ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تأثیر توأم متفورمین و زهرزنبور بر بلوغ آزمایشگاهی فولیکولهای پره آنترال موش
متفورمین سالهاست که جهت کنترل دیابت نوع 2 استفاده می شود. این دارو همچنین در بهبود بیماران سندرم پلی کیستیک تخمدان(PCOS)، اعاده سیکلهای قاعدگی و القای اوولاسیون مؤثر بوده است. مطالعات نشان می دهد متفورمین از طریق فعال کردن پروتئین کیناز فعال شونده توسط آدنوزین مونو فسفات (AMPK)می تواند موجب پیشروی بلوغ میوزی تخمکهای موش در محیط in vitro گردد. زهرزنبور ترکیبی پیچیده از آنزیمها، پروتئین، پپتید و سایتوکین ها است. مطالعات in vivo ما در تحقیقات قبلی حاکی از اثرات درمانی زهرزنبور بر بیماران PCOS و تکوین فولیکولهای تخمدان می باشد. با فرض تأثیر این دو بر رشد و میزان ماندگاری فولیکولهای تخمدان موش و نیز نرخ بلوغ تخمکها هدف این تحقیق بررسی اثر توأم متفورمین و زهرزنبور بوده است. بدین منظور فولیکولهای نابالغ از تخمدان موشهای 14 روزه خارج و در محیط کشت قطره ای α-MEM تحت روغن مینرال به مدت 14 روز کشت داده شد. متفورمین و زهرزنبور به طور جداگانه و نیز به صورت همزمان به محیط کشت فولیکول اضافه شد. قطر فولیکولها تا روز چهارم کشت و نیز میزان ماندگاری آنها به صورت هر دو روز یکبار بررسی و مورد سنجش میکروسکوپی قرار گرفتند. در روز دوازدهم به منظور القای اوولاسیون از hCG و rEGF استفاده شد و وضعیت تخمکهای اووله شده بررسی گردید. یافته ها نشان داد که قطر فولیکولها در روز دوم کشت در اثر تیمار با متفورمین)01/0< (P ، زهرزنبور)05/0< (P و در گروه توأم )05/0< (P به طور معنی داری افزایش یافت. در روز چهارم کشت نیز رشد فولیکولها در گروه متفورمین )001/0< (P، زهرزنبور)05/0< (P و در گروه توأم )01/0< (P افزایش معنی داری را نشان داد. درصد ماندگاری فولیکولها در هیچکدام از گروههای تیمار شده معنی دار نبود. درصد تخمکهای GV در گروه متفورمین)001/0< (P ، زهرزنبور)01/0< (P و در گروه تیماری توأم )01/0< (P به طور معنی داری کاهش یافت و در مقابل بر تعداد تخمکهای MІ و MІІ (مرحله متافاز І و ІІ) در هر سه گروه تیماری افزوده شد؛ هرچند که این افزایش معنی دار نبود. در ضمن اختلاف معنی داری در میزان تشکیل حفره آنتروم میان گروهها مشاهده نشد. بنابراین یافته های این تحقیق می تواند مؤید تأثیر همزمان متفورمین و زهر زنبور بر افزایش رشد فولیکولهای تخمدان در محیط in vitro و نیز افزایش پیشروی و بلوغ میوزی تخمک باشد که بر روی هم موجب آمادگی بیشتر آن برای لقاح می شود.
https://animal.ijbio.ir/article_227_ba613f58c15b14b7186f04f42666fa36.pdf
2013-11-22
228
236
2631
زهر زنبور
فولیکولهای پره آنترال
متفورمین
کشت و بلوغ آزمایشگاهی فولیکولهای تخمدان
1- محسنی کوچصفهانی هما، نبیونی محمد، ادهم حامد. 1388، بررسی اثر سم زنبور عسل بر سندرم تخمدان پلی کیستیک در موش آزمایشگاهی بزرگ. پژوهنده (مجله پژوهشی دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی)، 73، 1.
1
2- Ali A, Mostafa M, Hamed W, Mekled A. 2003; Bee venom treatment of refractor pregnancy: A modern trend. Fertil Steril. 80(3): 112 3- Ali AFM , Fateen B, Ezzet A, Badawy H, Ramadan A, El-tobge A. 2000; Laparoscopic bilateral intraovarian injection of misoprostol for treatment of polycystic ovarian disease. Endocrinology. 95(4): 15 4- Ali AFM, Mostafa M, Hamed WM, AbdelRahman AE. 2002; Laparoscopic intratubal bee venom in the treatment of proximal tubal obstruction: a new modality. Fertil Steril. 78(1):172-173 5- Ali AFM, Mostafa M, Gaafar A, El-Shayeb S, El-Bashir Z. 2003a; Comparative study between bee venom and gonadotrophins for follicular development of immature rats. Fertil Steril. 80(3): 259 6- Ali AFM, Mostafa M, Gaafar A, El-shyeb S, El-bashir Z. 2003b; Bee venom promotes in vivo follicular development of immature rats. Fertil Steril, 80(3): 264-265 7- Armstrong DG, Webb R. 1997; Ovarian follicular dominance: the role of intraovarian growth factors and novel proteins. Rev Reprod, 2(3): 139-146 8- Bishonga C, Takahashi Y, Katagiri S, Nagano M, Ishikawa A. 2001; In viro growth of mouse ovarian preantral follicles and the capacity of their oocytes to develop to the blastocyst stage. J Vet Med Sci. 63(6): 619-624 9- Chen J, Hudson E, Chi MM, Chang AS, Moley KH, Hardie G, Downs SM. 2006; AMPK regulation of mouse oocyte meiotic resumption in vitro. Developmental Biology. 291: 227-238 10- Conti M, Andersen CB, Richard F, Mehats C, Chun SY, Horner K, Jin C, Tsafiri A. 2002; Role of cyclic nucleotide signaling in oocyte maturation. Mol Cell Endocrinol. 187:153–159 11- Cortvrindt R, Smitz J, Van Steirteghem AC. 1996; In vitro maturation, fertilization and embryo development of immature oocytes from early preantral follicles from prepuberal mice in a simplified culture system. Human Reproduction. 11: 2656-2666 12- Downs SM, Chen J. 2006; Induction of meiotic maturation in mouse oocytes by adenosine analogs. Mol Reprod Dev. 73: 1159-1168
2
13- Downs SM, Hudson ER, Hardie DG. 2002; A potential role for AMP-activated protein kinase in meiotic induction in mouse oocytes. Dev Biol. 245: 200-212
3
Holland W, Morrison T, Chang Y, Wiernsperger N, Stith BJ. 2004; Metformin 14-(Glucophage) inhibits tyrosine phosphatase activity to stimulate the insulin receptor tyrosine kinase. Biochem Pharmacol. 67: 2081-2091
4
15- Hundal RS, Inzucchi SE. 2003; Metformin: new understandings, new uses. Drugs. 63: 1879-1894
5
16- Lee MS, Kang SK, Lee BC, Hwang WS. 2005; The beneficial effects of insulin and metformin on in vitro developmental potential of porcine oocytes and embryos. Biology of Reproduction. 73(6): 1264-1268
6
17- Lord J, Wilkin T. Metformin in polycystic ovary syndrome. 2004; Curr Opin Obstet Gynecol. 16: 481-486
7
18- Mansfield R, Galea R, Brincat M, Hole D, Mason H. Metformin has direct effects on human ovarian steroidogenesis. Fertil steril. 2003, 79(4): 956-962
8
19- Sekine J, Sakurada T, Oura R. 1992; optimum temperate of ovary transportation for in vitro fertilization of bovine oocytes. Veterinary Records. 131: 1174-1178 20- Mitchell LM, Kennedy CR, Hartshorne GM. 2002; Effects of varying gonadotropin dose and timing on antrum formation and ovulation efficiency of mouse follicles in vitro. Hum Reprod. 17(5): 1181-1188
9
21- Nestler JE, Jakubowicz DJ, Evans WS, Pasquali R. 1998; Effects of metformin on spontaneous and clomiphene-induced ovulation in the polycystic ovary syndrome. N Engl J Med. 338: 1876-880
10
22- Smitz J, Cortvrindt R, Hu Y. 1998; Epidermal growth factor combined with recombinant human chorionic gonadotropin improves meiotic progression in mouse follicle-enclosed oocyte culture. Hum Reprod. 13(3): 664-669
11
23- Sonntag B, Götte M, Wülfing P, Schüring AN, Kiesel L, Greb RR. 2005; Metformin alters insulin signaling and viability of human granulosa cells. Ferti Steril. 84(2): 1173-1179
12
24- Thibault C. Hammond Memorial Lecture. 1977; Are follicular maturation and oocyte maturation independent processes? J Reprod Fertil. 51(1): 1-15
13
25- Velazquez E, Acosta A, Mendoza S. 1997; Menstrual cyclicity after metformin therapy in polycystic ovary syndrome. Obstet Gynecol. 90: 392-395
14
26- Zhou G, Myers R, Li Y, Chen Y, Shen X, Fenyket J. 2001; Role of AMP-activated protein kinase in mechanism of metformin action. J Clin Invest. 108: 1167–1174
15
ORIGINAL_ARTICLE
سنجش و مقایسه غلظت کادمیوم در بافت عضله و هپاتوپانکراس ماهی مرکب ببری (Sepia pharaonis) و اسکوئید هندی (Uroteuthis duvauceli) خلیج فارس
در این مطالعه غلظت عنصر کادمیوم در بافت عضله و هپاتوپانکراس ماهی مرکب ببری (Sepia pharaonis) و اسکوئید هندی (Uroteuthis duvauceli) اندازهگیری شد. برای انجام این تحقیق تعداد 30 عدد از هر گونه در دی ماه 1387 از آبهای دور از ساحل استان هرمزگان به روش صید ترال کف جمع آوری گردید. برای هضم شیمیایی نمونه ها از ترکیب اسید نیتریک و اسید پرکلریک استفاده گردید و برای اندازه گیری کادمیوم از روش جذب اتمی استفاده شد. براساس نتایج حاصله، میانگین غلظت کادمیوم در بافت عضله و هپاتوپانکراس ماهی مرکب به ترتیب μg/g 58/0 و 22/417 و در عضله و هپاتوپانکراس اسکوئید هندی به ترتیب μg/g 35/0 و 9/25 به دست آمد. همچنین نتایج نشان داد که غلظت کادمیوم در هر دو گونه به صورت معنی داری در هپاتوپانکراس بیشتر از عضله می باشد (001/0>P) و بیشترین غلظت کادمیوم نیز در هپاتوپانکراس ماهی مرکب مشاهده شد که علت آن را میتوان به کفزی بودن این گونه نسبت داد.
https://animal.ijbio.ir/article_228_ab90a46fdd488d398abbf345d5580548.pdf
2013-11-22
237
244
2632
کادمیوم
عضله
هپاتوپانکراس
ماهی مرکب ببری
اسکوئید هندی
1. اسماعیلی ساری، ع، 1381. آلایندهها، بهداشت و استاندارد در محیط زیست، انتشارات نقش مهر، 767 صفحه.
1
2. شهریاری، ع، 1382. اندازه گیری مقادیر فلزات سنگین کادمیوم،کروم، سرب و نیکل در بافت خوراکی ماهیان شوریده و سرخو خلیج فارس در سال 1384، مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی گرگان، جلد2: 67-65.
2
3. ناصری، م. رضایی، م. عابدی، ع. و افشار نادری، ا. 1384. سنجش مقادیر برخی عناصر سنگین (آهن، مس، روی، منیزیم، منگنز، جیوه، سرب و کادمیم) در بافتهای خوراکی و غیرخوراکی ماهی کفال پشت سبز (Liza dussumieri) سواحل بوشهر، مجله علوم دریایی ایران، جلد3: 67- 59.
3
4. Amin, B., Ismaeil, A., Arshad, A., Yap, C.K., and Kamarundin, M.S., 2009. Gastropod Assemblages as Indicators of Sediment Metal Contamination in Mangroves of Dumai Sumatra, Indonesia, Water Air and Soil Pollution, Vol. 201: 9-11.
4
5. Blevins, R.D., and Pancorbo, O.C., 1986. Metal Concentration in Muscle of Fish From Aquatic System in East Tennessee, U.S.A. Water, Air and Soil Pollution, Vol. 29: 361-371.
5
6. Burger, J., and Gochfeld, M., 2005. Heavy Metals in Commercial Fish in New Jersey, Journal of Environmental Research, Vol. 99: 403-412.
6
7. Bustamante, P., Caurant, F., Fowler, S.W., and Miramand, P., 1998. Cephalopods as a Vector for the Transfer of Cadmium to Top Marin predators in the North-east Atlantic Ocean. The Science of the Total Environment, Vol. 220: 71-80.
7
8. Bustamante, P., Cosson, R.P., Gallien, I., Caurant, F., and Miramand, P., 2002. Cadmium Detoxification Processes in the Digestive Gland of Cephalopods in Relation to Accumulated cadmium Concentrations. Marin Environmental Research, Vol. 53: 227-241.
8
9. Bustamante, P., Gonzalez, A.F., Rocha, F., Miramand, P., and Guerra, A., 2008. Metal and Metalloid concentrations in the Giant Squid Architeuthis Dux from Iberian Waters. Marin Environmental Research, Vol. 66: 278-287.
9
10. Duruibe, J.O., Ogwuegbu, M.O.C., and Egwurugwu, J.N., 2007. Heavy Metal Pollution and Human Biotoxic Effects. International Journal of Physical Sciences, Vol. 2: 112-118.
10
11. Emami khansari, F., Ghazi khansari, M., and Abdollahi, M., 2005. Heavy Metals Content of Conned Tuna Fish. Food Chemistry, Vol. 93: 293-296.
11
12. Endo, T., Hisamichi, Y., Kimura, O., Haraguchi, K., and Baker, C.S., 2008. Contamination Levels of Mercury and Cadmium in Melon-Head Whales (Peponocefala electra) from a Mass Stranding on Japaneas Coast. Journal of Environmental Pollution, Vol. 135: 163-170.
12
13. Junior, R.G.S.L., Araujo, F.G., Maia, M.F., and Pinto, A.S.S.B., 2002. Evaluation of Heavy Metals in Fish of the Sepetiba and Ilha Grande Bays, Rio de Janeiro, Brazil. Environmental Research, Vol. 89: 171-179.
13
14. Miramand, P., and Bentley, D., 1992. Concentration and Distribution of Heavy Metals in Tissuse of Two Cephalopods, Eledone cirrhosa and Sepia officinalis, From the French Coast of the English channel. Marin Biology, Vol. 114: 407-414.
14
15. Pereira, P., Raimundo, J., Vale, C., and Kadar, E., 2009. Metal Concentrations in Digestive Gland of Portugal. Science of the Total Environment, Vol. 407: 1080-1088.
15
16. Pierce, G.J., Stowasser, G., Hastie, L.C., and Bustamante, P., 2008. Geographic, Seasonal and Ontogenetic Variation in Cadmium and Mercury Concentrations in Squid (Cephalopodas: Teuthoidea) from UK Waters. Ecotoxicology and Environmental Saftey, Vol. 70: 422-432.
16
17. Prafulla, V., Francis, L., and Lakshmanan, P.T., 2001. Concentration of Trace Metals in the Squids, Loligo duvauceli and Doryteuthis sibogae Caught from the Southwest Coast of India. Asian Fisheries Science, Vol. 14: 399-410.
17
18. Romeo, M., Siau, Y., Sidoumou, Z., and Barelli, M.G., 1999. Heavy Metal Distribution in Different Fish Species from the Mauritania Coast, The Science of the Total Environment, Vol. 232: 169-175.
18
19. Raimundo, J., Vale, C., Duarte, R., and Moura, I., 2008. Sub-cellular Partitioning of Zn, Cu, Cd and Pb in the Digestive Gland of Native Octopus vulgaris Exposed to Different Metal Concentrations (Portugal). Science of the Total Environment, Vol. 390: 410-416.
19
20. Storelli, M.M., Giacominelli-Stuffler, R., Storelli, A., and Marcotrigiano, G.o., 2006. Cadmium and Mercury in Cephalopod Molluscs: Estimated Weekley Intake. Food Additives and Contaminants, Vol. 23: 25-30.
20
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه اثرات پری¬بیوتیک ایمنواستر بر فاکتورهای بیومتریک با تأکید بر وزن و طول و تشخیص افتراقی لوکوسیت¬ها در بچه¬ماهیان انگشت¬قد ماهی ¬سفید دریای¬ خزر (Rutilus kutum)
پریبیوتیک ایمنواستر در سطوح صفر، 2 و 4 درصد با هدف بررسی مشخصههای وزن و طول و تغییرپذیری لوکوسیتهای خونی بچهماهی سفید با وزن اولیّه 02/0± 35/0 گرم به مدت 8 هفته مطالعه شد. آزمایش با استفاده از طرح کاملاً تصادفی در قالب 1 گروه شاهد و 2 تیمار آزمایشی هر یک با 3 تکرار و به تعداد 150 عدد بچهماهی در هر تانک انجام شد. غذادهی20-15 درصد توده زنده متغیّر بود. در پایان آزمایش اگرچه میانگین وزنی و طولی بین شاهد و تیمارهای آزمایشی اختلاف معنیدار نداشت (P > 0.05)، امّا تفاوت مثبت و معنیداری در تشخیص افتراقی لوکوسیتها مشاهده شد (P ≤ 0.01). لذا، با افزایش سطح ایمنواستر در جیره درصد لنفوسیت افزایش و بترتیـب درصد مونوسیت، نوتروفیل و ائوزینوفیل کاهش معنیداری یافت. بطوری که، سطح ایمنواستر 4 درصد دارای بیشترین میزان لنفوسیت و کمترین مقدار مونوسیت، نوتروفیل و ائوزینوفیل بود (P ≤ 0.01). نتـایج حاصله مشخّص ساخت سطوح مورد مطالعه پریبیوتیک ایمنواستر تأثیر قابل توجّهی بر عملکرد رشدی در بچهماهیان سفید نداشته، درحالی که بعنوان یک محرّک ایمنی قادر است تأثیر مثبت و معنیداری را بر لوکوسیتهای خون و افزایش راندمان لنفوسیتها بعنوان یکی از شاخصهای مهم ایمنی اختصاصی سلّولی ایفا نماید.
https://animal.ijbio.ir/article_229_936b215abc7e7899165c7cf826f2605e.pdf
2013-11-22
245
254
2633
پری¬بیوتیک ¬ایمنواستر
بیومتریک
لوکوسیت¬ها
ماهی ¬سفید (Rutilus kutum)
1. اکرمی، ر.، قلیچی، ا. و احمدیفر، ا. ، 1390. تأثیر پربیوتیک اینولین جیره غذایی بر پارامترهای هماتولوژی و بیوشیمی سرم خون فیلماهیان (Huso huso) جوان پرورشی. مجله تحقیقات دامپزشکی، دوره 66، شماره 2، صفحات 131-136.
1
2. اکرمی، ر.، کریمآبادی، ع.، محمدزاده، ح. و احمدیفر، ا. ، 1388. تأثیر پربیوتیک مانانالیگوساکارید بر رشد، بازماندگی، ترکیب بدن و مقاومت به تنش شوری در بچهماهی سفید (Rutilus frisii kutum). مجله علوم و فنون دریایی، دوره 8، شماره 3 و 4، صفحات 47-57.
2
3. رضوی صیّاد، ب. ، 1378. مقدمهای بر اکولوژی دریای خزر. انتشارات مؤسّسه تحقیقات شیلات ایران. صفحه90.
3
4. شیخ الاسلامیامیری، م.، یوسفیان، م.، یاوری، و.، صفری، ر. و قیاسی، م. ،1390. بررسی تأثیر پریبیوتیک اینولین بر فاکتورهای سیستم ایمنی و مقاومت ماهی قزلآلای رنگینکمان (Walbaum, 1972 Oncorhynchus mykiss) در برابر باکتری بیماریزای استرپتوکوک. مجله زیست شناسی ایران، دوره 24، شماره 2، صفحات 303-312.
4
5. عامری مهابادی، م. ، 1378. روشهای آزمایشگاهی هماتولوژی دامپزشکی. انتشارات و چاپ دانشگاه تهران. صفحه126.
5
6. غنینژاد، د.، مقیم، م.، عبدالملکی، ش. و صیّادبورانی، م. ، 1379. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی دریای خزر در سال 79-78. انتشارات مرکز تحقیقات شیلاتی استان گیلان، بندرانزلی، صفحه 98.
6
7. Cerezuela, R., Cuesta, A., Meseguer, J. & Esteban, M. A. 2008. Effects of inulin on gilthead seabream (Sparus aurata L.) innate immune parameters. Fish Shellfish Immunol., 24, 663–668.
7
8. Ebrahimi, G. 2010. Effects of prebiotic supplementation on survival, growth performance and feed utilization of kutum, Rutilus frisii kutum (Kamenskii 1901). Research Journal of Animal Sciences 4(6): 125-129
8
9. Gibson, G.R. & Roberfroid, M.B. 1995. Dietary modulation of the human colonic microbiota: introducing the concept of prebiotics. J. Nutr., 125, 1401–1412.
9
10. He, S., Xu, G., Wu, Y., Weng, H. & Xie, H. 2003. Effects of IMO and FOS on the growth performance and non-specific immunity in hybrid tilapia. Chinese Feed, 23, 14–15. (In Chinese).
10
11. Hoseinifar, S. H., Mirvaghefi, A., Merrifield, D. L., Mojazi Amiri, B., Yelghi, S. & Darvish Bastami, K. 2011. The study of some haematological and serum biochemical parameters of juvenile beluga (Huso huso) fed oligofructose. Fish Physiol. Biochem., 37, 91–96.
11
12. Kihara M., Ohba, K. & Sakata, T., 1995. Trophic effect of dietary lactosucrose on intestinal tunica muscularis and utilization of this sugar by gut microbes in red seabream (Pagrus major) a marine carnivorous teleost, under artificial rearing. Comp. Biochemistry. Physiology. A: Physiology 112, 629-634.
12
13. Mahious, A.S. & Ollevier, F., 2005. Probiotic and prebiotic in aquaculture: Review. Lst Rrgional Workshop on Techniques for Enrichment of Life Food for used in Larviculture, AAARC, Urmia, Iran pp. 17-26.
13
14. Olsen, R. E., Myklebust, R., Kryvi, H., Mayhew, T. M. & Ringø, E. 2001. Damaging effect of dietary inulin on intestinal enterocytes in Arctic charr (Salvelinus alpinus L.). Aquacult. Res., 32, 931- 934.
14
15. Pryor, G. S., Royes, J. B., Chapman, F .A. & Miles, R. D. 2003. Mannanoligosaccharides in fish nutrition: effects of dietary supplementation on growth and gastrointestinal villi structure in gulf of Mexico sturgeon. N. Am. J. Aquac., 65, 106–111.
15
16. Rehulka, J., Minowk, B., Adamec, V. & Rehulka, E. 2005. Investigation of physiological and pathological levels of total plasma protein in rain bow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquacult. Res., 36, 22-32.
16
17. Sado, R.Y., Almeida Bicudo, A.J.D. & Cyrino, J.E.P. 2008. Feeding dietary mannan oligosaccharides to juvenile Nile tilapia, Oreochromis niloticus, has no effect on haematological parameters and showed decreased feed consumption. J. World Aquac. Soc., 39, 821–826.
17
18. Samrongpan, C., Areechon, N., Yoonpundh, R. & Sirsapoome, P. 2008. Effect of mannan-oligosaccharides on growth, survival and disease resistance of Nile tilapia (Oreochromis niloticus Linnaeus) fry. 8th International Symposium on Tilapia in Aquaculture 2008. 345-353.
18
19. Shamlufar, M., Akrami, R. & Soleymani, N. 2010. Effect of mannan oligosaccharide (MOS) on some hematological parameters of common carp (Cyprinus carpio) fingerling. 2nd International Congress on Aquatic Animal Health Management and Diseases. October 26-27th; 2010, Tehran, Iran, Veterinary Council I.R. IRAN, p. 126.
19
20. Sink,T. D. & Lochmann, R. T. 2008. Preliminary observations of mortality reduction in stressed, Flavobacterium columnare – challenge golden shiners after treatment with a dairy–yeast prebiotic. N. Am. J. Aquac., 70, 192–194.
20
21. Sink, T. D., Lochmann, R. T., Goodwin, A. E. & Marecaux, E. 2007. Mortality rates in golden shiners fed high-fat diets with or without a dairy–yeast prebiotic before challenge with Flavobacterium columnare. N. Am. J. Aquac., 69, 305–308.
21
22. Staykov, Y., Spring, P., Denev, S. & Sweetman, J. 2007. Effect of a mannan oligosaccharide on the growth performance and immune status of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquacult. Int., 15, 153–161.
22
23. Staykov, Y., Denev, S. & Spring, P. 2005. Influence of dietary mannan oligosaccharides (Bio-Mos®) on growth rate and immune function of common carp (Cyprinus carpio L). In: Lessons from the Past to Optimise the Future (B. Howell and R. Flos, eds). European Aquaculture Society, Special Publication No 35, June 2005, pp. 431-432.
23
24. Ta'ati, R., Soltani, M., Bahmani, M. & Zamini, A. A. 2011. Effects of the prebiotics Immunoster and Immunowall on growth performance of juvenile beluga (Huso huso). J. Appl. Ichthyol., 27, 796-798.
24
25. Ta'ati, R., Soltani, M., Bahmani, M. & Zamini, A. A. 2011. Growth performance, carcass composition, and immunophysiological indices in juvenile great sturgeon (Huso huso) fed on commercial prebiotic, Immunoster. Iranian Journal of Fisheries Sciences 10(2): 324-335.
25
26. Torrecillas, S., Makol, A., Caballero, M. J., Montero, D., Robaina, L., Freal, F., Sweetman, J., Tort, L. & Izquierdo, M. S. 2007. Immune stimulation and improved infection resistance in European sea bass (Dicentrarchus labrax) fed mannan oligosaccharides. Fish Shellfish Immunol., 23, 969–981.
26
27. Welker, T. L., Lim, C., Yildirim-Aksoy, M., Shelby, R. & Klesius, P. H. 2007. Immune response and resistance to stress and Edwardsiella ictaluri challenge in channel catfish, Ictalurus punctatus, fed dcontaining commercial whole-cell yeast or yeast subcomponents. J. World Aquac. Soc., 38(1): 24–35.
27
28. Xu, B., Wang, Y., Li, J. & Lin, Q. 2009. Effects of prebiotic xylooligosaccharides on growth performance and digestive activities of allogynogenetic crucian carp (Carassius auratus gibelio). Fish Physiol. Biochem., 35, 351–357.
28
29. Yilmaz, E., Genc, M. A. & Genc, E. 2007. Effects of dietary mannanoligosaccharides on growth, body composition, and intestine and liver histology of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Isr. J. Aquacult-Bamid., 59, 182–188.
29
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی جایگزینی روغنهای گیاهی به جای روغن ماهی برای غنی سازی ناپلی Artemia urmiana و اثرات آن بر بازماندگی و رشد لارو ماهی قزل آلای رنگین کمان Oncorhynchus mykiss))
با توجه به اهمیت تغذیه اولیه در رشد، بازماندگی و کیفیت لارو آبزیان و نقش ناپلی آرتمیا به عنوان یک غذای زنده کیفی با قابلیت حمل مواد مغذی، در این تحقیق امکان جایگزینی روغن ماهی با روغنهای گیاهی برای غنی سازی ناپلی آرتمیا جهت تغذیه لارو ماهی قزل آلای رنگین کمان مورد بررسی قرار گرفت. لارو قزل آلا از ابتدای تغذیه خارجی تحت شش تیمار غذایی به مدت دو ماه پرورش داده شدند. تیمارهای غذایی طی 10 روز اول تحقیق شامل 1- غذای کنسانتره تجاری، 2- ناپلیوس غنی شده با روغن ماهی ، 3- ناپلیوس غنی شده با روغن آفتابگردان ، 4- ناپلیوس غنی شده با روغن کلزا ، 5- ناپلیوس غنی شده با روغن سویا ، 6- ناپلیوس تازه تخم گشایی شده بود. ولی از روز یازدهم تا پایان دوره کلیه ماهیها فقط با غذای کنسانتره تغذیه شدند. درصد بازماندگی در لاروهایی که با ناپلی غنی شده با روغن کلزا و روغن آفتابگردان تغذیه شده بودند به طور معنی داری بیشتر از لاروهایی بود که از غذای کنسانتره استفاده کرده بودند. رشد طولی، وزن تر و وزن خشک لاروها در کلیه تیمارهایی که با ناپلی آرتمیا تغذیه شده بودند به طور معنی داری بیشتر از ماهیانی بود که کنسانتره مصرف کرده بودند و لاروهایی که از ناپلی غنی شده با روغن کلزا تغذیه کرده بودند از رشد بیشتری برخوردار بودند. نتایج تحقیق نشان داد که روغنهای گیاهی می توانند نقش بسیار برجسته ای در غنی سازی ناپلی آرتمیا و تغذیه لارو قزل آلا ایفاء نمایند.
https://animal.ijbio.ir/article_230_f301eaa6819d24cc0584c7c3c9c2a3e3.pdf
2013-11-22
255
266
2634
قزل آلا
تغذیه آغازین
آرتمیا
غنی سازی
1- چگنی، ح.ر.، اسلامی، ع.ن.، احمدی فر، ا.، عظیمی، ع.، حسینی، س.ع و جلالی، م.ع. بهینه سازی زمان تغذیه لاروهای قزل آلا ی رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) از ناپلئوس آرتمیا و جیره تجاری. مجله زیست شناسی ایران، جلد 23، شماره 6، 1389، صفحه 866- 858.
1
2- آذری تاکامی، ق .مشکینی، س. رسولی، ع.امینی، ف.1383. بررسی اثرات تغذیه ای ناپلیوس های Artemia urmiana غنی شده با ویتامین C روی رشد، درصد بقا و مقاومت در برابر استرس های محیطی در لاروهای قزل آلای رنگین کمان.مجله پژوهش و سازندگی ، شماره 66. ص 25-32.
2
3- آذری تاکامی، ق.1379. بررسی پایداری اسیدهای چرب غیر اشباع بلند زنجیره طی غنی سازی آرتمیا با روغن ماهی مختلف و دوره های گرسنگی. گزارش نهایی طرح پژوهشی ، معاونت پژوهشی دانشگاه تهران، دانشکده منابع طبیعی. 31 ص.
3
4- اکبری، پ.، حسینی، س.ع.، ایمانپور، م.ر.، سوداگر، م و شالویی، ف. بررسی اثر ناپلئوس های آرتمیا ارومیانا(Artemia urmiana) غنی شده با اسیدهای چرب غیر اشباع بلند زنجیره و ویتامین C روی مقاومت در برابر تنش محیطی دما و کمبوداکسیژن در لاروهای قزل آلای رنگین کمان، مجله زیست شناسی ایران، شماره 4، پاییز 1387، صفحه 610-600.
4
5- جواهری، م.، متین فر، ع.، آق، ن. 1385. بررسی اثرات زیستی ناپلیوس آرتمیای غنی شده با اسیدهای چرب غیر اشباع زنجیر بلند به عنوان غذای آغازین برای لارو ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius). فصلنامه علمی – پژوهشی علوم طبیعی، سال سوم، شماره 11، بهار 1385.
5
6- حافظیه، م. 1388، مقایسه ترکیبات شیمیایی آرتمیا ارومیانا غنی شده با منابع و سطوح مختلف اسیدهای چرب غیر اشباع بلند زنجیره (HUFA ) در زمانهای مختلف،مجله علمی شیلات، شماره 1، 44 ص.
6
7- میرزاخانی، م. 1383. اثرات استفاده از آرتمیا غنی شده با اسیدهای چرب غیر اشباع بلند زنجیره و آرتمیای غنی نشده بر رشد و بازماندگی لاروهای قزل آلای رنگین کمان ( Oncorhynchus mykiss)، پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه تربیت مدرس تهران، 52 ص.
7
8- هوی، وای. اچ، 1996 . کتاب جربی ها و روغنهای خوراکی. ترجمه و تدوین مالک، ف. انتشارات فرهنگ و قلم، 1379. 448 ص.
8
9- Ahmadi , M.R., Leibovitz, H., Simpson, K.L., 1990. Nutrient composition of Iranian brine shrimp (Artemmia urmiana). Comp, Biochem. Physiol . vol 95 B. No. 2, pp: 225-228.
9
10- AOAC (Association of Official Analytical Chemists), 1990. Official Methods of Analysis. 15 Edn. AOAC, Washington, DC., USA.
10
11- Bengeston, D. A., Leger, Ph., Sorgeloos, P., 1991. Use of Artemia as a food source for aquaculture, PP: 250-280 In: Artemia Biology (Eds). Browne, R. A. Sorgeloos, P. and Trotman, C.N.A.CRC press Inc, Boca Raton, Florida, USA.
11
12- Drew, M.D., Ogunkoya, A.E., Janz, D.M., Van Kessel, A.G., 2007. Dietary influence of replacing fish meal and oil with canola protein concentrate and vegetable oils on growth performance, fatty acid composition and organochlorine residues in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 267: 260-268.
12
13 - Gills, H.S., Weatherley, A.H., 1984. Protein, lipid and caloric content of bluntnose minnow, Pimephales notatus rafinosque, during growth at different temperatures. J. Fish Biol, 25:491-500.
13
14- Gordon Bell, J., Mcevoy, J., Tocher, DR., Mcghee, F., Campell, P.J., Sargent, J.R., 2001. Replacement of fish oil with rapeseed oil in diets of atlantic salmon (salmo salar) affects tissue lipid composition and hepatocyte fatty acid metabolism. Journal of Nutrition, 131:1535-1543.
14
15- Grant, A. A. M., Baker, D., Higgs, D.A., Brauner, C.J., Richards, J.G., Balfry, S.K., Schulte, P.M., 2008. Effects of dietary canola oil level on growth, fatty acid composition and osmoregulatory ability of juvenile fall Chinook (Oncorhynchus tshawytscha). Aquaculture, 277, 303-312.
15
16- Hafezieh, M., Kamarudin, M.S., Bin Saad, C.R., Kamal Abd Sattar, M., Agh, N., Hosseinpour, H., 2009. Effect of enriched Artemia urmiana on growth, survival and composition of larval Persian sturgeon. Turkish Journal of fisheries and Aquatic sciences, 9: 201-207
16
17- Hafezieh, M., Kamarudin, M.S., Bin Saad, C.R., Kamal Abd Sattar, M., Agh, N., Valinasab, T., Sharifian, M., Hosseinpour, H., 2010. Effect of enriched Artemia urmiana on growth, survival and fatty acid composition of the Persian sturgeon larvae. Iranian Journal of Fisheries Sciences, 9(1): 61-72.
17
18- Huang, S.S.Y., Oo, A. N., Higgs, D.A., Brauner, C.J. and Satoh, S., 2007. Effects of dietary canola oil level on the growth performance and fatty acid composition of juvenile red sea bream, Pagrus major. Aquaculture, 271:420-431.
18
19- Huang, S.S.Y., Fu, C.H.L., Higgs, D.A., Balfry, S.K., Schulte, P.M., Brauner, C.J., 2008. Effects of dietary canola oil level on growth performance, fatty acid composition and ionoregulatory development of spring Chinook salmon parr, Onchorhynchus tshawytscha. Aquaculture, 274:109-117.
19
20- Kim, J., Massee, K.C., Hardy, R.W., 1996. Adult Artemia as food for first feeding coho salmon (Oncorhynchus kisutch). Aquaculture 144: 277-226.
20
21- Lisac, D., Franicevic, V., Vijmelka, Z., Buble, J., Leger, Ph., Sorgeloos, P., 1986. International study on Artemia: XL III. The effect of live food fatty acid content on growth and survival of sea bream (Sparus aurata) larvae. pp. 1-10, paper presented at the conference Ich Thyopathology in Aquaculture, 21-24 October 1986, Dobrovnik, Yogoslavic.
21
22- Martino, R. C., Cyrino, J.E.P., Portz, L., Trugo, L. C., 2002. Performance and fatty acid composition of surubim (Pseudoplatystoma coruscans) fed diets with animal and plant lipids. Aquaculture, 209: 233-246.
22
23- Phillips, A. M., Jr., Livingston, D.L., Poston, H.A., Brooke, H. A., 1963. The effect of diet mixture and calorie source on growth, mortality, conversion and chemical composiion of brook trout. Progr. Fish Cult. 25: 8.
23
24- Phillips, A. M., Lovelace Jr., F.E., Brockway, D.R., Balzer, Jr.G.C., 1952. The nutrition of trout. Cortland Hatchery Reportno. 21, Fisheries Research Bulletin no. 16. New York Conservation Department, Albany, N. Y., p. 46.
24
25- Phillips, A. M., Podoliak Jr., H.A., Poston, H. A., Livingston, D. L., Brooke, H. E., Pyle, E.A., Hammer, G.L., 1962. The utilization of calorie sources by brook trout. Cortland Hatchery Report no. 31, Fisheries Research Bulletin no. 26. New York Conservation Department, Albany, N.Y., p. 35.
25
26- Sargent, J.R., 1995. Origins and function of egg lipids nutritional implications. IN: Bromage, N.R., Roberts, J.R.(Eds)., Broodstock mangament and egg and larval quality . Oxford unniversity. Press, UK, pp. 353-372.
26
27- Sargent, J., Bell, G., McEvoy, L., Tocher, D., Estevez, A., 1999.Recent development in the essential fatty acid nutrition of fish. Aquaculture 177: 191-199.
27
28- Sorgeloos, P., Leger, Ph. and Tackaert, W., 1993. The use of Artemia in marine fish larviculture. TML Conference Proceedings. 3: 73-86.
28
29- Sorgeloos, P., Dhert, P., Can dreva, P., 2001.Use of the shrimp Artemia, Artemia SPP., in marine fish larviculture. Aquaculture 200: 147-159.
29
30- Takeuchi, T., Watanabe, T., 1982. Effect of various polyunsaturated fatty acids on growth and fatty acid composition of Rainbow trout, coho salmon and chom salmon. Bulletin of the japans society of scientific fisheries, vol 48, pp: 145-1752.
30
31- Turchini, G. M., Mentasti, T., Frøyland, L., Orban, E., Caprino, F., Moretti, V.M., Valfr´e, F., 2003. Effects of alternative dietary lipid sources on performance, tissue chemical composition, mitochondrial fatty acid oxidation capabilities and sensory characteristics in brown trout (Salmo trutta L.). Aquaculture 225: 251–267.
31
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی نقش جلبکهای سبز آبی آنابنافلوس-آکوا (Anabaena flos-aquae) و اسیلاتوریا آفریکانوم (Oscillatoria africanum) در تغذیه دافنی ماگنا (Daphnia magna)
دافنی Daphnia magna یک گونه مرغوب جهت تغذیه ماهیان آب شیرین است. در تحقیق حاضر، تاثیر دوگونه جلبک سبز آبی آنابنافلوس-آکوا (Anabaena flos-aquae) و اسیلاتوریا آفریکانوم (Oscillatoria africanum) بر میزان بلعیدن، نرخ فیلتر کردن و تغذیه دافنی ماگنا (Daphnia magna) مورد بررسی قرار گرفت. آزمایش در سه تکرار و با شرایط یکسان برای هر دو جلبک انجام شد. نرخ فیلتر کردن، بلعیدن و تغذیه دافنی ماگنا از این دو جلبک براساس روش محاسبه شد (9). نتایج تحقیق حاضر نشان داد که میزان فیلتر کردن، بلعیدن و تغذیه دافنی ماگنا از جلبکهای سبز آبی با افزایش غلظت آنها بطور معنی داری کاهش مییابد (05.0P<). بطوریکه حداکثر مقدار این شاخصها (بترتیب 2/60± 798، 992±70861 و 02/0±4/0) در غلظت 3 میلی گرم در لیتر و حداقل مقدار آنها (بترتیب 7/17 ±100، 492±10683 و 01/0±2/0) در غلظت 12 میلی گرم در لیتر مشاهده گردید. این بدان معنی است که دافنیها توانایی فیلترکردن جلبکهای رشتهای سبز آبی را علی الخصوص در مواقعی که تراکم آنها بالا باشد، ندارند زیرا این جلبکها بدلیل رشتهای بودن ممانعتهایی را برای تغذیه توسط دافنی بوجود میآورند. حداکثر نرخ رشد ویژه (Specific Growth Rate) دافنیها (02/0±5/0) در اثر تغذیه با جلبک آنابنافلوس- آکوا (در غلظت 25/4 میلیگرم در لیتر) مشاهده شد (P<0.05) و میزان بازماندگی دافنیها در بین تغذیه با دو جلبک مذکور، اختلاف معنیداری وجود نداشت (P>0.05). با توجه به نتایج حاصل از تحقیق حاضر می توان بیان نمود که شکوفائیهایی که توسط جلبک های سبز آبی بوجود میآیند، قابل کنترل بیولوژیکی توسط دافنی نمیباشند.
https://animal.ijbio.ir/article_231_bdc1b0a16f17cc0ec51048cb469bb298.pdf
2013-11-22
267
275
2635
دافنی ماگنا
جلبک آنابنافلوس- آکوا
جلبک اسیلاتوریا آفریکانوم
نرخ بلعیدن
تغذیه
احمدی فرد، ن.، عابدیان کناری، ع.، فلاحی کپور چالی، م.، (1386). مقایسه رشد و ترکیب اسید چرب روتیفر آب شیرین Brachionus calyciflorus تغذیه شده با دو جلبک سبز Chlorella sp. و Scenedesmus obliquus. مجله علمی شیلات ایران. سال شانزدهم، شماره 4. صفحات: 26-15.
1
لالوئی، ف.، روشن طبری، م.، روحی، ق.، تکمیلیان، ک.، مخلوق، آ.، گنجیان، ع.، رستمیان، م.ت.، فلاحی، م.، محمدجانی، ط.، سبک آرا، ج.، تهامی، ف.، مکارمی، ع.، میرزاجانی، ع.ر.، کیهان ثانی، ع.ر. و واحدی، ف.، (1383). هیدرولوژی و هیدروبیولوژی و آلودگی های زیست محیطی اعماق کمتر از 10 متر حوضه جنوبی دریای خزر. موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی دریای خزرساری. صفحه420.
2
عبدالهی فینی، ح.، یحیوی، م.، سالار زاده، ع.، فروغی فرد، ح.، معزی، م.، اکبرزاده، غ.، (1389). تاثیر دما و تغذیه جلبکی بر تراکم روتیفر Brachionus plicatilis در شرایط آزمایشگاهی. مجله آبزیان و شیلات. سال اول، پیش شماره 3،. صفحات: 62 تا 69.
3
Abdul-Elah, K.M. Al., Almatar, S., Abu-Rezq, T. and James, C.M. (2001). Development of hatchery technology for the silver pomfret Pampus argenteus (Euohrasen): Effect of microalge species on larval survival. Aquaculture Research. Vol. 32, PP: 849-860.
4
Carmichael, W.W. and Falconer, I.R. (1992). Disease related to freshwater algal blooms. Inalgal toxins in sea food and drinking water, (ed) Falconer, I.R. London: Academic Press.
5
Coutteau, P., Brendonck, L., Lavens, P. and Sorgeloos, P. (1992). The use of manipulated baker's yeast as an algal substitute for the laboratory culture of Cladicera. Hydrobiologia. Vol. 234, PP: 25-32.
6
Culver, D.A. (1988). Plankton ecology in fish hatchery ponds in Narrandera, New Australia. Verhandlungen. International vereinigung fur theoretische and angewndte limnology. Vol. 23; PP: 1085-1089.
7
Flores-Burgos, J., Sarma, S.S.S. and Nandini, S. (2003). Population growth of zooplankton (Rotifers and Cladocerans) fed Chrorella vulgaris and Senedesmus acutus in different proportions. Acta hydrochim. Hydro- Boil. Vol. 31, PP: 240-248.
8
Gauld, T. (1951). The grazing rate of planktonic copepods. J. Mar. boil. Assoc. U.K. 26. PP: 695-706.
9
Gliwicz, Z.M. and Lampert, W. (1990). Food Thresholds in Daphnia Species in the Absence and Presence of Blue-Green Filaments. Ecology 71, PP: 691–702.
10
Herzing, A. (1987). The analysis of planktonic rotifer population: A plea for long term investigation. Hydrobiologia. Vol. 147, PP: 163-180.
11
Horn, W. (1981). Phytoplankton grazing in the drinking water reservoir. Int. Rev Ges. Hydrobiology. 66, PP: 787 – 810.
12
Jeon, J., Sung Ra, J., Hong Lee, S., Lee, M., Yu, S. and Don Kim, S. (2010). Role of food and clay particles in toxicity of copper and diazinon using Daphnia magna. Ecotoxicology and Environmental Safety, 73, PP: 400–406.
13
Kerfoot, W.C., Demott, W.R. and Levitan, C. (1985). Non-linearities in competitive interaction: Compenent variables or system response? Ecology, Vol. 66, PP: 959-965.
14
Krebs, C.J. (1985). Ecology. The experimental analysis of distributation and abundance, 3rd edn. Harper and Row, New York, USA. 789P.
15
Lampert, W. (1977). Studies on the carbon balance of Daphnia pulex De Geer as related to environmental problems. The dependence of carbon assimilation on animal size, temperature, food concentration and diet spices. Arch. Hydrobiol., Suppl. 48(3-4), PP: 310-335.
16
Lavense, P. and Sorgeloss, P. (1996). Manual on use and production and use of live food aquaculture and Artemia Reference Center, University of Ghent, Belgium, Published by FAO.
17
Mahdinejad, K, and Ordog, V. (1996). Studies on feeding value of selected Algal species for filter feeding fish and zooplankton. Thesis submitted to the Hungarian Academy of Scienes for the candidate of sciences (Ph .D .Degree). pp:113.
18
Miller, W.E., Greene, J.C. and Shyroyama, T. (1978). The Selenastrum capricornuutm Printz algal assay bottle test. U.S.EPA Rep. EPA600/PP:9-78.
19
Muller Navarra, D. and Lampert, W. (1996). Seasonal patterns of food limitation in Daphnia galeata: Separating food quantity and food quality effects. J. Plankton Res. 18, PP: 1137–1157.
20
Nandini, S. and Sarma, S.S.S. (2000). Life table demography on four cladoceran species in density. Hydrobiologia. Vol. 435, PP: 117-126.
21
Peters, R.H. (1987). Daphnia culture. Memorie dell istituto italiano di Idrobiologia (Dott. Marco De March), Pallanza, Ist. Ital. Idrobiol. 45, PP: 483-495.
22
Porter, K.G. and Orcutt, J.D. (1980). Nutritional adequacy, manageability, and blue-green algae for Daphnia. Am. Soc. Limnol. Oceanogr. Spec. Symp. 3, PP: 268-281.
23
Proulx, D. and La Noue, De. (1985). Growth of Daphnia magna on urban wastewater tertiarily treated wiyh Scenedesmus sp. Aquacul. Engin. Vol. 4. PP: 93-111.
24
Sarma, S.S.S., Larios Jurado, P.S. and Nandini, S. (2001). Effect of three food types on the population growth of Brachionus calyciflorus and Brachionus patulus (Rotifer: Brachionidae). Rev. Biol. Trop., vol. 49, No. 1, PP: 77-84.
25
Shahin, T. (2001). Larval rearing of Black Sea Turbut, Scophthalmus maximus (Linnaeus, 1758) under laboratory condition. Turkish Journal of Zoology. Vol. 25, PP: 447-452.
26
Stibor, H. and Navarra, D.M. (2000). Constraints on the Plasticity of Daphnia magna Influenced by Fish-Kairomones. Funct. Ecol. 14. PP: 455-459.
27
Wetzel, R.G. (1983). Limnology. 2nd Edition. CBS College publishing, Philadelphia, USA. PP: 125-320.
28
Xuwang, Y., Shasha, Z., Jian, H. and Pengfei, L. (2011). Effects of food quality and starvation on the optimal foraging behavior of Daphnia magna (Cladocera). Acta Ecologica Sinica 31, PP: 328–333.
29
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین زمان بلوغ جنسی گونه Neogobius Pallasi (Berg, 1916) (گاو ماهی شنی) از خانواده گاوماهیان در تالاب گمیشان
روند تولید مثلی گونه Neogobius pallasi (Berg, 1916) در طی دوره یک سال (آبان 1385 – مهر 1386) در تالاب گمیشان مورد بررسی قرار گرفت. از تخمدان ماهیان ماده بالغ نمونه برداری صورت گرفت. نمونه های تخمدان در محلول فرمالین بافر فسفات تثبیت شدند و سپس با استفاده از روش پارافینه کردن و رنگ آمیزی هماتوکسیلین- ائوزین از آنها مقاطع بافتی تهیه شد. در این مرحله تعداد ائوسیت های تمایز نیافته، ائوسیت مرحله پیش زرده ای، ائوسیت مرحله زرده سازی، ائوسیت مرحله پس زرده ای و تخمک گذاری نهایی بررسی و شمارش شد. قطر تخمدان، تعداد هستک، هسته و قطر هستک و هسته همگی اندازه گیری شد. سپس با کمک برنامه آنالیز آماری Systat بررسی شد و مشاهده گردید: در گونه pallasi Neogobius (05/0>P تغییرات معنی دار) ائوسیت پیش زرده سازی، ائوسیت مرحله زرده سازی اولیه و ثانویه، قطر ائوسیت، قطر لایه کوریونی و با توجه به اندازه گیری GSI، اوج رسیدگی جنسی این گونه در خرداد ماه می باشد.
https://animal.ijbio.ir/article_232_c2f6121a4a0cf9fb3fdd8c4d78f2c3b1.pdf
2013-11-22
276
281
2636
ائوژنز
دریای خزر
تالاب گمیشان
بلوغ جنسی
pallasi Neogobius
1 - بهادری مسلم (1379): فن بافت شناسی انتشارات دانشگاه تهران.
1
2 - پریور کاظم، محسنی کوچصفهانی هما (1372): اطلس جنین شناسی و جنین شناسی تجربی، انتشارات جهاد دانشگاهی دانشگاه تربیت معلم تهران.
2
3 - عبدلی اصغر (1378): ماهیان آبهای داخلی ایران، انتشارات موزه طبیعت و حیات وحش ایران.
3
4 - عبدلی اصغر، مهدی نادری (1387):تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر، انتشارات علمی آبزیان.
4
5 - علوی یگانه، محمد صادق، محمد رضا کلباسی(1384). زیست شناسی تولید مثل زیرگونه گاوماهی شنی خزری. مجله علوم دریایی ایران. دوره4، شماره 3و4، صفحه31.
5
6. Biro p.; Neogobius fluviatilis in lake Blaton a Pontocaspian goby new to the fauna of central Europe;J.Fish Biology;1971;4:249-255.
6
7. Corkum L. D.; The round goby, Neogobius melanostomus a fish invader on both sides of the Atlantic Ocean. Biological Invasion.2004; 6:173-181.
7
8. Kiabi B. H., Abdoli A., aderi M.; Status of the fish fauna in south Caspian Basian of Iran, Zoology –in-the-middle-east; 1999; 18:57-65.
8
9. Rankin J.C., Pitcher T.Y., Duggan R.; Control processes in fish physiology. Croon Helm, London, 1983;220p.
9
10. Unobe T., M. Nakamura, Y. Kobayashi, T. Kobayashi,Y. Nagahama (2005). Aromatase immunoreactivity and the rol of enzymes in steroid pathways for index sex change in the hermaphrodite gobiid fish Trimma okinawae.CBP.P:54-59
10
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی بیوسیستماتیکی گونه جرد بزرگ Rhombomys opimus Lichtenstein, 1823 (Rodentia: Gerbillinae) ایران
جرد بزرگ بومی بخشی از فون ترکمنستان است که به تدریج از طریق نواحی انتشار به داخل فلات ایران نفوذ کرده است و سپس در نواحی شمال شرقی، شرق و مرکز گسترش یافته است. هدف این پژوهش مطالعه تغییرات درون گونه ای جرد بزرگ و همچنین بررسی زیرگونه های موجود در نواحی مورد مطالعه با استفاده از صفات جمجمه ای است. 10 متغیر جمجمه ای 80 نمونه متعلق به گروه پژوهشی جونده شناسی دانشگاه فردوسی مشهد گردآوری شده ازمناطق سرخس، ترکمن صحرا (غرب، شرق و مرکز)، درگز، بجنورد (رباط قره بیل) ویزد مورد بررسی قرار گرفت. نتایج مطالعات آماری تک متغیره و چندمتغیره نزدیکی جمعیتهای درگز، مرکز وشرق ترکمن صحرا و از سوی دیگر جمعیتهای سرخس، بجنورد وغرب ترکمن صحرا را تأیید می کند. نمونه های یزد را می توان به زیر گونه R.opimus sodalis و بقیه جمعیتها را به زیر گونه R.opimus sargadensis نسبت داد.
https://animal.ijbio.ir/article_233_bc223c3da029e8e87e00b534874f4d6b.pdf
2013-11-22
282
288
2637
جرد بزرگ
مورفومتریک
صفات جمجمه ای
آنالیز آماری
بیوسیستماتیک
1- اعتماد، ا.، (1357). پستانداران ایران .جلد اول .جوندگان وکلید تشخیص آنها. انتشارات انجمن ملی حفاظت محیط طبیعی و انسان. 288صفحه.
1
2- باقریان، ع.، درویش، ج.، و رستگارپویانی، ن.، (1386). مطالعه کلادیستی خانواده Muridae (Mammalia:Rodentia) در شرق ایران. مجله زیست شناسی ایران. جلد20. شماره 2. صفحات 269-275
2
3- درویش، ج.، قیاسی، ع.، و خسروی، م.، (1378). شناسایی بقایای جوندگان موجود در رسوبات رباط شرف خراسان با استفاده از مطالعات مورفولوژیک نئونتولوژیک ومجله علوم پایه دانشگاه الزهراء.جلد 12. شماره 1. صفحات 31-43.
3
4- عامری، م.، و درویش، ج.، (1387). بررسی تاکسونومیک شش گونه از جردهای Meriones (Rodentia: Muridae) ایران. مجله انجمن زیست شناسی. جلد 21. شماره4. صفحات 630-643
4
5- مایر، ا.، (1384). جمعیتها، گونه ها وتکامل (ترجمه: جمشید درویش). مؤسسه چاپ وانتشارات دانشگاه فردوسی مشهد. 559صفحه.
5
6- میزون، گ.، (1380). جغرافیای جانوری پستانداران ایران (ترجمه: جمشید درویش). مؤسسه چاپ وانتشارت دانشگاه فردوسی مشهد. 239 صفحه.
6
7- وارسته مرادی، ح.، (1382). مطالعه تغییرات درون گونه ای جردبزرگ در ترکمن صحرا .مجله علوم کشاورزی ومنابع طبیعی. سال دهم. شماره سوم. صفحات27-37.
7
8- Corbet, B .G. and Hill, E. J. (1991). A world list of mammalian species. Third edition . Oxford university press.
8
9- Musser, G. G. and Carleton, M. D. (2005). Family Muridae. (In :) Wilson D. E. and Reeder D. M. (eds) Mammals species of the world. A taxonomic and geographic reference. Third edution. Volume 2. The John Hopkines University press.
9
10- Pavlinov, .I. (2001). Current concepts of Gerbillid phylogeny and classification. In Denys C., Granjon L., Poulet A. (Eds), African Small Mammals. Editions IRD, aris. 41-150.
10
11- Shenbrot, G. and Kransov, B. (2001). Geographic variation in the role of gerbils and jirds (Gerbillinae) in rodent communities across the great palaeoarctic desert belt //Africa small Mammals //pro.8th internet .symp .on African small Mammals .paris .IRDEd. 511-529.
11
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی فیلوجغرافیایی موش مقدونیه (Mus macedonicus Petrov & Ruzic, 1983) در شمال غرب ایران
محدوده گسترش جغرافیایی، ژنتیک و جغرافیای تکاملی جمعیتها از نظر منشأ و همچنین نحوه مهاجرت و کلونیزاسیون گونه Mus macedonicus Petrov & Ruzic, 1983 در شرقی ترین قلمرو این گونه، در ایران، بررسی شد. در این مطالعه تعداد 22 موش مقدونیه دم کوتاه از استانهای همدان، آذربایجان شرقی و غربی مطالعه شد. بررسی ترادف ژنوم میتوکندری در ناحیه D-Loop نشان داد که ایران آخرین محدوده شرقی قلمرو این جانور است و جمعیت موشهای مقدونیه دم کوتاه در آن کمی ایزوله به نظر می رسد. تعداد 17 هاپلوتیپ جدید به وسیله این پژوهش شناسایی و معرفی شدند. مقدار Tajima D و Fu`s Fs مشاهده شده تفاوت معنی داری با مقدار مورد انتظار نشان نداد که نمایانگر رشد اخیر این جمعیتها و درتعادل نبودن روندهای جهش/ رانش ژنتیکی می باشد. تنوع هاپلوتیپی پایین و موقعیت انتهایی جمعیتهای ایران بر روی درخت فیلوژئوگرافی علاوه بر تأیید نتایج مطالعات پیشین در مورد نحوه گسترش این گونه در ایران و کشورهای همسایه غربی نکاتی را آشکار ساخت.
https://animal.ijbio.ir/article_234_05bb57e6f7329362cb17b98fc9b06b6f.pdf
2013-11-22
289
297
2638
جغرافیای تکاملی
D-Loop
موش مقدونیه Mus macedonicus
1 - درویش، ج. 1374. شناسائی دو گونه همجای Mus macedonicus P &R 1982 & Mus musculus L. 1766 (Muridae, Rodentia) علوم دانشگاه تهران، 21، 1، 1-9.
1
2. Excoffier, L., Laval, G. and Schneider, S. (2005) Arlequin ver. 3.0: An integrated software package for population genetics data analysis. Evolutionary Bioinformatics Online, 1, 47-50.
2
3. Fu, Y.-X. (1997) Statistical tests of neutrality of mutations against population growth, hitchhiking and background selection. Genetics, 147, 913–925.
3
4. Goios, A., Pereira, L., Bogue, M., Macaulay, V. and Amorim, A. (2007) mtDNA phylogeny and evolution of laboratory mouse strains. Genome Research., 17, 293-298.
4
5. Gündüz, I., Auffray, J.-C., Britton-Davidian, J., Catalan, J., Ganem, G., Ramalhinho, M.G., Mathias, M.L. and Searle, J.B. (2001) Molecular studies on the colonization of the Madeiran archipelago by house mice. Molecular Ecology, 10, 2023-2029.
5
6. Gunduz, I., Tez, C., Malikov, V., Vaziri, A., Polyakov, A.V. and Searle, J.B. (2000) Mitochondrial DNA and chromosomal studies of wild mice (Mus) from Turkey and Iran. Heredity, 84 ( Pt 4), 458-467.
6
7. Macholan, M., Vyskocilova, M., Bonhomme, F., Krystufek, B., Orth, A. and Vohralik, V. (2007) Genetic variation and phylogeography of free-living mouse species (genus Mus) in the Balkans and the Middle East. Molecular Ecology, 16, 4774-4788.
7
8. Melo-Ferreira, J., Boursot, P., Randi, E., Kryukov, A., Suchentrunk, F., Ferrand, N. and Alves, P.C. (2007) The rise and fall of the mountain hare (Lepus timidus) during Pleistocene glaciations: expansion and retreat with hybridization in the Iberian Peninsula. Molecular Ecology, 16, 605-618.
8
9. Orth, A., Auffray, J.C. and Bonhomme, F. (2002) Two deeply divergent mitochondrial clades in the wild mouse Mus macedonicus reveal multiple glacial refuges south of Caucasus. Heredity, 89, 353-357.
9
10. Posada, D. and Crandall, K. (1998) MODELTEST: testing the model of DNA substitution. Bioinformatics, 14, 817-818.
10
11. Prager, E.M., Orrego, C. and Sage, R.D. (1998) Genetic variation and phylogeography of central Asian and other house mice, including a major new mitochondrial lineage in Yemen. Genetics, 150, 835–861.
11
12. Rajabi-Maham, H., Orth, A. and Bonhomme, F. (2008) Phylogeography and postglacial expansion of Mus musculus domesticus inferred from mitochondrial DNA coalescent, from Iran to Europe. Molecular Ecology, 17, 627-641.
12
13. Rozas, J., Sanchez-DelBarrio, J.C., Messeguer, X. and Rozas, R. (2003) DnaSP, DNA polymorphism analyses by the coalescent and other methods. Bioinformatics, 19, 2496-2497.
13
14. Tajima, F. (1989) Statistical-Method for Testing the Neutral Mutation Hypothesis by DNA Polymorphism. Genetics, 123, 585-595.
14
15. Tamura K., Peterson D., Peterson N., Stecher G., Nei M. and Kumar, S. (2011) MEGA5: Molecular Evolutionary Genetics Analysis using Maximum Likelihood, Evolutionary Distance, and Maximum Parsimony Methods. Mol. Biol. Evol. 28(10): 2731-2739.
15
ORIGINAL_ARTICLE
اثر تراتوژنیک و سمیت کاربوکسین بر مورفولوژی و سلولهای کبدی جنین جوجه
نیاز غذایی جوامع در حال رشد انسانی مصرف بی رویه آفت کشهای کشاورزی را افزایش داده است. هدف از این تحقیق، بررسی میزان سمیت کاربوکسین (قارچ کش رایج در کشاورزی) بر جنین جانور مدل و کشت سلول کبدی حاصل از آن (اندام اصلی متابولیزه کننده ترکیبات خارجی) میباشد. در این تحقیق، با توجه به تراکم بیولوژیک این گونه ترکیبات در بافتهای جانوری، تأثیر تراتوژنی کاربوکسین بر جنین جوجه 18 روزه مورد بررسی قرار گرفت. در روز صفر انکوباسیون غلظتهای 20، 100، 200 و400 میکروگرم از کاربوکسین (محلول در استون) بر هر تخم مرغ به داخل کیسه زرده تزریق گردید )7 (n= و این آزمون برای هر غلظت در 4 تکرار انجام گرفت. نتایج حاصل از رنگ آمیزی اسکلت جنین نشانگر عدم کلسیفیه شدن مهره های دمی، کجی وکوتاهی استخوانهای بلند و حذف مهره های دمی بود. تزریق 200 و 400 میکروگرم نیز ناهنجاری ظاهری، عمدتاً پا چنگکی ایجاد کرد. نتایج حاصل از بررسی اثرات سمیت کاربوکسین بر سلولهای کبدی جنین جوجه 12 روزه نشان داد که غلظتهای 5 ،10، 25، 50 و 100 میکروگرم / میلیلیتر به ترتیب 20، 24، 35، 40 و 48 درصد بقای سلولی را کاهش داده و 50 IC آن برابر با 102 میکروگرم / میلی لیتر است. تجمع بیولوژیکی سموم شیمیایی در بافتها باعث اختلال در فرآیندهای فیزیولوژیکی و رشد میگردند ولی سلولهای کبدی به دلیل فعالیت سم زدایی بالایی که دارند تا حدی نسبت به تأثیر این گونه ترکیبات مقاومت نشان میدهند.
https://animal.ijbio.ir/article_235_077c721bd9d2696587fecf98b7c6a917.pdf
2013-11-22
298
304
2639
کاربوکسین
سمیت سلولی
جنین جوجه
تراتوژنی
پا چنگکی
1- ربانی چادگانی، ع؛ شبانی، ا؛ (1382) بررسی تأثیر نیترات سرب بر فعالیت سلولهای ماکروفاژ ریه موش صحرایی. مجله زیست شناسی ایران، 14 (1-2): 12-21
1
2- رنجبر، و؛ وطنچییان، م؛ محمدیان، ب؛ میاحی، م؛ (1385) مطالعه زمانی تکوین اسکلت بال و پا در جنین جوجه بکمک تکنیک رنگ آمیزی دوگانه آلیزارین قرمز- آلسین آبی. مجله زیست شناسی ایران، 19(2): 167-179
2
3- طالبی جهرمی، ک؛ (1387) سم شناسی آفت کشها. انتشارات دانشگاه تهران؛ ص492
3
4- Alhifi, M.A., Khan, M.Z., Higoshai, H.A., Ghole, V.S.) 2004) Teratogenic effect of dimethoate on chicken embryo. Journal of Internal Medicine, 3: 1-9
4
5- DellaGreca, M., Iesce, M.R., Cermola, F., Rubino, M., Isidori, M. (2004) Phototransformation of carboxin in water. Toxicity of the pesticide and its sulfoxide to aquatic organisms. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 52(20):6228-32.
5
6- Fogg, P., Boxall, A.B.A., Walker, A., Jukes, A.A.) 2003) Pesticide degradation in a biobed composting substrate. Pest Management Science, 59: 527-537
6
7- Forsyth, C.S., Frank, A., Watrous, B.J., Bohn, A.A. (1994) Effect of coniie on the developing chick embryo. Teratology 49: 306-310
7
8- Gunasekaran, P., Tauro, P. (1982) Mechanism of action of carboxin and the development of resistance in yeast. Journal of Biosciences, 2:219- 225.
8
9- Horsefield, R., Yankovskaya, V., Sexton, G., Whittingham, W., Shiomi, K., Omura, S., Byrne, B., Cecchini, G., Iwata, S. (2006) Structural and computational analysis of the quinone-binding site of complex II (succinate–ubiquinone oxidoreductase): a mechanism of electron transfer and proton conduction during ubiquinone reduction. The Journal of Biological Chemistry, 281: 7309–7316.
9
10- Landour, W. (1975) Cholinomimetic teratogens; Studies with chicken embryo.Teratology, 12: 125-146
10
11- Manner, J., Seidl, W., Heinicke, F., Hesse, H. )2003.(Teratogenic effects of suramin on chick embryo . Anatomy and Embryology, 206: 229-237
11
12- Paul, K., Moitra, P.K., Mukherjee, I., Maity, C., Ghosol, S.K. (1999) Teratogenicity of arecoline hydrobromide on developing chicken embryos; A preliminary report. Bulletin of Environmental Contamination & Toxicolog, 62: 356-362
12
13- Petrovova, E., Sedmera, D., Misek, I., Lesnik, F., Luptakova, L. (2009) Bendiocarbamate toxicity in the chick embryo. Folia Biologica, 55: 61-65
13
14- Ritter, E.J., Scott, W.J., Wilson, J.G. (1971) Teratogensis and inhibition of DNA synthesis induced in rat embryo cytosine arabinoside. Teratology, 4: 7-13
14
15- Singh, J.D., Singh, S. (1976) Skeletal malformation induced by mitomycin C in chick embryo. Acta Orthopaedica Scandinavica, 47: 509-514
15
16- Singh, S., Prasad, G.S., Sinha, D.N., Duby, S.S. (1974) Effect of Mitomycin C on the embryonic chick lim bud in vitro. Anatomischer Anzeiger, 135: 191-198
16
17- Tucker, A.N., Lillich, T.T. (1974) Effect of the systemic fungicide carboxin on electron transport function in membranes of micrococcus denitrificans. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 6: 572-578
17
18- Yedjou, C., Moree, P., Techounwou, P.B. (2006) Dose and time-dependent response of human leukemia (HL-69) cells to arsenic trioxide treatment. International Journal of Environmental Research and Public Health, 3:136-140.
18
19- Zahri, S., Razavi, S.M., Niri, F.H., Mohammadi, S. (2009). Induction of programmed cell death by prangos uloptera, a medicinal plant. Biological Res,42, 517-522
19
20- Ziogas B.N., Georgopoulos S.G. (1979). The effect of carboxin and of thenoyltrifluoroacetone on cyanide-sensitive and cyanide-resistant respiration of Ustilago maydis mitochondria. Pesticide Biochemistry and Physiology, 11 (3): 208–217
20
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین سن ماهی سرخوی چمن Lutjanus malabaricus)) با استفاده از اتولیت (سنگ گوش) درآبهای هرمزگان
در این پژوهش تعیین سن 80 ماهی سرخوی چمن (Lutjanus malabaricus) با استفاده از اتولیت (سنگ گوش) در آبهای خلیج فارس در محدوده آبهای هرمزگان (56/26 درجه شرقی و 17/27 درجه شمالی) انجام پذیرفت. تعیین سن براساس وجود دوایر رشد سالانه (لایه های مات و شفاف) موجود بر روی مقاطع اتولیت صورت گرفت. همچنین پارامترهای ریخت سنجی اتولیت و زیست سنجی ماهی اندازه گیری شد. روابط بین طول و سن و همچنین وزن و سن ماهی نیز بررسی شد. بیشترین سن بدست آمده 7 سال متعلق به ماهی سرخوی چمن با میانگین وزن 18±4080 گرم و طول 3/2±3/71 سانتی متر بود و رابطه معنی داری بین طول کل و سن ماهی و همچنین وزن کل و سن ماهی مشاهده شد (۰۵/۰< p). همچنین رابطه معنی داری بین وزن اتولیت راست و چپ و وزن ماهی، طول اتولیت راست و چپ و وزن ماهی و طول میانی اتولیت ها با طول استاندارد ماهی مشاهده شد (۰۵/۰< p). نتایج نشان داد که که میانگین وزن اتولیت راست و چپ به ترتیب 001/0±30/0 و 001/0±29/0 گرم و میانگین طول اتولیت راست و چپ به ترتیب 01/0±66/13 و 01/0±60/13 میلی متر می باشد.
https://animal.ijbio.ir/article_236_7d434931e8494c8615eaaf02c1287886.pdf
2013-11-22
305
313
26310
اتولیت
سرخوی چمن
تعیین سن
پارامترهای ریخت سنجی
خلیج فارس
1. اسدی، ه.، دهقانی، ر، 1375. اطلس ماهیان خلیج فارس و دریای عمان، انتشارات موسسه تحقیقات شیلات ایران. صفحه255.
1
2. پرافکنده حقیقی، ف.، 1387. تعیین سن در آبزیان، انتشارات موسسه تحقیقات شیلات ایران. صفحه187.
2
3. خدادادی، م.، عمادی، ح. 1383. تعیین سن هامور معمولیEpinephelus coioides)) با استفاده از برش و تهیه مقطع از سنگ گوش در آبهای ساحلی خوزستان. مجله پژوهش و سازندگی، شماره 63. صفحات 2-11.
3
4. ربانی ها، م.، وثوقی، غ.، فاطمی، م و جمیلی، ش. 1387. تعیین سن لارو ماهیان دریایی با استفاده از بررسی میکروسکوپی اتولیت. مجله پژوهش و سازندگی. شماره 81 . صفحات 63-65 .
4
5. صدیق زاده، ز.، وثوقی، غ.، ولی نسب، ت و فاطمی، م.1386. مروری بر ریخت شناسی اتولیت در برخی از ماهیان اقتصادی سطحزی خلیج فارس. مجله دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی، شماره 3. سال اول. صفحات1-10.
5
6. کمالی، ع., 1381. تعیین سن سرخوی معمولی در آبهای هرمزگان با استفاده از برش سنگ گوش. صفحه72.
6
7. Al-Hosseini, M., 1996. Review on fisheries biology of groupers in the Gulf area. KISR. of the Kuwait.pp: 232.
7
8. Brothers, E .S & Mathews C. P., 1987. Application of otolith microstructura studies to age determination of some commercially valuable fish of The Persian Gulf, Kuwait Bulletin of Marine, No. 9. pp : 127-157.
8
9. Bullock, L. H & Godcharles, M. F., 1992. Age, growth and reproduction of jewfish Epinephelus iajara in the eastern Gulf of Mexico. Fish. No. 90. pp: 243 - 249.
9
10. Cappo, M., Eden, P., Newman, S.J., Robertson, S., 2000. A new approach to tetracycline validation of the periodicity and iming of increment formation in the otoliths of 11. species of Lutjanus from the central Great Barrier Reef. Fish. Bull. 98 (3). pp: 474–488.
10
11. Choat, J. H. & Robbins, W. D., 2002. Age - based dynamic of tropical reef fishes. School of marine Biology and Aquaculture James Cook University. Workshop in Muscut, Oman. N0.8. pp: 24-32.
11
12. Ferreira, B. P., 1992. Rproduction of the inshore coral trout Plectropomus maculatus (Perciformes :Serranidae) from the central Great.London U.K. pp: 228.
12
13. Manoock, C. S., 1987. Age and growth of snappers and groupers. Great Britian. pp: 329-373.
13
14. Mcfarland, G., Schwelgert, J., Hodes, V and Detering, J. 2010. Preliminary study on the use of polished otoliths in the age determination of Pacific sardine (Sardinops sagax) in British Columbia waters.calcofi rep., vol51. pp: 162-168.
14
15. Milton, D. A., Short, S.A., O’Neill, M.F., Blaber, S. J. M., 1995. Ageing of three species of tropical snapper (Lutjanidae) from the Gulf of Carpentaria, Australia, using radiometry and otolith ring counts. US Fish. Bull. 93, 103–115.
15
16. Mourad, M. H. 1999. Age Determination of Trachinotus ovatus (L.) based on Otolith Weight. National of Oceanography &Fisheries, J. Sci., vol. 10, pp: 149-155.
16
17. Moralez – Nin , B., 1992. Determination of growth in bony fishes from otolith microstructure. fisheries technical. pp: 322.
17
18. Munk, K. M and Smikrud, K. M. 2002. Relationships of Otolith Size to Fish Size and Otolith Ages for Yelloweye Sebastes ruberrimus and Quillback S. maliger Rockfishes. Alaska. pp: 1-50.
18
19. Newman, S. J., Cappo, M and Williams, D. M. 2000. Age, growth, mortality rates and corresponding yield estimates using otoliths of the tropical red snappers, Lutjanus erythropterus, L. malabaricus and L. sebae, from the central Great Barrier Reef. Fisheries Research 48. pp: 1-14.
19
20. Newman, S. J. 2000. Growth rate, age determination, natural mortality and production potential of the scarlet seaperch, Lutjanus malabaricus Schneider 1801, off the Pilbara coast of north-western Australia. Fisheries Research 58 (2002), pp: 215- 225.
20
21. Samuel, M. & Bawazeer A. S., 1990. Age and validation of age from otolith for warm water fishes from Persian Gulf. p.253 -256.
21
22. Sparre, P. & Venema, C., 1989. Introduction to tropical fish stock assessment part1- manual. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome. pp: 243.
22
23. Williams, T. s., 1986. Ageing manual for Kuwait fish Technical Re port. No. 1915, Kuwait Institute for Scientific. Research. pp: 57.
23
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی فون هیره¬ها در لانه و بدن جوندگان انبارهای گندم در استان تهران
به منظور مطالعه فون هیرههای لانه و بدن جوندگان، از خاک لانه و سطح بدن جوندگان انباری، از سیلو، انبار کارخانهها و آسیابهای آرد و گندم موجود در استان تهران نمونه برداری انجام شد. این اولین تحقیق در مورد فون هیرههای لانه و بدن جوندگان و همچنین تعیین فون جوندگان در انبارهای گندم ایران میباشد. در این مطالعه سه گونه جونده شامل Mus musculus = موش خانگی، Rattus rattus = موش سیاه و Rattus norvegicus = موش قهوه ای و ٢٧ گونه هیره متعلق به ٢١ جنس و ۱1 خانواده از دو راسته پیشاستیگمایان و بیاستیگمایان شناسایی شدند. تنوع گونهای و تعداد هیرهها در آسیابها بیشتر از سیلوها و کارخانهها بود. در مقایسه جوندگان به دام افتاده در تمامی مناطق نمونه برداری، گونه Mus musculus از نظر انتشار و پراکندگی گونه غالب بوده است. تنوع گونهای و تعداد جوندگان در کارخانهها بیشتر از انبارها، سیلوها و آسیابها بوده است.
https://animal.ijbio.ir/article_237_79d5e40ee2c0709a64f117214473c275.pdf
2013-11-22
314
325
26311
هیره¬ها
جوندگان
موش¬ها
انبارهای گندم
تهران
1- استوان، هادی. ١۳۷٢. بررسی فونستیک هیرههای انباری کازرون و بیولوژی گونههای مهم. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، ١۷٢ صفحه.
1
2- اشرفزاده، م.، کرمی م. و درویش ج. 1378. مقایسه کارایی تلههای زندهگیر در نمونهبرداری جوندگان (مطالعه موردی: منطقه حفاظت شده گنو، استان هرمزگان). مجله زیست شناسی ایران، جلد 21، شماره 3، صفحه 500-493
2
3- اعتماد، اسماعیل. ١۳۵۷. پستانداران ایران، جلد اول، جوندگان و کلید تشخیص آنها. انتشارات انجمن ملی حفاضت منابع طبیعی و محیط انسانی.
3
4- باقریان، ع.، درویش ج. و رستگار پویانی ن. 1386. مطالعه کلادیستی خانواده (Mammalia:Rodentia: Muridae) در شرق ایران. مجله زیست شناسی ایران، جلد 20، شماره 2، صفحه 276-269
4
5- برومند، هوشنگ، پازوکی، علی و هاشمی، عباس. 7۷-1373. گزارش نهایی طرح بررسی، جمعآوری و شناسایی فون آفات گندم و جو ایران و دشمنان طبیعی آنها. وزارت جهاد کشاورزی. معاونت برنامهریزی و اقتصادی.
5
6- رجبزاده، ناصر. ١۳۷۵. تکنولوژی آماده سازی و نگهداری غلات. انتشارات دانشگاه امام رضا (ع) مشهد، ۳۶٢ صفحه.
6
7- زرینچنگ، جعفر. ١۳٧١. روش انتخاب و محاسبه فنی ماشینآلات، نقل و انتقال گندم در سیلوها. وزارت جهاد کشاورزی. معاونت برنامهریزی و اقتصادی.
7
8- سپاسگزاریان، حسین. ١۳۵۷. آفات انباری ایران و طرق مبارزه با آنها. انتشارات دانشگاه تهران، ٢٧٩ صفحه.
8
9- سپاسگزاریان، حسین و دفتری، احمد. ١۳۵۷. اصول و کلیات کنه شناسی. انتشارات دانشگاه تهران، ۳٢۶ صفحه.
9
10- شیشهبر، پرویز. ١۳٨٠. کنترل بیولوژیکی به وسیله دشمنان طبیعی. انتشارات دانشگاه شهید چمران، 570 صفحه.
10
11- Abdullayeva, E.A. (2000). The acaroid mites from the nests of the common vole (Microtus arvalis) (Rodentia) of the lesser Caucasus within Azerbaijan. Turkish Journal of Zoology, 24: 121-123.
11
12- Bochkov, A. (1999). A new Myobiidae mite species Radfordia (Microtimyobia) cricetuliphila sp.n. (Acari: Myobiidae) from the striped hamster Cricetulus barabensis (Rodentia: cricetidae). Folia Parasitologica, 358-361.
12
13- Bochkov, A, Malikov, V, Arbabi, M. (1999). Trichoecius calomysci sp. (Acari: Myocoptidae), a new mite species from Iran, Folia Parasitologica, 46: 316-318.
13
14- Bochkov, A., Arbabi, M., Malikov, V. (2000). Notes on mites of the family Myobiidae (Acari: Prostigmata) parasitising rodents (Mammalia: Rodentia) in Iran, Folia Parasitologica, 47: 73-77.
14
15- Bochkov, A. and Fain, A. (2003). A new Myobiidae mite species Radfordia (Hesperomyobia) sigmomys sp. n. (Acari: Myobiidae) ex Sigmodon alstoni (Rodentia: Sigmodontidae) from Central American is described. Folia Parasitologica, 107-112.
15
16- Fain, A. and Bochkov, A. (2002). On some little known and a new species of Myobiidae (Acari) associated with rodents. Acta Zoologica et Pathologica Aniver Piensia 138: 95-105.
16
17- Hughes, A.M. (1976). The mites of stored food and houses. Technical Bulletin Ministy oF Agriculture, Fisheries and Food, London, 400 pp.
17
18- Krantz, G.W. (1978). A manual of acarology. 2nd. Ed. Oregon State University Book Stores. Corvallis, 509 pp.
18
19- Krantz G.W. and Walter D.E. (2009). A Manual of Acarology. Third Edition. Texas Tech University Press, Lubbock Texas, April. viii + 807 pp.
19
20- Summers, F.M. and Price, D.W. (1970). Review of the mite family Cheyletidae. University of California Publications in Entomology, 153 pp.
20
21- Turk, E. and Turk F. (1957). Systematik und oklogie der Tyroglyphiden mitteleuropas. Beiträge zur Systematik und Ökologie Mitteleuropäischer Acarina, 233 pp.
21
22- Yoshizawa, M.A.C., Souza, J.L., Bredt, A. and Baggio, D. (1996). Ectoparasites of Rattus norvegicus in the Distrito Federal, Brazil. Revisita Brasileira de Parasitologia Veterinaria, 5(1): 39-42.
22
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ترکیب پذیری شش صفت کمی در کرم ابریشم
در این تحقیق اثرات ترکیب پذیری عمومی و خصوصی بر روی برخی از صفات اقتصادی کرم ابریشم، شامل وزن پیله، وزن قشر پیله، درصد قشر پیله، طول الیاف، شاخص قطر و نسبت پیله به ابریشم خام به صورت طرح دای آلل بررسی شد. والدین با یکدیگر تلاقی و به همراه نتاج (F1) در قالب طرح کاملا تصادفی و در سه تکرار مقایسه گردیدند. با توجه به معنی دار بودن واریانس ژنوتیپ ها، از میانگین های موجود شامل 4 والد (2 والد دو نسله (Bivoltine) و 2 والد چند نسله(Multivoltine))، 6 تلاقی مستقیم و6 تلاقی معکوس در شرایط استاندارد پرورشی به منظور تخمین ترکیب پذیری صفات پیله با استفاده از مدل 1 روش 1 گریفینگ تجزیه دایآلل بعمل آمد. ترکیب پذیری عمومی ژنوتیپ ها از نظر تمامی صفات به جزء شاخص قطر بسیار معنی دار بود (01/0>P) که این امر دلالت بر تاثیر واریانس ژنتیکی افزایشی بر توارث این صفات دارد. نتایج حاصل از ترکیب پذیری خصوصی برای تمامی صفات به غیر از صفات شاخص قطر و نسبت پیله به ابریشم خام بسیار معنی دار بود (01/0>P). این نتایج حاکی از این است که اثر غالبیت برای این دو صفت نیز مهم می باشد. برای صفات وزن پیله و وزن قشر پیله مشخص شد که تاثیر تلاقی معکوس معنی دار است و معنی دار بودن تلاقی معکوس مرتبط با نقش اثر پایه مادری در بروز این صفات است. رتبه بندی والدین بر اساس مقادیر ترکیب پذیری عمومی برای هر صفت یکسان با رتبه بندی همان والدین بر اساس مقدار میانگین آن صفت می باشد که می تواند برای تخمین ترکیب پذیری والدین بر اساس میانگین هر صفت استفاده شود.
https://animal.ijbio.ir/article_238_42588311ae22fda9457e30f85bb7d472.pdf
2013-11-22
326
332
26312
ترکیب پذیری خصوصی
ترکیب پذیری عمومی Bombyx Mori L
کرم ابریشم
میرحسینی، س. ض.، صیداوی، ع. ر.، غنی پور، م. 1383. برآورد پارامتر های قابلیت ترکیب پذیری عمومی و خصوصی در لاین های جدید کرم ابریشم و هتروزیس هیبرید های حاصل از تلاقی آن ها. نامه انجمن حشره شناسی ایران. جلد بیست و چهارم. شماره 2.
1
Abdel Hady, M.S.S. 2006. Heterosis and combining ability effects for callus growth of wheat (Triticum durum, Desf.) in vitro. J. Appl. Sci. Res., 2: 360-363.
2
Ahmad, R.D., Malik, A.J., Hassan, G. and Subhan, M. 2005. Estimation of combining ability for seed cotton yield and its components in inter-varietal crosses of cotton. Gomal University J. Res., 21: 1-6.
3
Alireza Seidavi. 2011. Analysis of combining ability for some parameters in iranian lines of silkworm Bombyx mori L. (lepidoptera: bombycidae). Annals of Biological Research, 2 (2): 158-163.
4
Chatterjee, S.N., Rao, P.R.M., Jayaswal, K.P., Ravindra Singh and Datta, R.k. 1993. Genetic variability in mulberry silkworm, Bombyx mori L. breed with low silk yield. Indian J. Seric., 32:69-86.
5
Choudhary, N. and Singh, R. 2006. Heterosis in relation to combining ability in hybrids between multivoltine and bivoltine breeds of the silkworm, Bombyx mori L. Uttar Pradesh J. Zool., 26(1): 23-28.
6
Dandin, S.B., Jayaswal, J. and Giridhat, K. 2003. Handbook of sericulture technology. Central Silk Board, CSB Complex, BTML Layout, Madivala Bangalore, 560 068-287.
7
Datta, R.K. and Pershad, G.D. 1988. Combining ability among multivoltine× bivoltine silkworm (Bombyx mori L.) hybrids. Sericologia, 28:21-29.
8
Griffing. N. 1956. Concept of general and specific combining ability in relation to diallel crossing system. Aust. J. Biol. Sci., 9: 463-493.
9
Iftekher, M., Ismat Ara Ali and Tajimul haque. 2005. Combining ability estimation in popular bivoltine mulberry silkworm, Bombyx mori L. Pakistan Journal of Biological, 8(1): 68-72.
10
Jogloy, S., Tula, W. and Kesmala, T. 2005. Combining ability analysis and phenotypic correlation of nodule parameters and agronomic traits in peanut (Arachis hypogaea L.). Songklanakarin J. Sci. Technol., 27(2): 213-221.
11
Mirhossieni, S.Z., Seidavi, A.R., Ghanipoorand, M. and Etebari, K. 2004. Estimation of general and specific combining ability and heterosis in new varieties of silkworm, Bombyx mori L. Journal of Biological Journal of Food, Agriculture & Environment, 4(6): 725-730.
12
Mirhosseini, S.Z., Bizhannia, A.R., Vishkaee, S. and Seidavi, A. R. 2007. Investigation on heterosis, general combining ability and special combining ability for cocoon characters in the five local groups and two breed pure lines of silkworm Bombyx mori L. Iranian Journal of Biology, 20(1): 138-143.
13
Nagalakshmamma, K. and Naga Jyothi, P. 2010. Studies on the Combining Ability of the New Multi and Bi Voltine Hybrids by Line X Tester Analysis in the Silkworm Bombyx mori L. African Journal of Basic & Applied Sciences, 2 (1-2): 54-59.
14
Narasimhanna, M.N. and Krishnaswamy, S. 1972. Improved techniques of silkworm rearing. Paper presented at seminar on sericulture, 1-11, CSRTI, Mysore.
15
Okoh, J.O., Ojo, A.A. and Vange, T. 2007. Combining ability and heterosis of oil content in six accessions of castor at Makurdi. Nature and Science, 5(4): 18-23.
16
Rajanna, K.L. and Puttaraju, H.P. 1998. Heterosis among lines selected for pupal weight in the interline hybrids of the silkworm. Sericologia, 38(4): 312-318.
17
Rodero, A., Leguey, N., Rivasi, C. and Jordan, E. 1971. Genetic analysis of diallel crosses in laying hens. III Comparison of two annual tests with diallelic metric of 4×4 and 5×5. Arch. Zool. Tech., 20:57-65.
18
Satenahalli, S.B., Govindan, R. and Goud, J.V. 1991. Heterosis studies on cocooning, pupation, pupal weight and pupal duration in silkworm. Mysore Journal of Agricultural Science, 25:338-340.
19
Sen, S.K., Das, S.K., Rao, P.R.T., Ghosh, B., Das, N.K., Chattopadhyay, S., Roy, G.C. and Sinha, S.S. 1995. Studies on some important genetic parameters in the silkworm (Bombyx mori L.). Indian J. Plant Breed, 55: 238-242.
20
Shamsuddin, A.K.M. 1985. Genetic diversity in relation to heterosis and combining ability in spring wheat. Theor. Appl. Genet., 70: 306-308.
21
Singh, R., Nagaraju, J., Rao, P.R.M. and Sengupta, S.K. 1990. Heterosis analysis in the silkworm. Sericologia, 30(3): 293-300.
22
Thangavelu, K., Sinha, R.K., Mahadevamurthy, T.S., Radhakrishnan, S., Kumaresan, P., Mohan, B., Rayaradder, F.R. and Sekar, S. 2000. Catalogue on silkworm (Bombyx mori L.). Volume: 2, Central Sericultural Germplasm Resources Center, Central Silk Board.
23
Whitehouse, R.N.H., Thomson, I.B. and Riberio, M.D.V. 1958. Studies on the breeding of self-pollinating cereals-II. The use of diallel crosses analysis in yield production: Euphytica, 7: 147-169.
24
ORIGINAL_ARTICLE
تغییرات بیوشیمیایی، استروئیدهای جنسی و پارامترهای هماتولوژیک در قبل و پس از تخمریزی ماهی سوف سفید Sander lucioperca
این تحقیق با هدف مقایسه تغییرات استروئیدهای جنسی، پارامترهای هماتولوژیک و شاخص های استرس در ماهی سوف سفید Sander lucioperca در مرحله نهایی تخمریزی انجام گردید. در این بررسی از 25 مولد ماده و 9 مولد نر سوف سفید، قبل و پس از تخمریزی، به منظور تعیین شاخص های استرس، استروئیدهای جنسی وپارامترهای هماتولوژی خونگیری به عمل آمد. در مولدهای ماده، پروژسترون و در مولدهای نر، تستوسترون تفاوت معنی داری را در مراحل قبل و پس از تخمریزی نشان دادند. این در حالی بود که هورمون استرادیول در بین دو جنس نر و ماده تفاوت معنی داری را در قبل از تخمریزی نشان داد. از نظر شاخص های استرس (کورتیزول، گلوکز، لاکتات)، تنها گلوکز خون در ماهیان نر تفاوت معنی داری را در قبل و پس از تخمریزی نشان داد. در خصوص پارامترهای هماتولوژیک، تعداد گلبول های سفید در مولدهای ماده و تعداد گلبول های قرمز در مولدهای نر اختلاف معنی داری در قبل و پس از تخمریزی داشت. نتایج این تحقیق نشان داد با اینکه بسیاری از شاخص های اندازه گیری شده قبل و پس از تخمریزی تغییر یافت اما بیشتر تغییرات در سطح استروئیدهای جنسی ملاحظه گردید. به نظر می رسد تغییرات مشاهده شده در جنس نر و ماده و همچنین قبل و پس از تخمریزی، به دلیل تفاوت های فیزیولوژیک و نوع عمل هورمون ها در مرحله نهایی تکثیر می باشد.
https://animal.ijbio.ir/article_239_62fbfb0eb1fddbecadaa14a80f021a0f.pdf
2013-11-22
333
343
26313
تولید مثل
استروئیدهای جنسی
شاخص های استرس
هماتولوژی
ماهی سوف سفید(Sander lucioperca)
1- قلی اف، د.ب. 1997. کپور ماهیان و سوف ماهیان حوزه جنوبی و میانی دریای خزر. ساختار جمعیتها، اکولوژی، پراکنش و تدابیر جمعیت بازسازی ذخایر. ترجمه عادل، ی.ی. 1377. مرکز تحقیقات شیلات استان گیلان، بندرانزلی، ص 24.
1
2. Acerete, L., Balasch, J.C., Espinosa, E., Josa, A., Tort, L. 2004. Physiological responses in Eurasian Perch Perca fluviatilis (L.) subjected to stress by transport and handling. Aquaculture, 237: 167-178.
2
3. Axelord, J. Reisine, T.D. 1984. Stress hormones: their interaction and regulation. Scienece, 224: 452-459.
3
4. Barcellos, L.J.G., Kreutz, L.C., de Souza, C., Rodrigues, L.B., Fioreze, I., Quevedo, R.M., Cericato, L., Soso, A.B., Fagundes, M., Conrad, J., de Almeida Lacerda, L., Terra, S. 2004. Hematological changes in jundia Rhamdia quelen Quoy and Gaimard Pimelodidae after acute and chronic stress caused by usual aquacultural management, with emphasis on immunosuppressive effects.Aquaculture, 237: 229-236.
4
5. Barry, T.P., Malison, J.A., Lapp, A.F., Procarione, L.S. 1995. Effects of selected hormones and male cohorts on final oocyte maturation, ovulation, and steroid production in walleye Stizostedion vitreum. Aquaculture, 138: 331-347.
5
6. Bjornsson, B.T., Halldorsson, O., Haux, C., Norberg, B., Brown, C.L. 1998. Photoperiod control of sexual maturation of the Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus): plasma thyroid hormone and calcium levels. Aquaculture, 166: 117-140.
6
7. Bracewell, P., Cowx, I.G., Uglow, R.F. 2004. Effects of handling and electrofishing on plasma glucose and whole blood lactate of Leuciscus cephalus. Journal of Fish Biology, 64: 65-71.
7
8. Bromage, N.R., Whitehead, C., Breton, B. 1982. Relationships between serum levels of gonadotropin, oestradiol-17β, and vitellogenin in the control of ovarian development in the rainbow trout. II. The effects of alterations in environmental photoperiod. General and Comparative Endocrinology, 47: 366-376.
8
9. Cech, J.J., Wohlschlag D.E. 1982. Seasonal patterns of respiration, gill ventilation, and hematological characteristics in the striped mullet, Mugil cephalus (L.). Bulletin of Marine Science, 32: 130-138.
9
10. Cook, J. 1994. The effects of stress, background colour and steroid hormones on the lymphocytes of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). PhD thesis, Sheffield, UK: University of Sheffield.
10
11. Craig, J.F. 2000. Percid Fishes: systematics, ecology and exploitation. Fish and Aquatic Resources Series, Vol.3. Blackwell Science. 352 p.
11
12. Dabrowski, K., Ciereszko, R.E., Ciereszko, A., Toth, G.P., Christ, S.A., El-Saidy, D., Ottobre, J.S. 1996. Reproductive physiology of yellow perch (Perca flavescens): environmental and endocrinological cues. Journal of Applied Ichthyology, 12: 139-148.
12
13. Fagundes, M., Urbinati, E.C. 2008. Stress in pintado Pseudoplatystoma corruscans during farming procedures. Aquaculture, 276: 112-119.
13
14. Foo, J.T.W., Lam, T.J. 1993. Retardation of ovarian growth and depression of serum steroid levels in the tilapia (Oreochromis mossambicus) by cortisol. Aquaculture, 115: 133-143.
14
15. Fostier, A., Jalabert, B., Billard, R., Breton, B., Zohar, Y. 1983 The gonadal steroids. In: Hoar, W.S., Randall, D.J., Donaldson, E.M. (Eds), Fish Physiology vol. IXA Academic Press, New York, pp 277-372.
15
16. Fostier, A., Jalabert, B. 1986. Steroidogenesis in rainbow trout Salmo gairdneri at various preovulatory stages: changes in plasma hormone levels and in vivo and in vitro responses of the ovary to salmon gonadotropin. Fish Physiology and Biochemistry, 2: 87-89.
16
17. Goetz, F.W., Theofan, G. 1979. In vitro stimulation of germinal vesicle breakdown ovulation of yellow perch (Perca flavescens) oocytes: Effects of 17α-hydroxy-20β-dihydroprogesteron and prostaglandins. General and Comparative Endocrinology, 37: 273-285.
17
18. Golovina, N.A. 1996. Morphofunctional Description of Blood in Piscicultural Fishes. Moscow: VNIIPRKh.
18
19. Hou, Y.Y. 1998. Endocrinological aspects of reduced immunocompetence whit gonadal maturation in rainbow trout. Ph.D. thesis, Tokyo: The University of Tokyo.
19
20. Kagawa, H., Young, G., Nagahama, Y. 1983. Relationship between seasonal plasma estradiol-17β and testosterone levels and in vitro production by ovarian follicles of Amago salmon (Oncorhynchus rhodurus). Biology of Reproduction, 29: 301-309.
20
21. Kagawa, H., Young, G., Nagahama, Y. 1984. In vitro estradiol-17b and testosterone production by ovarian follicles of the goldfish, Carassius auratus. General and Comparative Endocrinology, 54: 139-143.
21
22. Kestemont, P., Xueliang, X., Hamza, N., Maboudou, J., Toko, I.I. 2007. Effect of weaning age and diet on pikeperch larviculture. Aquaculture, 264: 197-204.
22
23. King, W.V., Berlinsky, D.L., Sullivan, C.V. 1995. Involvement of gonadal steroids in final oocyte maturation of white perch (Morone americana) and white bass (M. chrysops): in vivo and in vitro studies. Fish Physiology and Biochemistry, 14: 489-500.
23
24. Kobayashi, D., Tanaka, M., Fukada, S., Nagahama, Y.S. 1996. Steroidogenesis in the ovarian follicles of the medaka (Oryzias latipes) during vitellogenesis and oocyte maturation. Zoological Science, 13: 921-927.
24
25. Kubokawa, K., Watanabe, T., Yoshioka, M., Iwata, M. 1999. Effects of acute stress on plasma cortisol, sex steroid hormone and glucose levels in male and female sockeye salmon during the breeding season. Aquaculture, 172: 335-349.
25
26. Miguad, H., Fontaine, P., Kestemont, P., Wang, N., Brun-Bellut, J. 2004. Influence of photoperiod on the on-set of gonadogenesis in Eurasian perch Perca fluviatilis. Aquaculture, 241: 561-574.
26
27. Morgan, J.D., Iwama, G.K. 1997. Measurements of stressed states in the field. In: Iwama, G.K., Pickering, A.D., Sumpter, J.P., Schreck, C.B. (Eds.). Fish stress and health in aquaculture. Cambridge University Press, Cambridge, pp 247-268.
27
28. Muller-Belecke, A., Zienert. S. 2008. Out-of-season spawning of pikeperch Sander lucioperca (L.) without the need for hormonal treatments. Aquaculture Research, 39: 1279-1285.
28
29. Mylonas, C.C., Zohar, Y., Woods III, L.C., Thomas, P., Schulz, R.W. 1998. Hormone profiles of captive striped bass Morone saxatilis during spermiation, and long-term enhancement of milt production, Journal of the World Aquaculture Society, 29: 379-392.
29
30. Nagahama, Y. 1994. Endocrine regulation of gametogenesis in fish. International Journal of Developmental Biology, 38: 217-229.
30
31. Norris, D.O. 1997. Vertebrate Endocrinology. Academic Press, San Diego, CA. 634 p.
31
32. Pankhurst, N.W., Carragher, J.F. 1991. Seasonal endocrine cycles in marine teleosts. In: Scott, A.P., Sumpter, J.P., Kime, D.E., Rolfe, M.S. (Eds), Reproductive Physiology of Fish 1991. Fish Symposium 91, pp 131-135.
32
33. Pankhurst, N.W., Van Der Kraak, G., Peter, R.E. 1995. Evidence that the inhibitory effects of stress on reproduction in teleost fish are not mediated by the action of cortisol on ovarian steroidogenesis. General and Comparative Endocrinology, 99: 249-257.
33
34. Pottinger, T.G. 1998. Changes in blood cortisol, glucose and lactate in carp retained in anglers‘ keepnet. Journal of Fish Biology, 53: 728-742.
34
35. Richter, C.J.J., Eding, E.H., Roem, A.J. 1985. 17α-hydroxyprogesterone-induced breeding of the African catfish, Clarias gariepinus, without priming gonadotropin. Aquaculture, 44: 285-293.
35
36. Rotllant, J., Balm, P.H.M., Perez-Sanchez, J., Wendelaar-Bonga, S.E., Tort, L. 2001. Pituitary and interrenal function in gilthead sea bream (Sparus aurata L.,Teleostei) after handling and confinement stress. General and Comparative Endocrinology, 121: 333-342.
36
37. Sakai, N., Iwamatsu, T., Yamauchi, K., Suzuki, N., Nagahama, Y. 1988. Influence of follicular development on steroid production in the medaka (Oryzias latipes) ovarian follicle in response to exogenous substrates. General and Comparative Endocrinology, 71: 516-523.
37
38. Santos, A.J.G., Furukawa, K., Kobayashi, M., Bando, K., Aida, K., I. Hanyu, I. 1986. Plasma gonadotropin and steroid hormone profiles during ovulation in the carp Cyprinus carpio. Bulletin of Japanese Society of Science and Fisheries, 52: 1159-1166.
38
39. Shimizu, A., Aida, K., Hanyu, I. 1985. Endocrine profiles during the short reproductive cycle of an autumn-spawning bitterling, Acheilognathus rhombea. General and Comparative Endocrinology, 60: 361-371.
39
40. Schreck, S.B. 1996. Immunomodulation: endogenous factors. In: Iwama, G., Nakanishi, T. editors. The fish immune system: organism, pathogen and environment, New York: Academic Press, pp 311-337.
40
41. Slater, C.H., Schreck, C.B. 1993. Testosterone alters the immune response of Chinook Salmon, Oncorhynchus tshawytscha. General and Comparative Endocrinology, 89: 291-298.
41
42. Stoskopf, M.K. 1993. Clinical Pathology. In: Stoskopf, M.K. (Ed.), Fish Medicine. Saunders, Philadelphia, pp 113-131.
42
43. Sulistyo, I., Rinchard, J., Fontaine, P., Gardeur, J.N., Capdeville, B., Kestemont, P. 1998. Reproductive cycle and plasma levels of sex steroids in female Eurasian perch Perca fluviatilis. Aquatic Living Resources, 11: 101-110.
43
44. Sulistyo, I., Fontaine, P., Rinchard, J., Gardeur, J.N., Migaud, H., Capdeville, B., Kestemont, P. 2000. Reproductive cycle and plasma levels of steroids in male Eurasian perch Perca fluviatilis. Aquatic Living Resources, 13: 99-106.
44
45. Suzuki, Y., Otaka, T., Sato, S., Hou, Y.Y., Aida, K. 1997. Reproduction related immunoglobulin changes in rainbow trout. Fish Physiology and Biochemistry, 17: 415-421.
45
46. Swain, P., Nayak, S.K. 2009. Role of maternally derived immunity in fish. Fish and Shellfish Immunology, 27: 89-99.
46
47. Truscott, B., Idler, D.R., So, Y.P., Walsh, J.M. 1986. Maturational steroids and gonadotropin in upstream migratory sockeye salmon. General and Comparative Endocrinology, 62: 99-110.
47
48. Valenzuela, A.E., Silva, V.M., Klempau, A.E. 2008. Effects of different artificial photoperiods and temperatures on haematological parameters of rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Fish Physiology and Biochemistry, 34: 159-167.
48
49. Zakes, Z., Szczepkowski, M. 2004. Induction of out-of-season spawning of pikeperch, Sander lucioperca (L.). Aquaculture International, 12: 11-18.
49
ORIGINAL_ARTICLE
زیست شناسی سوسک Lilioceris faldermanni (Guerin-.Meneville,1829) (Col.:Chrysomelidae) آفت گیاه سوسن چلچراغ در شرایط دمایی مختلف
در بررسی زیست شناسی سوسک Lilioceris faldermanni (Guerin-.Meneville,1829) در شرایط آزمایشگاهی، دورههای مختلف رشد و نمو، میزان بقاء، تخمگذاری، نحوه خسارت و زمستانگذرانی مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج بدست آمده نشان داد که حشرات کامل این آفت، بالپوشهایی برنگ قرمز، شاخکها، چشم ها، قفسسینه، شکم و پاهایی برنگ سیاه دارند. این آفت دارای 4 سن لاروی است و لاروها از نوع اروسیفرم میباشند. مرحله شفیرگی در زیرخاک گیاه میزبان و در داخل پیله ابریشمی با استفاده از ذرات خاک سپری میشود. مراحل لاروی و حشره کامل این آفت روی برگ، گل، غنچه و کپسول بذر خسارت وارد میآورند. میانگین طول دورههای رشد و نمو سوسکL. faldermanni از تخم تا حشره کامل در دماهای ثابت 14، 18، 22 و 26 درجه سلسیوس به ترتیب 07/0 ± 4/63، 09/0 ±15/46، 08/0 ± 8/32، 1/0 ± 25/27 روز بود و بیشترین درصد بقاء مراحل رشد و نمو آن در دمای 22 درجه سلسیوس بدست آمد. همچنین مقدار متوسط تخمگذاری روزانه در دمای 26 درجه سلسیوس (2/0 ± 62/ 16 عدد) بیشتر از دماهای 14، 18 و 22 درجه سلسیوس (06/0 ± 86/ 9، 08/0 ± 71/12 و 06/0 ± 95/14 عدد) بود.
https://animal.ijbio.ir/article_240_124220e622b0ee1bd298125ca10c5cda.pdf
2013-11-22
344
354
26314
Lilium ledebourii
خسارت
زیست شناسی
ایران
پاداشت دهکایی، م. ن.، (1383). بررسی خصوصیات مربوط به روشهای مختلف کشت و ازدیاد گیاه سوسن چلچراغ (Lilium ledebourii) گیاه بومی ایران، و امکان معرفی آن به عنوان محصول جدید زینتی. رسالۀ دکتری. دانشگاه آزاد واحد علوم و تحقیقات تهران. صفحه155.
1
مجیب حق قدم، ز.، پاداشت دهکایی، م. ن.، (1385). معرفی پراکنش و نحوه خسارت سوسک سوسن چلچراغ در استان گیلان. هفدهمین کنگره گیاه پزشکی ایران. 14-11 شهریور ماه 1385. کرج ایران، صفحه 238.
2
مجیب حق قدم، ز.، پاداشت دهکایی، م. ن.، رادفر، ط.، تیرداد، م.، علی پور، ر. (1387). بررسی زیست شناسی سوسک Lilioceris faldermanni (Guerin) روی گیاه سوسن چلچراغ در شرایط آزمایشگاهی. هجدهمین کنگره گیاه پزشکی ایران. 6-3 شهریور 1387 .همدان. ایران. صفحه 336.
3
مجیب حق قدم، ز.، جلالی سندی، ج.، صادقی، س. ا.، یوسف پور، م.، (1388). معرفی کفشدوزکOenopia conglobata بعنوان شکارگر شته نارون Timocallis saltans در استان گیلان و بررسی زیست شناسی آن در شرایط آزمایشگاهی. مجله زیست شناسی ایران. جلد22. شماره 2. صفحات 370-363.
4
Berti, N., and Rapilly., M. (1976). Fauna of Iran, list of species and a revision of the genus Lilioceris reitter (Col: Chrysomelidae). Annale Society Entomology France,12(1). PP: 31- 73.
5
Gruev, B. A. (2005). A Comparative list of the leaf beetles of the Balkan countries (Col: Chrysomelidae). Animalia, 41. PP: 23-46.
6
Guang, H. T. T., and S. Nakamura. (2009). The study on biological characteristics of Brontispa longissima (Col: Chrysomelidae). Journal Scientific Development, 7. PP: 159-164.
7
Haye, T. and M. Kenis. (2004). Biology of Lilioceris spp (Col: Chrysomelidae) and their parasitoids in Europe, Journal Biological Control. 29. PP: 399-408.
8
Hurst, G. D. D., M. E. N. Majerus., and L.E. Walker. (1993). The important of cytoplasmic male killing elements in natural populations of the tow spot ladybird Adalia bipunctata (L.). Biological of Linnean Society. 49. PP: 195-202.
9
Kroon, H. (2009). Biology of Lilioceris lilii (Col:Chrysomelidae) and occurrence of their parasitoides Sweden. Master dissertation, University of Sweden.
10
Lopaten, I., Chikatunov. V., and Pavlicek., T. (2003). Catalogue of the beetles (Coleoptera) in Israel and adjacent areas: 3 Chrysomelidae(except Alticinae), Zoology in the middle East. 28. PP: 112- 87.
11
Mirzoeva, N. (2001). A study of the ecofaunal complexes of the leaf eating beetles (Col: Chrysomelidae) in Azarbaijan. Turkey Journal Zoology, 25. PP: 41-52.
12
Ozdikmen, H., and Turgut., S. (2008). The subfamily Criocerinae of Turkey (Col: Chrysomelidae) with two new records and zoogeographical remarks. Munis Entomology & Zoology, 3(1). PP: 239-250.
13
Riley, E. G., Clark, S., and Seeno, T. (2003). Catalog of the leaf beetle of America north of Mexico. The Cleopterists Society Special Publication.
14
Salisbury, A. (2008). The Biology of liliy beetle, Lilioceris lilii (Scopoli) (Coleoptera: Chrysomelidae), Doctoral dissertation, University of imperial London.
15
Schmitt, M. (1988). The Criocerinae: Biology, Phylogeny and Evolution. Academic Publishers.
16
Witt, A. B. R., and Edwards., P. B. (2003). Aspects of the biology, distribution, and host range of Crioceris sp. (Col: Chrysomelidae: Criocerinae), a potential biological control agent for Asparagus asparagoides in Australia. Biological control, 23. PP: 56-63.
17
Zhang-Shi, Z., Jian-Ying, G., Hong-Song, C. and Fang- Hao., W. (2010). Effects of temperature on survival, development, longevity, and fecundity of Ophraella communa (Col: Chrysomelidae), a potential biological control agent against Ambrosia artemisiifolia (Asterales: Asteraceae). Environmental Entomology, 39(3). PP: 1021-1027.
18