. مقایسه غلظت فلزات مورد مطالعه با استانداردهای جهانی نشان می دهد که رسوبات سواحل گیلان از نظر غلظت عناصر مس، نیکل و کادمیوم دارای آلودگی متوسط هستند. باتوجه به روند توسعه شهری، کشاورزی و صنعتی در منطقه و منابع ارزشمند اکوژیک دریای خزر، مدیریت یکپارچه منابع آلاینده برای حفظ سلامت عمومی و محیط زیست دریای خزر ضروری است.
https://animal.ijbio.ir/article_1415_71a1c185efd0714245b8def4f9aaec0b.pdf
2019-08-23
135
147
فلز سنگین
رسوب
Cerastodema lamarcki
دریای خزر
محسن
محمدی گلنگش
mohammadi2g@gmail.com
1
عضو هیات علمی گروه محیط زیست دانشگاه گیلان
LEAD_AUTHOR
کوپی
مارال
koopimaral@gmail.com
2
دانش آموخته کارشناسی ارشد، گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی دانشگاه گیلان
AUTHOR
علی
بانی
ali_bani_2000@yahoo.com
3
دانشگاه گیلان، دانشکده علوم پایه،گروه زیست شناسی دریا
AUTHOR
1- Ardabili, L., Rafiee, B., and Khodaparast sharifi, S, H., 2006. Investigation of some elements (Cu,Pb, Cd and Zn) distribution in surface sediment of Anzali wetland.10th symposium of Geological society of Iran.Theran.Tarbiat Modares University. 8 p.
1
2- Astudillo, L. R., Chang Yen, I., and Bekele, I., 2005. Heavy metals in sediments, mussels and oysters from Trinidad and Venezuela. International Journal of Tropical Biology and Conversation, 53, PP: 41-53.
2
3- Babaie, H., and Khodaparast, S, H., 2009. Assessment of surface water pollution with emphasis on industrial units of Gilan province.12th National Congress on Environmental Health. Shahid Beheshti University of Medical Sciences.Tehran, PP: 1222-1233.
3
4- Bagheri, H., Bastami, K. D., Haghparast, S., Soltani, F., Hamzehpoor, A., Bastami, M. D., and Soltani, F., 2014. Distribution and ecological risk assessment of heavy metals in surface sediments along southeast coast of the Caspian Sea, Iran. Marine Pollution Bulletin, 81, PP: 262–267.
4
5- Bakhtiyari, A., and Mortazavi, S., 2007. Detemination of Pb, Cd levels in Atlantic pearl-oyster Pinctada radiate at Hedorabi island, Pgouhesh va Sazandegi, No 74, 8 p.
5
6- Baptista Neto, J. A., Smith, B. J., and McAllister, J. J., 2001. Heavy metal concentrations in surface sediments in a near shore environment, Jurujuba Sound, Southeast Brazil. Environmental Pollution, 109, PP: 1–9.
6
7- Badri, N., Amrollahi Biuki, N., and Sharif Ranjbar, M., 2016. Study of orientation behavior of Hermit crab Diogenes avarus under the influence of chemical cues and Lead contamination. Journal of Animal Researches, 29(3), PP: 261-278 (in Persian).
7
8- Diagomanolin, V., Farhang, M., Ghazi-Khansari, M., and Jafarzadeh, N., 2004. Heavy metals (Ni, Cr, Cu) in the Karoon waterway river Iran. Toxicology Letters, 151, PP: 63–68.
8
9- Demetra, T., 2007. Removal of Arsenic from Water Using Ground Clam Shells. Water Environment Federation. 10.2175/SJWP, 1, 80 p.
9
10- Eby, G. N., 2004. "Principle of environmental geochemistry", Thompson, 515 p.
10
11- Ganjavi, M., Ezzatpanah, H., Givianrad, M. H., and Shams, A., 2010. Effect of canned tuna fish processing steps on lead and cadmium contents of Iranian tuna fish. Food Chemistry, 118, PP: 525-528.
11
12- Gillikin, D. P., Dehairs, F., Baeyens, W., Navez, J., Lorrain A., and Andre, L., 2005. Inter-and intra-annual variations of Pb/Ca ratios in clam shells (Mercenaria mercenaria): a record of anthropogenic lead pollution. Marine Pollution Bulletin, 50) 12(, PP: 1530-1540.
12
13- Guerra-Garcia, J. M., and Garcia-Gomez, J. C., 2005. Assessing pollution levels in sediments of a harbor with two opposing entrances. Environmental implications. Journal of Environmental Management, 77, PP: 1–11.
13
14- Huanxin, W., Lejun, Z., and Prestey, B. J., 2000. Bioaccumulation of heavy metals in oyster Crassostrea virginica tissue and shell. Environmental Geology, 39(11), PP: 1216-1226.
14
15- Hosseini, M., Nabavi, S. B., Golshani, R., Nabavi, S. N., and Raeesi sarasiab, A., 2015. The heavy metals pollution (Cd, Co, Pb, Cu and Ni) in sediment, liver and muscles tissues of flounder Psettodes erumei from Busheher Province, Persian Gulf. Journal of Animal Researches, 28(4), PP: 441-449 (in Persian).
15
16- Manta, D. S., Angelone, M., Bellanca, A., Neri, R., and Sprovieria, M., 2002. Heavy metals in urban soils: a case studyfrom the city of Palermo (Sicily), Italy. Science of the Total Environment, 300, PP: 229-243.
16
17- Morillo, J., Usero, J., and Gracia, I., 2004. Heavy metal distribution in marine sediments from the southwest coast of Spain. Chemosphere, 55, PP: 431–442.
17
18- Nasrabadi, T., Bidhendi, G. N., Karbassi, A., and Mehrdadi, N., 2010. Evaluating the efficiency of sediment metal pollution indices in interpreting the pollution of Haraz River sediments, southern Caspian Sea basin. Environmental monitoring and assessment. 171, PP: 395-410.
18
19- Neshaei, M. A. L., Eslami, A., and Payravi, Ch. M., 2007. Investigation of Sediment Transport Potential in Caspian Sea Coast. International Magazine on Engineering, 5, PP: 39-45.
19
20- NOAA, 1999. National Oceanic and Atmospheric Administration. Sediment quality guideline developed for the national status and trends Program. The Center forCoastal Monitoring and Assessment (CCMA) (NOAA Technical Memorandum NOS NCCOS CCMA) 0137 p.
20
21- Pak, A., and Farajzadeh, M., 2007. Iran's integrated coastal management plan: Persian Gulf, Oman Sea, and southern Caspian Sea coastlines. Ocean & Coastal Management, 50(9), PP: 754-773.
21
22- Pourang, N., Nikouyan, A., and Dennis, J. H., 2005. Trace element concentrations in fish, surficial sediments and water from northern part of the Persian Gulf. Environmental Monitoring and Assessment, 109, PP: 293–316.
22
23- ROPME, 1999. Manual of Oceanographic Observation and Pollutant Analysis Methods (MOOPAM). Regional organization for the protection of the marine environment, Kuwait. 483 p.
23
24- Sartaj, M., Fathollahi, F., and Filizadeh, Y., 2005. An Investigation of the Evolution of Distribution and Accumulation of Heavy Metals (Cr, Ni, Cu, Cd, Zn and Pb) in Anzali Wetland’s Sediments. Ir J Natural Resources, 58(3), PP: 623-34.
24
25- Shankera, A., Cervantes, C., and Herminia, L., 2005. Chromium toxicity in plants, Environmental International, 31, PP: 739- 753.
25
26- Shi, G., Chen, Z., Xu, S., Zhang, J., Wang, L., Bi, C., and Teng, J., 2008. Potentially toxic metal contamination of urban soils and roadside dust in Shanghai, China Environmental Pollution, 156, PP: 251-260.
26
27- Soltani, F., 2014. Distribution and ecological risk assessment of heavy metals in surface sediments along southeast coast of the Caspian Sea. Iran. Marine Pollution Bulletin 81, PP: 262–267.
27
28- Sundaram, S., Deshmukh, D., and Raje, G., 2010. Population eruption of sunset shell Siliqua radiata (Linnaeus, 1758) along Versova beach in Mumbai. Jouranl of Mrine Biology Assessment, 52)1(, PP: 99-101.
28
29- Vesali Naseh, M. R., Karbassi, A., Ghazaban, F., and Baghvand, A., 2012. Evaluation of heavy metal pollution in Anzali wetland, Guilan, Iran. Iranian Journal of Toxicology, 5(15), PP: 565-576.
29
30- Vives, A. E. S. D., Brienza, S. M. B., Moreira, S., Zucchis, O. L., Barroso, R. C., and Filho, V. F. N., 2007. Evaluation of the availability of heavy metals in lake sediments using SRTXRF. Nuclear Instruments and Methods in Physics Research, 579, PP: 503-506.
30
31- Yap, C. K., Bakhtiari, A. R., and Cheng, W. H. 2017. Impacts of Marine Pollution and Toxicology: A Mussel Watch Experience in Peninsular Malaysia. J Aquat Pollut Toxicol, 1(1).
31
32- Yap, C. K., Ismail, A., Tan, S. G., and Abdul Rahim, I., 2003. Can the shell of the green-lipped mussel Perna viridis from the west coast of Peninsular Malaysia be a potential biomonitoring material for Cd, Pb and Zn. J. Estuarine, Coastal and Shelf Science, 57, PP: 623 -630.
32
33- Yousefi, Z., Mohammadpour, R., Tahamtan, A., Salehi, M., 2013. The efficiency of bivalve mollusk shell in removal of Pb (II) from aqueous solutions by central composite design model (CCD) and optimization of effective parameters. J Mazand Univ Med Sci, 23(108), PP: 54-67 (in Persian).
33
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه تنوع ریختی جمعیت های قورباغه جنگل هیرکانی (Rana pseudodalmatina, Eiselt and Schmidtler, 1971)
گونه R. pseudodalmatina در جنگل های پست حاشیه جنوبی دریای خزر پراکنش گسترده دارد. علی رغم این محدودهی پراکنش گسترده، جمعیت های این قورباغه های قهوه ای بومی به جز تعدادی محدود، از لحاظ ریخت شناسی در مطالعات مورد توجه قرار نگرفته اند. در این پژوهش با نمونه برداری گسترده از کل محدوده پراکنش قورباغهی قهوهای جنگلهای هیرکانی به ارزیابی ساختار تغییرات جغرافیایی صفات در جمعیت ها پرداخته شد. بدینمنظور 53 نمونه جمع آوری و 13 صفت ریختی اندازشی مورد بررسی قرار گرفت. اهمیت آماری وجود دوریختی جنسی بین جمعیتهای قورباغهی هیرکانی به کمک آزمون آماری ANOVA با مقایسه تفاوت میانگینهای هر صفت بین دو جنس نر و ماده و همچنین آنالیز واریانس چندمتغییره (MANOVA) با مقایسه میانگینهای بردار صفات دو جنس مورد بررسی قرار گرفت. الگوی ارتباطات فنتیکی بین جمعیت ها به کمک آزمون های ANOVA یک طرفه، تحلیل مؤلفه اصلی (PCA)، تحلیل توابع ممیزی (DFA) و آنالیز خوشه بندی با الگوریتم UPGMA انجام شد. نتایج آزمون آماری ANOVA برای وجود دوریختی جنسی در گونه R. pseudodalmatina نشان داد که پنج صفت بین دو جنس بطور معنادار با یکدیگر تفاوت دارند. همچنین آزمون MANOVA نیز به طور معنادار وجود دوریختی جنسی را در گونه R. pseudodalmatina تأیید کرد (P≤ 0.05). مطالعات ریخت شناسی در سطح درون گونه ای نشان داد که دست کم دو جمعیت اصلی از قورباغه های جنگلی (R. pseudodalmatina) یکی در شرق دریای خزر (لوه، بهشهر و ساری) و دیگری در غرب دریای خزر (سلمان شهر، لنگرود، رشت و آستارا) پراکنش دارند.
https://animal.ijbio.ir/article_1414_f1975cc27ee4ef1091617a3c2c1c9778.pdf
2019-08-23
148
164
رانیده
قورباغه جنگل های هیرکانی
تغییرات ریختی
ساختار جمعیت
معصومه
نجیب زاده
masoumeh.najibzadeh@gmail.com
1
دانشگاه رازی، دانشکده علوم، گروه زیست شناسی، کرمانشاه
LEAD_AUTHOR
علیرضا
پسرکلو
a.pesarakloo@gmail.com
2
دانشگاه اراک، دانشکده علوم، گروه زیست شناسی، اراک 38156-8-8349
AUTHOR
احمد
قارزی
adgharzi@razi.ac.ir
3
دانشگاه رازی، دانشکده علوم، گروه زیست شناسی، کرمانشاه
AUTHOR
نصراله
رستگار پویانی
n.rastegar@razi.ac.ir
4
دانشگاه رازی، دانشکده علوم، گروه زیست شناسی، کرمانشاه
AUTHOR
اسکندر
رستگار پویانی
rastegarpouyani45@gmail.com
5
دانشگاه حکیم سبزواری، دانشکده علوم، گروه زیست شناسی، سبزوار
AUTHOR
1. بلوچ، م.، و کمی، ح.، 1373. دوزیستان ایران، دانشگاه تهران، موسسه انتشارات و دانشگاه تهران، چاپ اول، صفحات 160-159.
1
2. پسرکلو، ع.، قارزی، ا.، کمی، ح.، و نجیبزاده، م.، 1391. مطالعه زیستشناسی تولیدمثل در قورباغه جنگلی در استان گلستان (مینودشت)، مجله زیستشناسی ایران، 25(1)، صفحات55-63.
2
3. پسرکلو، ع.، 1394. مطالعه کمپلکس Rana ridibundus در ایران با کمک دادههای ریختی، مولکولی و اکولوژیکی، پایاننامه دکتری، گروه زیستشناسی، دانشکده علوم، دانشگاه رازی، شماره صفحه 91.
3
4. پسرکلو، ع.، قارزی، ا.، کمی، ح.، و همایونی، م.، 1390. مطالعه چندریختی رنگی در قورباغه مردابی در استان گلستان، مجله زیستشناسی ایران،24 (3)، صفحات 446-455.
4
5. نجیب زاده، م.، 1389. مطالعه بیوسیستماتیکی بی دمان استان لرستان، پایاننامه کارشناسی ارشد، گروه زیستشناسی، دانشکده علوم، دانشگاه فردوسی، شماره صفحه 115.
5
6. Akhani, H., Djamali, M., Ghorbanalizadeh, A., and Ramezani, E., 2010. Plant biodiversity of Hyrcanian relict forests, Iran: an overview of the flora, vegetation, palaeoecology and conservation. Pakistan Journal of Botany,Special Issue (S.I. Ali Festschrift), 42, PP: 231-258.
6
7. Baran, I., and Atatür, M. K., 1998. Turkish herpetofauna (amphibians and reptiles).Turkish Ministry of Environment, Ankara.
7
8. Castellano, S., Giacoma, C., and Dujsebayeva, T., 2000. Morphometric and advertisement call geographic variation in polyploidy green toads. Biological Journal of the Linnean Society, 70, PP: 341–360.
8
9. Dayrat, B., 2005. Towards integrative taxonomy. Biological Journal of the Linnean Society, 85(3), PP: 407–415. doi:10.1111/j.1095-8312.2005.00503.x.
9
10. Dubois, A., 1986. Diagnose pre´liminaire d’un nouveau genre de Ranoidea (amphibiens, anoures) du sud de l’Inde. Alytes, 4, PP: 113–118.
10
11. Feng, X., Chen, W., Junhua, H. U., and Jiang, J., 2015. Variation and Sexual Dimorphism of Body Size in the Plateau Brown Frog along an Altitudinal Gradient. Asian Herpetological Research, 6(4), PP: 291–297.
11
12. Gasc, J. P., Cabela, A., Crnobrnja-Isailovic, J., Dolmen, D., Grossenbacher, K., Haffner, P., Lescure, J., Martens, H., Martiinez-Rica, J. P., Maurin, H., Oliveira, M. E., Sofianidou, T. S., Veith, M., and Zuiderwijk, A., 1997. Atlas of amphibians and reptiles in Europe. Societas Europaea Herpetologica and Museum national d_Histoire naturelle. Paris, PP: 1–496.
12
13. Geraghty, P. T., Williamson, J. E., Macbeth, W. G., Wintner, S. P., Harry, A. V., Ovenden, J. R., and Gillings, M. R., 2013. Population Expansion and Genetic Structure in Carcharhinus brevipinna in the Southern Indo-Pacific. PLoS ONE. 8(9): e75169. doi:10.1371/journal.pone.0075169.
13
14. Jafari, S. M., Zarre, S., and Alavipanah, S. K., 2013. Woody Species Diversity and Forest Structure from Lowland to Montane Forest in Hyrcanian Forest Ecoregion. Journal of Mountain Science, 10(4), PP: 609–620.
14
15. Lee, J. C., 1993. Geographic variation in size and shape of Neotropical frogs: A precipitation gradient analysis. Occasional Papers of the Museum of Natural History, University of Kansas, 163, PP: 1–20.
15
16. Liao, W. B., Zeng, Y., Zhou, C. Q., and Jehle, R., 2013. Sexual size dimorphism in anurans fails to obey Rensch’s rule. Frontiers in Zoology, doi: 10.1186/1742-9994-PP: 10-10.
16
17. Lowe, K., and Hero, J. M., 2012. Sexual Dimorphism and Color Polymorphism in the Wallum Sedge Frog (Litoriaolongburensis). Herpetological Review, 43, PP: 236–240.
17
18. Mendelson, J. R., 1998. Geographic variation in Bufo valliceps (Anura: Bufonidae), a widespread toad in the United States and Middle America. Scientific Papers of the Natural History Museum. The University of Kansas,8, PP: 1–12.
18
19. Miller, A. G., 1994. Hyrcanian forests, Iran and Azerbaijan. In: Davis, S.D., Heywood, V.H. and Hamilton, A.C. (eds.) Centres of Plant Diversity, a Guide and Strategy for their Conservation Oxford, IUCN, 1, PP:343-344.
19
20. Monnet, J. M., and Cherry, M. I., 2002. Sexual size dimorphism in anurans. Proceedings of the Royal Society of London, Series B, 269, PP: 2301-2307.
20
21. Najibzadeh, M., Gharzi, A., Rastegar-Pouyani, N., Rastegar-Pouyani, E., and Pesarakloo, A., 2017(b). Habitat Suitability for the Habitat suitability and patterns of sex-biased migration of the Iranian long-legged wood frog, Rana pseudodalmatina (Anura: Ranidae). Biologia, 72(6), PP: 686-693.
21
22. Najibzadeh, M., Veith, M., Gharzi, A., Rastegar-Pouyani, N., Rastegar-Pouyani, E., Kieren, S., and Pesarakloo, A., 2017(a). Molecular phylogenetic relationships among Anatolian-Hyrcanian brown frog taxa (Ranidae: Rana). Amphibia-Reptilia, 38, PP: 339-350.
22
23. Okulova, N., Borkin, L. Y., Bogdanov, A. S., and Guseva, A. Y., 1997. The green grogs in Levanovo provinces. Advances in Amphibian research in the former. 2, PP: 71-97.
23
24. Palumbi, S. R., 1994. Genetic divergence, reproductive isolation, and marine speciation. Annual Review of Ecology and Systematics. 25: 547-572. doi: 10.1146/ annurev.es.25.110194.002555.
24
25. Plötner, J., Becker, C., and Plötner, K., 1994. Morphometric and DNA investigations into European water frogs (Rana kl. esculentaSynklepton?? (Anura, Ranidae)) From different population systems. Journal of zoological systematics and evolutionary research. 32, PP: 193-210.
25
26. Rastegar-Pouyani, N., Takesh, M., Fattahi, A., and Browne, R., 2013. Sexual size dimorphism in the yellow-spotted newt, Neurergus microspilotus Nesterov, 1916 (Caudata: Salamandridae), from Kermanshah province, western Iran. Russian Journal of Herpetology,20, PP: 51 – 55.
26
27. Riedel, A., Sagata, K., Suhardjono, Y. R., Tänzler, R., and Balke, M., 2013. Integrative taxonomy on the fast track – towards more sustainability in biodiversity research. Frontiers in Zoology. 10(15). doi: 10.1186/1742-9994-10-15.
27
28. Rissler, L. J., and Apodaca, J. J., 2007. Adding more ecology into species delimitation: ecological niche models and phylogeography help define cryptic species in the black salamander (Aneides flavipunctatus). SystematicBiology, 56, PP: 924–942.
28
29. Sinsch, U., and Schneider, H., 1999. Taxonomic reassessment of Middle Eastern water frogs: Morphological variation among populations considered asRana ridibunda, R. bedriagaeor, R. levantina. Journal of Zoological and Systematic Evolulation Resarch, 37, PP: 67–74.
29
30. Todd, B. D., Luhring, T. M., Rothermel, B. B., and Gibbons, J. W., 2009. Effects of forest removal on amphibian migrations: implications for habitat and landscape connectivity. Journal of Applied Ecology, 46, PP: 554–561.
30
31. Wiens, J. J., Parra-Olea, G., Garcia-Paris, M., and Wake, D. B., 2007. Phylogenetic history underlies elevational biodiversity patterns in tropical salamanders. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 274(1612), PP: 919–928. doi:10.1098/rspb.2006.0301.
31
32. Yanko-Hombach, V., Kroonenberg, S., and Leroy, S. A. G., 2010. Caspian-Black Sea-Mediterranean Corridors during the last 30 ka: Sea level change and human adaptive strategies proceedings of IGCP 521 and 481 INQUA 501 Third Plenary Meeting and Field Trip. Quaternary International.doi: 10.1016/ j.quaint.2010.06 .014.
32