ORIGINAL_ARTICLE
اثرات منابع مختلف چربی جیره بر شاخصهای رشد، پاسخ به تنش شوری و پارامترهای خونی در بچه ماهیان کلمه (Rutilus rutilus caspicus Jakowlew, 1870)
این آزمایش بهمنظور تعیین اثر جایگزینی روغن ماهی با دو روغن گیاهی آفتابگردان و سویا، در جیره بچه ماهیان کلمه بر شاخصهای رشد، پاسخ به تنش شوری و پارامترهای خونی در طول مدت هشت هفته انجام شد. پنج جیره غذایی به ترتیب با صفر درصد روغن ماهی (گروه شاهد)، 8 درصد روغن آفتابگردان، 8 درصد روغن سویا، 4 درصد روغن ماهی، 4 درصد روغن آفتابگردان و 4 درصد روغن ماهی+ 4 درصد روغن سویا آماده سازی شدند. برای هر جیره سه تکرار از بچه ماهیان کلمه (24 عدد در هر تانک با میانگین وزنی 52/5 گرم) در نظر گرفته شد. در پایان آزمایش فاکتورهای رشد محاسبه و از 75 ماهی نمونه خون گرفته شد. پارامترهای خونی بر اساس روشهای استاندارد اندازهگیری شدند. در پایان آزمایش به ماهیان تنش شوری (12 گرم در لیتر) داده شد. نتایج نشان داد که بهترین نتیجه در مورد شاخصهای رشد در تیمار شاهد بود ولی این مقادیر با سایر تیمارها اختلاف آماری معنیدار نداشتند (05/0P>). غلظت گلوکز وکلسترول خون در ماهیان تغذیه شده با روغنهای گیاهی به طور معنیداری بیشتر از تیمار شاهد بود (05/0P<). همچنین میزان هماتوکریت، هموگلوبین و گلبولهای قرمز در جیره حاوی روغن سویا و روغن آفتابگردان بیشتر از سایر تیمارها بود. اختلاف آماری معنیدار بین میزان بازماندگی ماهیان تیمارهای مختلف پس از تنش شوری مشاهده نشد (05/0P>). نتایج نشان داد که روغن ماهی میتواند بدون هیچ گونه اثر منفی بر شاخصهای رشد و سلامتی با روغنهای گیاهی آفتابگردان و سویا در جیره ماهی کلمه جایگزین گردد.
https://animal.ijbio.ir/article_465_fa71e975a7e590f818c2c1c0c61d083f.pdf
2014-08-23
155
164
2721
پارامترهای خونی
شاخصهای رشد
ماهی کلمه
منابع چربی جیره
احسان
احمدی فر
ehsan.ahmadifar@gmail.com
1
دانشگاه زابل، دانشکده منابع طبیعی، گروه شیلات
LEAD_AUTHOR
مهدیه
فدایی
fadaimahdiye@yahoo.com
2
سراوان، دانشگاه سراوان، دانشکده منابع طبیعی، گروه شیلات
AUTHOR
طیبه
عنایت غلامپور
t.enayat111@gmail.com
3
تهران، دانشگاه پیام نور، گروه شیلات
AUTHOR
صابری کوچصفهانی، ح.، علی اکبر، ع.، عاشورنیا، م.، بررسی و اندازه گیری اسیدهای چرب وامگا6(DHA,EPA غیراشباع (در گوشت سه نوع ماهی پرورشی کپور، فیتوفاگ و قزل آلا1390. مجله زیست شناسی ایران، جلد 24، شماره 4.
1
عنایت غلامپور، ط.، ایمانپور، ر.، حسینی، ع.، و شعبانپور، ب.، تاثیر سطوح مختلف شوری برشاخصهای رشد، میزان بازماندگی، غذاگیری و پارامترهای خونی در بجه ماهیان سفید (1901Rutilus frisii kutum kamensky,). 1390. مجله زیست شناسی ایران، جلد 24، شماره 4.
2
Affonso, E. G., Polez, V. L. P., Correa, C. F., Mazoa, A. F, Araujo, M. R. R, and Moraes, G., 2002. Blood parameters and metabolites in teleost fish Colossoma macropomum exposed to sulfide or hypoxia. Comp. Biochem. Physiol C, 33: 375-382.
3
Artacho, P., Soto-Gamboa, M., Verdugo, C., and Nespolo, R. F., 2007. Blood biochemistry reveals malnutrition in black-necked swans (Cygnus melanocoryphus) living in a conservation priority area. Comp Biochem Physiol A, 146: 283–290.
4
Ballarin, L., Dalloro, M., Bertotto, D., Libertini, A., Francescon, A., and Barbaro, A., 2004. Haematological parameters in Umbriana cirrosa (Teleostei, Scianidae): a comparison between diploid and triploid specimen. Comp. Biochem. Physiol A, 183: 45-51.
5
Bell, J. G., McEvoy, J., Tocher, D. R., McGhee, F., Campbell, P. J., and Sargent, J. R., 2001. Replacement of fish oil with rapeseed oil in diets of Atlantic salmon (Salmo salar) affects tissue lipid compositions and hepatocyte fatty acid metabolism. J. Nutr. 131: 1535–1543.
6
Bell, J. G., HendersonR, J., Tocher, D. R., McGhee, F., Dick, J. R., Porter, A., Smullen R. P., and Sargent, J. R., 2002. Substituting fish oil with crude palm oil in the diet of Atlantic salmon (Salmo salar) affects muscle fatty acid composition and hepatic fatty acid metabolism. J. Nutr. 132: 222–230.
7
Blaxhall, P. C., and Daisley, K. W., 1973. Routine hematological methods for use with fish blood. Journal of Fish Biology,5: 771-781.
8
Caballero, M. J., Obach, A., Rosenlund, G., Montero, D., Gisvold, M., and Izquierdo, M. S., 2002. Impact of different dietary lipid sources on growth, lipid digestibility, tissue fatty acid composition and histology of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. 214: 253–271.
9
De Silva, S. S., and Anderson, T. A., 1995. In: Fish Nutrition in Aquaculture. Chapman and Hall, Press London. P: 319.
10
Coles, E. H., 1986. Veterinary clinical pathology. Philadelphia. Saunders.
11
Dosanjh, B. S., Higgs, D. A., Plotnikoff, M. D., McBride, J. R., Markert, J. R., and Buckley, J. T., 1984. Efficacy of canola oil, pork lard and marine oil singly and in combination as supplemental dietary lipid sources for juvenile coho salmon (Oncorhynchus kisutch). Aquaculture. 36: 333–345.
12
Dosanjh, B. S., Higgs, D. A., Plotnikoff, M. D., Markert, J. R., and Buckley, J. T., 1988. Preliminary evaluation of canola oil, pork lard and marine lipid singly and in combination as supplemental dietary lipid sources for juvenile fall chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha). Aquaculture. 68: 325–343.
13
Dosanjh, B. S., Higgs, D. A., McKenzie, D. J., Randall, D. J., Eales, J. G, Rowshandeli, N., Rowshandeli, M., and Deacon, G., 1998. Influence of dietary blends of menhaden oil and canola oil on growth, muscle lipid composition, and thyroidal status of Atlantic salmon (Salmo salar) in seawater. Fish Physiol. Biochem. 19: 123–134.
14
Erdal, J. I., Evensen, O., Kaurstad, O. K., Lillehaug, A., Solbakken, R.,and Thorud, K., 1991. Relationship between diet and immune response in Atlantic salmon (Salmo salar L.) after feeding various levels of ascorbic acid and omega-3 fatty acids. Aquaculture. 98: 363-379.
15
Geurden, I., Cuvier, A., Gondouin, E., Olsen, R. E., Ruohonen, K., Kaushik, S., and Boujard, T., 2005. Rainbow trout can discriminate between feeds with different oil sources. Physiol. Behav. 82: 107–114.
16
Grant, A. A. M., 2006. Growth, fatty acid composition and Na+/K+-ATPase isoform physiology of juvenile chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) fed diets supplemented with anchovy or blends of anchovy and canola oil. MSc.thesis, University of British Columbia, Vancouver, Canada, pp. 35–61.
17
Hattingh, J., and Van Pletzen, A. J., 1974. The influence of capture and transportation on some blood parameter of freshwater fish. Comp. Brochem physcol. 49a: 607-609.
18
Higgs, D. A., Balfry, S. K., Oakes, J., Rowshandeli, M., Skura, B. J., and Deacon, G., 2006. Efficacy of an equal blend of canola oil and poultry fat as an alternate dietary lipid source for Atlantic salmon (Salmo salar L.) in seawater. I: Effects on growth performance, and whole body and fillet proximate and lipid composition. Aquac. Res. 37: 180–191.
19
Hrubec, T. C., Cardinale, J. L.,and Smith, S. A., 2000. Hematology and plasma chemistry reference intervals for cultured Tilapia (Oreochromis hybrid). Verter. Clin. Path. 29: 7-12
20
Hevroy, E. M., Eape, M., Waagbo, R., Sandness, K., Rund, M., and Hemre, G. I., 2005. Nutrition utilization in Atlantic Salmon (Salmo salar L) fed increased level of fish protein hydrolysate during a period of fast growth, Aquaculture Nutrition, 11:301-313
21
Keyvanshokooh, S., Ghasemi, A., Shahriari-Moghadam, M., Nazari, R. M, and Rahimpour M., 2007. Genetic analysis of Rutilus rutilus caspicus (Jakowlew 1870) populations in Iran by microsatellite markers. Aquaculture research. 38: 953-956.
22
Kiabi, B. H., Abdoli, A., and Naderi, M.,1999. Status of the fish fauna in the South Caspian basin of Iran. Journal of Zoology in theMiddle East. 18: 57-65.
23
Kiron, V., Fukuda, H., Takeuchi, T., and Watanabe, T., 1995. Essential fatty acid nutrition and the defense mechanism in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Comparative Biochemistry and Physiology. 111A: 361-367.
24
Klontz, G. W., 1994. Fish hematology. In: Stolen, J.S., T.C. Fletcher, A.F. Rowley, T.C. Kelikoff, S.L. Kaattari, S.A. Smith, (Eds.), Techniques in Fish Immunology, vol. 3. SOS Publications. 121–132.
25
Klinger, R. C., Blazer, V. S., and Echevarria, C., 1996. Effects of dietary lipid on the haematology of channel catfish, Ictalurus punctatus. Aquaculture. 147: 335-233.
26
Ng, W. K., Lim, P. K., and Boey, P. L., 2003. Dietary lipid and palm oil source affects growth, fatty acid composition and muscle a-tocopherol concentration of African catfish, Clarias gariepinus. Aquaculture. 215: 229 – 243.
27
Opsahl-Ferstad, H. G., Rudi, H., Ruyter, B., and Refstie, S., 2003. Biotechnological approaches to modify rapeseed oil composition for applications in aquaculture. Plant Sci. 165: 349–357.
28
Pozernick, M., and Wiegand, M. D., 1997. Use of canola oil in the feed of larval and juvenile gold fish, Carassius auratus L. Aquac. Res. 28: 75–83.
29
Rosenlund, G., Obach, A., Sandberg, M. G, Standal, and Tveit, K., 2001. Effect of alternative lipid sources on long-term growth performance and quality of Atlantic salmon (Salmo salar L.). Aquac. Res. 32 (Suppl 1.): 323–328.
30
Rowley, A. F., 1990. Collection, separation and identification of fish leukocytes. In: Techniques in Fish Immunology- I (Ed& W.B. van Muiswinkel), 113-136. SOS Publications, Fair Haven, NJ, USA.
31
Seiverd, C. E., 1964. Hematology for medical technologist’s .Lea and febiger, Philadelphia
32
Shakoori, A. R., Iqbal, M. J., and Mughal, A. L., 1996. Effect of sublethal doses of fenvalerate (a synthetic pyrethroid) administred continuousely for four weeks on the blood, liver and muscles of a freshwater fish (Ctenophayngodon idella). Bull. Environ. Contam. Toxical. 57: 487-494.
33
Snieszko, S. F.,1960. Microhaematocrit as a tool in fisheries management. Special Scientific Report–Fisheries. No.314.U.S. Department of the Interior. Fish and Fisheries Wildlife (Washington, DC)
34
Steffens, W., Wirth, M., and Rennert, B., 1995. Effects of adding various oils to the diet on growth, feed conversion and chemical composition of carp (Cyprinus carpio) Arch. Anim. Nutr. 47: 381–389.
35
Wiegand, M. D.,1993. A study on the use of canola oil in the feed of larval goldfish, Carassius auratus L. Aquac. Fish. Manage. 24: 223–228.
36
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی جمعیت ماهیان در منطقه زیستگاههای مصنوعی در شمال غربی خلیج فارس
این مطالعه بر روی چراگاههای مصنوعی بتنی که در منطقه بحرکان در سواحل استان خوزستان رهاسازی گردیده بود طی سال های 83 تا 85 انجام شد. ماهیان در چهار ایستگاه چراگاه مصنوعی و یک منطقه شاهد به روش مشاهده و شمارش در زیر آب مورد بررسی قرار گرفته است. بطور کلی در منطقه چراگاه مصنوعی 15 خانواده ماهی مشاهده، که از میان آنها خانواده شانک ماهیان دارای بیشترین گونه (سه گونه) بوده است. خانواده هامور بیشترین حضور (85 درصد) را در کل منطقه چراگاه ها و در تمامی فصول به خود اختصاص داد. ماهیان هامور (Epinephelus coioides)، شانک تک خال (Diplodus sargus)، گوازیم تک نواری (Scolopsis spp.)، Apogon spp. و Neopomacentrus sindensis به وفور در میان و اطراف چراگاه ها مشاهده میشوند. تعداد (58 درصد) و فراوانی (49 درصد) گونههای اقتصادی در منطقه سازه مخلوط نسبت به سازههای دیگر بیشتر است و بطور کلی در منطقه یک روند افزایشی داشته اما اختلاف معنی داری دیده نمی شود (p>0.05). درصد تعداد گونه ها نیز در ایستگاه ها و فصول مختلف اختلاف معنی داری را نشان نمی دهند (p>0.05). اما درصد فراوانی گونه ها در فصول مختلف با هم اختلاف معنی داری را نشان می دهد .(p<0.05)
https://animal.ijbio.ir/article_445_b6776a132eb0e7a0a3691a5cc12cf024.pdf
2014-08-23
165
175
2722
ماهیان
زیستگاههای مصنوعی
فراوانی
گونههای اقتصادی
بحرکان
غلامرضا
اسکندری
g_eskandary@yahoo.com
1
معاونت تحقیقاتی پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور
LEAD_AUTHOR
عماد
کوچک نژاد
2
پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور
AUTHOR
سیمین
دهقان مدیسه
s_dehghan2002@yahoo.com
3
رئیس بخش بوم شناسی پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور
AUTHOR
Alsaffar, A. H., and Al-Tamimi, H., 2006. Conservation of Coral Reefs in Kuwait, Arabian Gulf Marine Conservation Forum Abu Dhabi, United Arab Emirates.
1
Bay of Bengal programme, 1994. The effect of artificial reef installation on the biosocioeconomics of small-scale fisheries in Ranong Province, Thailand, BOBP/WP/97, Published by the Bay of Bengal Programme, 91 St. Mary’s Road, Abhiramapuram, Madras 600 018, India. Designed and typeset for the BOBP by Pace Systems, Madras 600 028 and printed for the BOBP by Nagaraj & Co, Madras 600 041.
2
Brotto, D. S., and Araujo, F. G., 2001. Habitat Selection by Fish in an Artificial Reef in Ilha Grande Bay, Brazil, Brazilian Archives of Biology And Technology, An international journal, 44(3):319 – 324
3
Carpenter, K. E., Harrison, P. L., Hodgson, G., Alasaffar, A. H., and Alhazeem, S. H., 1997. The corals and coral reef fishes of Kuwait, Kuwait institute for scientific research. Environment public authority, 166P.
4
Nagy, B. W., Mason, D. M., and Lindberg, W. L. J., 1999. Pelagic fish distributions on an artificial reef system in the Gulf of Mexico. From Southern division of the American fisheries society Midyear meeting held in Chattanooga, Tennessee.
5
Pondella, D. J., Stephens, J. S., and Craig, M. T., 2002. Fish production of a temperate artificial reef based on the density of embiotocids (Teleostei: Perciformes). ICES Journal of Marine Science 59. doi:10.1006/jmsc.2002.1219, available online at http://www.idealibrary.com
6
Shenker, J. M., Hoier, N., and Gorham, J., 2003. Fish population on artificial reefs off Sebastian Inlet, Florida. Annual report, Department of biological sciences Florida Institute of technology.
7
Sherman, R. L., Gilliam, D. S., and Spieler, R. E., 1999. A preliminary examination of depth associated spatial variation in fish assemblages on small artificial reefs. Journal of applied ichthyology, 15 (3): 116.
8
Sinis, A. I., Chintiroglou, C. C., and Stergiou, K. I., 2000. Preliminary results from the establishment of experimental artificial reefs in the N. Aegean Sea (Chalkidiki, Greece). Belg. J. Zool., 130 (supplment): 139-143
9
10. Spanier, E., 2000. Changes in the ichthyofouna of an artificial reef in the southeastern Mediterranean in one decade. SCI. MAR. 64 (3): 279-284.
10
11. Zalmon, I. R., Novelli, R., Marcelo, P., Gomes, M. P., Vicente, V., and Faria, V. V., 2002. Experimental results of an artificial reef programme on the Brazilian coast north of Rio de Janeiro. ICES Journal of Marine Science, 59: 83–87.
11
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه ترکیب سنی در دو جمعیت از گونههای دوزیست بیدم مخمل کوه با استفاده از روش اسکلتوکرونولوژی
در این تحقیق ترکیب سنی نمونه¬های موجود در جمعیت¬های دو گونه دوزیست بی¬دم از دو جنس متفاوت شامل قورباغه Rana ridibunda و وزغ Bufo viridis با استفاده از روش اسکلتوکرونولوژی مطالعه گردید. برای این کار تعداد 20 نمونه قورباغه (7 ماده و 13 نر) و 22 نمونه وزغ (9 ماده و 13 نر) در طول سال از محل زندگی آنها در مخمل کوه خرم آباد جمع¬آوری و به آزمایشگاه منتقل گردیدند. در آنجا پس از بررسیهای بیومتریک، نمونه¬ها تشریح و استخوانهای اندامهای حرکتی آنها جدا و از مراحل کلسیم گیری، آبگیری، شفاف سازی، قالب¬گیری، مقطع گیری و رنگ آمیزی عبور داده شد. مقاطع تهیه شده با میکروسکوپ نوری مورد بررسی واقع شده و با توجه به تعداد خطوط توقف رشد در برشهای عرضی استخوان، سن تک تک نمونه¬ها تعیین گردید. نتایج بدست آمده نشان داد که محدودۀ سنی برای نمونه¬های R. ridibunda 11-3 سال و برای نمونه¬های B. viridis 8-1 سال می¬باشد. همچنین، به منظور تعیین رابطۀ بین سن و طول پوزه تا مخرج، اطلاعات حاصله با استفاده از روشهای آماری مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. نتایج حاصل از این بررسیها نشان داد که در هر دو گونۀ مورد مطالعه، به ویژه در سنین بالا، رابطۀ مستقیمی بین دو مؤلفۀ طول پوزه تا مخرج و سن مشاهده نمی¬شود. این یافته هم در مورد جنس نر و هم در جنس ماده صدق میکند. با توجه به نتایج حاصله می¬توان چنین نتیجه گیری کرد که در جمعیتهای مورد مطالعه، نمونه¬ها پس از رسیدن به بلوغ رشد مشخصی از خود نشان نمی¬دهند.
https://animal.ijbio.ir/article_454_fded17eb975f01f2ba4469ed66291eee.pdf
2014-08-23
176
184
2723
تخمین سن
طول عمر
خطوط توقف رشد
قورباغه
وزغ
صدیقه
اشکاوندی
s_bio84@yahoo.com
1
دانشگاه لرستان
AUTHOR
احمد
قارزی
ahgharzi@yahoo.com
2
عضو هیات علمی دانشگاه لرستان
LEAD_AUTHOR
محسن
عباسی
abbasi521@yahoo.com
3
عضو هیات علمی-دانشگاه لرستان
AUTHOR
Acker, P. M., Kruse, K. C., and Prehbiel, E. B., 1986. Aging Bufo americanus by skeletochronology. J. Herpetol. 20: 570-574
1
Alcobendas, M., and Castanet, J., 2000. Bone growth plasticity among populations of Salamandra salamandra: interactions between internal and external factors. Herpetologica. 56: 14-26
2
Augert, D., and Joly, P., 1993. Plasticity of age at maturity between two neighbouring populations of the common frog (Rana temporaria). Can. J. Zool; 71: 26-33
3
Bastein, H., and Leclair, R., 1992. Aging wood frogs (Rana sylvatica) by skeletochronology. J. Herpetol. 26: 222-225
4
Castano, M. H., and Castanet, J., 1987. Experimental data on bone growth and age in Triturus marmoratus (Amphibia, Urodela). In Proc. 4th Ord. Gen. Mtg. Soc. Eur. Herpetol. J. 87-90
5
Castanet, J., and Smirina, E., 1990. Introduction to the skeletochronological method in amphibians and reptiles. Ann Sci Nat Zool. 11: 191- 196
6
Castanet, J., Francillon-Vieillot, H., Meunier, F. J., and De Ricqles, A., 1993. Bone and individual aging. In bone (Bone growth-B). B. K. Hall, ed. CRC Press, Boca Raton, FL.: 245-283
7
Castanet, J., Francillon-Vieillot, H., and Bruce, R. C., 1996. Age estimation in Desmognathine salamanders assessed by skeletochronology. Herpetologica. 52: 160-171
8
Dixit, P. K., Andia, B. N., Behera, S., and Behera, H. N., 2010. Age determination in common Indian toad, Bufo melanostictus, by skeletochronology, The IUP Journal Sci. Tech., 4(3): 42-46
9
10. Gokhelashvili, R. K., and Tarkhnishvili, D. N., 1994. Age structure of six Georgian anuran populations and its dynamics during two consecutive years. Herpetozoa 7(1/2): 11-18
10
11. Halliday, T. R., and Verrell, P. A., 1988. Body size and age in amphibians and reptiles. J Herpetol. 22: 253-265
11
12. Hemelaar, A. S. M., 1981. Age determination of male Bufo bufo(Amphibian, Anura) from the Nether lands, based on year rings in phalanges. Amphibia- Reptilia.3/4: 223- 233
12
13. Hemelaar, A., 1985. An improved method to estimate the number of year rings resorbed in phalanges of Bufo bufo (L.) and its application to populations from different latitudes and altitudes. Amphi- Reptil. 6: 323-341
13
14. Hemelaar, A. S. M., and Van Gelder, J. J., 1980. Annul growth rings in phalanges of Bufo bufo (Anura, Amphibia) from the Netherlands and their use for age determination. Netherland J Zool. 30, 129:135
14
15. Hogland, H., and Saterberg, L., 1989. Sexual selection in common toads: correlates with age and body size. J. Evol. Biol. 2(5): 367–372
15
16. Khonsue, W., Matusui, M., and Misawa, Y., 2000. Age determination of Rana nigrovittata, a frog from tropical forest of Thailand. Zoological Science, 17: 253-257
16
17. Kleinenberg, S. E., and Smirina, E. M., 1969. A contribution to the method of age determination in amphibians. Zool J. 48: 1090-1094
17
18. Kusano, T., Fukuyama k.,[91] and Miyashita, N., 1995. Age determination of the stream frog. Rana sakuraii by skeletochronology. J Herpetol. 29: 625-628
18
19. Kusano, T., Fukuyama k.[92] and Miyashita, N., 1995. Body size and age determination by skeletochronology of the brown frog Rana tagoi tagoi in southwestern kanto. Jpn. J. Herpetol. 16: 29-34
19
20. Kutrop, Y. N., Cobanoglu, U., and Ozoran, Y., 2005. Age determination and some growth parameters of a Rana ridibunda population in turkey. Acta Zoologica Academiae Scientiarum Hungaricae, 51(1): 67-74
20
21. Kutrup, B., Cakir, E., Colak, Z., Bulbul, U., and Karaoglu, H., 2011. Age and growth of green Toad, Bufo viridis (Laurenti, 1768) from and island and a mainland population in giresun, Turkey. Journal of Animal and Veterinary Advances, 10(11): 1469-1472
21
22. Ledentsov, A. V., and Mekkumyan, L. S., 1986. On longevity and growth rate in amphibians and reptiles in Armenia. Proc. Zool. Inst. Acad. Sci. USSR. 158: 105–110. [in Russian]
22
23. MacCoy, E. D., Mushinsky, H. R., Shockley, W. J., and Alvarez, M. R., 2010. Skeletochronology of the threathened Florida sand skink, Plestiodon (Neoseps) reynoldsi. Copeia 1: 38-40
23
24. Peabody, F. E., 1961 Annual growth zones in vertebrates (living and fossils). J. Morphol. 108: 11-62
24
25. Schroeder, E. E., and Baskett, T. S., 1968. Age estimation, growth rates and population structure in Missouri bullfrogs. Copeia. 1968: 583-592
25
26. Smirina, E. M., 1974. Prospects of age determination by bone layers in Reptilia, Zool. Zh. 53: 111-117
26
27. Smirina, E. M., 1994. Age determination and longevity in amphibians. Gerontology. 40: 133–146
27
28. Tamotsu, K., Kazuko, M., and Shingenori, K., 2010. Body size and age structure of a breeding population of the Japanese common toad, Bufo japonicus formosus (Amphibia: Bufonidae). Current Herpetology, 29(1): 23-31
28
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر زمان مهاجرت تولید مثلی روی نسبتهای یونی پلاسمای اسپرمی مولدین ماهی کلمه (Rutilus rutilus caspicus)
طی این بررسی نسبتهای یونی پلاسمای سمینال مولدین ماهی کلمه در زمانهای مختلف مهاجرت تولید مثلی مورد بررسی قرار گرفتند. برای این کار فصل مهاجرت مولدین ماهی کلمه (بهمن تا فروردین) به سه دوره تقسیم شد و در هر دوره از 10 ماهی نر با اندازه یکسان نمونه برداری شد. نمونه های سمن بلافاصله داخل فلاسک یخ قرار گرفت و سریعا به آزمایشگاه مرکزی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان انتقال یافت. یونهای سدیم و پتاسیم توسط دستگاه فلیم فتومتر و یونهای کلسیم و منیزم توسط دستگاه اسپکتروفتومتر اندازه گیری شدند. بین نسبت های یونی سدیم به پتاسیم، سدیم به کلسیم، وکلسیم به منیزیم پلاسمای اسپرمی در زمانهای مختلف مهاجرت تولید مثلی مولدین ماهی کلمه اختلاف معنی دار (05/0>P) وجود داشت. اما بین نسبت های یونی سدیم به منیزیم و پتاسیم به منیزیم و پتاسیم به کلسیم پلاسمای اسپرمی درزمانهای مختلف مهاجرت تولید مثلی مولدین ماهی کلمه اختلاف معنی دار وجود نداشت. با توجه به اینکه مقادیر برخی از این نسبتهای یونی در میانه زمان مهاجرت تولید مثلی بیشتر از سایر زمانهای مهاجرت بود در نتیجه میتوان گفت که مولدین ماهی کلمه مهاجر در میانه زمان مهاجرت ازکیفیت سمن بالاتری برخوردار هستند.
https://animal.ijbio.ir/article_466_0994184d0493ccd0819cbffa4168d83f.pdf
2014-08-23
185
193
2724
نسبتهای یونی
زمان مهاجرت
پلاسمای اسپرمی
ماهی کلمه Rutilus rutilus caspicus
محمد رضا
ایمانپور
1
گرگان، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، دانشکده شیلات، گروه شیلات
LEAD_AUTHOR
امین
گلپور
2
لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان، باشگاه پژوهشگران جوان
AUTHOR
سید عباس
حسینی
3
گرگان، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، دانشکده شیلات، گروه شیلات
AUTHOR
1- ایمانپور، م. ر.، هرسیج، م.، 1385. اثر رقیق کنندهها روی پارامترهای اسپرم شناختی ماهی شیپ. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 55ص.
1
2- تکه، ش.، 1386 اثر زمان مهاجرت تولید مثلی مولدین ماهی سفید Rutilus frisi kutum روی برخی از پارامترهای اسپرم شناختی و بیوشیمیایی سمن. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طیعی گرگان. دانشکده شیلات و محیط زیست.107ص.
2
3- Alavi, S.M.H., Cosson, J., Karami, M., Abdolahi, H., and Mojazi, A. 2004. Chemical composition and osmolality of seminal plasma Acipenser persicus, their physiological relationship with sperm motility. Aquaculture international 35, 1238-1243.
3
4-Alavi, S.M.H., and j, Cosson. 2006. Sperm motility in fishes. II. Effects of ions and osmolality: a review, cell biology international 30, 1-14.
4
5-Alavi, S.M.H., Linhart, O., Coward, K. and Rodina, M., 2007. Fish spermatology: implications for aquaculture management. In: Alavi, S.M.H., 5-Cosson, J., Coward, K. and Rafiee, G., Editores, Fish Spermatology, Alpha Science Ltd. Pp: 397-461.
5
6-Baynes, S.M., Scott, A.P. 1981. Rainbow trout, (Onchorhynchus Mykiss), spermatozoa: effect of cations and PH on motility. J. Fish. Biol. 19, 259-267.
6
7- Billard, R., Cosson, G., Perchec, G. and Linhart, O., 1995. Biology of sperm and artificial reproduction in carp. Aquaculture 129, 95– 112.
7
8- Ciereszko, A., Glogowski, J. and Dabrowski, K. 2000. Biochemical characteristics of seminal plasma and spermatozoa of freshwater fishes.In: Cryopreservation of Aquatic Species. Aquaculture Society, p.20–48.
8
9- Cosson, J. and linhart, O., 1996. Paddle fish polyodon spathula spermation effect of potassium and PH on motility. Follia. Zoology. 45:361-370.
9
10- Cosson J., Linhart O., Mims S.D., Shelton, W.L. and Rodina, M. 2000. Analysis of motility parameters from paddlefish and shovelnose sturgeon spermatozoa. Journal of Fish Biology 56, 1-20.
10
11-Cosson J., et al 2000. Analysis of motility parameters from paddlefish and shovelnose sturgeon spermatozoa. Journal of Fish Biology 56, 1-20.
11
12-Derzhavin, A.E, 1951. Essay of the history of the Caspian Sea and freshwater bodies of Azerbaijan. Animal kingdom of Azerbaijan.
12
13- Lahnsteiner, F., Berger, B., Weismann, T. and Patzner, R.A., 1996. Motility of spermatozoa of Alburnus alburnus (Cyprinidae) and its relationship to seminal plasma composition and sperm metabolism. Fish Physiol.Biochem 15, 167– 179.
13
14-Lund, J.H. and Vollestad, L.A. 1985. Homing precision of roach Rutilus rutilus in lake arungen, Norway, environmental biology of fihes 13, 235-239
14
15- Linhart, O., Slectha, v., and slavik, T. 1991. Fish sperm composition and biochemistry. Bull Inst Zool Acad Sin mongor 16, 285-311.
15
16- Petr, T. 1987. Observation on prospects for further inland fisheries development in Iran, FAO corporate document repository, project reports, 77p.
16
17- Rurangwa, E., Kime, D.E., Olevier, F. and Nash, J.P., 2004. The measurement of sperm motility and factors affecting sperm quality in cultured fish. Aquaculture 234, 1–28.
17
18- Secer, S., Tekin, N., Bozkurt, Y., Bukan, N. and Akcay, A., 2004. Correlation between biochemical and spermatological parameters in rainbow trout semen. IJA 56, 274–280.
18
19-Takai, H. and M, Morisawa 1995. Changes in intracellular KC concentration caused by osmolality change regulate sperm motility of marine and fresh water teleosts. Journal cell science 108, 1175- 1181.
19
20-Tekin, N., Secer, S., Akcay, E. and Bozkurt, Y., 2003. Cryopreservation of rainbow trout (oncorhynchus mykiss) semen. Israeli J. Aquacult. Bamidgeh 55, 208–212.
20
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر ترکیبی رژیم های نوری و جیرههای غذایی جلبکی بر رشد و تولید در آنتنمنشعب آب شیرین Ceriodaphnia quadrangula
این تحقیق با هدف تاثیررژیم های مختلف نوری و جیره های جلبکی بطور ترکیبی بر میزان رشد و تولید در C. quadrangula انجام شد. تیمارهای آزمایشی شامل 4 رژیم نوری : 4L:4D (4 ساعت نور: 4 ساعت تاریکی)، 6L:6D ، 8L:8D و 12L:12D و 2 جیره جداگانه جلبک سبز Scenedesmus quadricauda و Chlorella vulgaris بود که بصورت یک طرح کاملا تصادفی با 6 تکرار انجام شد. نتایج نشان داد که تراکم جمعیت، میزان رشد ویژه و زمان دوبرابر شدن جمعیت C. quadrangula درتیمارهای مختلف آزمایش شده تفاوت معنی داری دارد (05/0>P). میانگین بالاترین تراکم آنتن منشعب C. quadrangula تغذیه شده با جلبک S. quadricauda در تیمارهای 4L: 4D ، 6L:6D ، 8L:8D و 12L:12D به ترتیب 9/50 ± 1000 (میانگین± خطای استاندارد)، 3/57 ± 4/571، 3/62 ± 5/690 و 7/ 58± 1000 فرد در لیتر در حالیکه این تیمارها با جلبک C. vulgaris به ترتیب برابر 0/46± 9/1642، 2/72 ± 9/2261، 0/75 ± 8/1023 و 3/80 ± 1/2619 فرد در لیتر در دوره آزمایش به دست آمد. همچنین میانگین میزان رشد ویژه بدست آمده در تیمارهای مختلف دامنه ای از 04/0 تا 11 /0 در روز داشت. این تحقیق مبین ان است که C. quadrangula قابلیت پرورش در رژیم های مختلف نوری و همچنین جیره های جلبکی را دارد اما می توان با استفاده ازترکیب شرایط پرورش 12L:12D و جلبک C. vulgaris مناسب ترین عملکرد را فراهم نمود.
https://animal.ijbio.ir/article_460_ab7cfe124c79178dde10a3f6919bdcd3.pdf
2014-08-23
194
206
2725
زئوپلانکتون
شرایط محیطی
Ceriodaphnia
جلبک های میکروسکوپی
دلارام
تقوی
1
دانشگاه صنعتی اصفهان
AUTHOR
امیدوار
فرهادیان
omfarhad@cc.iut.ac.ir
2
هیات علمی دانشگاه صنعتی اصفهان
LEAD_AUTHOR
نصراله
محبوبی صوفیانی
soofiani@cc.iut.ac.ir
3
هیات علمی دانشگاه صنعتی اصفهان
AUTHOR
یزدان
کیوانی
keivany@cc.iut.ac.ir
4
هیات علمی دانشگاه صنعتی اصفهان
AUTHOR
1. احمدی فرد، ن.، عابدیان کناری، ع.، و فلاحی کپور چالی، م.، 1387. اثر مقدار و نوع غذای جلبکی بر اندازه بدن و تخم جمعیت روتیفر آب شیرین Brachionus clayciflorus تالاب انزلی. مجله زیست شناسی ایران، جلد 21، شماره 3، صفحات 382- 392.
1
2. فرهادیان، ا.، 1390. رشد و تولید در سیکلوپوئید پاروپای Microcyclops varicans. مجله زیست شناسی ایران، جلد 24، شماره 4، ص 549- 557.
2
3. Adeyemo, A. A., Oladosu, G. A., and Ayinla, A. O., 1994. Growth and survival of fry of African catfish spesies, Clarias gariepinus, Burchell, Hetrobranchus bidorsalis geoffey and Heteroclarias reared on Moina dubia in comparison with other first feed sources. Aquaculture, 119: 41- 45.
3
4. Ahlgren, G., Inga-Britt, G., and Boberg, M., 1992. Fatty acid content and chemical composition of freshwater microalgae. Journal of Phycology, 28, 37–50.
4
5. Ambler, J. A., 1986. Effect of food quantity and quality on egg production of Acartia tonsa Dana from East Lagoon, Galveston, Texas. Estuarine, Coastal and Shelf Science. 23: 183- 196.
5
6. Balcer, M. D., Korda, N. L., and Dodson, S. I., 1984. Zooplankton of the great lakes: A guide to the identification and ecology of the common crustacean species. University of Wisconsin Press, Madison, Wisconsin, PP: 58- 60.
6
7. Brett, M. T., and Muller-Navarra, D. C., 1997. The role of highly unsaturated fatty acids in food web processes. Freshwater Biology.38: 483-499.
7
8. Buikema, A. L., 1973. Some effect of light on the growth, molting, reproduction and survival of the cladoceran, Daphnia pulex. Hydrobiologia, 41: 391- 418.
8
9. Camus, T., and Zeng, C., 2008. Effects of photoperiod on egg production and hatching success, naupliar and copepodite development, adult sex and life expectancy of the tropical calanoid copepod Acartia sinjiensis. Aquaculture, 280: 220-226.
9
10. Castro-Longoria, E., 2003. Egg production and hatching success of four Acartia species under different temperature and salinity regimes. Journal of Crustacean Biology. 23: 89- 299.
10
11. Farhadian[91] , O., Yusoff, F. M., Mohamed, S., and Saad, C. R., 2009. Use of cyclopoid copepod Apocyclops dengizicus as live feed for Penaeus monodon postlarvae. Journal of the World Aquaculture Society. 40: 22-32.
11
12. Fernando, C. H., 2002. A Guid to tropical freshwater zooplankton. Backhuys Publisheres, Leiden, The Netherlands.
12
13. Gulati, R. D., and DeMott, W., 1997. The role of food quality for zooplankton: remarks on the state of the art, perspectives and priorities. Freshwater Biology. 38: 731–738.
13
14. Ismail, H. N., Qin, J. G., and Seuront, L., 2011. Dietary responses of the brackish cladoceran Daphniopsis australis fed on different algal species. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 409: 275- 282.
14
15. James[92] , C. M., and Al-Khars, A. M., 1986. Studies on the production of planktonic copepods for Aquaculture. Syllogeus, 58: 333-340.
15
16. Klepper, G. S., Burkart, C. A., and Houchin, L., 1998. Nutrition and the regulation of egg production in the calanoid copepod Acartia tonsa. Limnology and Oceanography. 43: 1000- 1007.
16
17. Koski, M., and Kuosa, H., 1999. The effect of temperature, food concentration and female size on the egg production of the planktonic copepod Acartia bifilosa. Journal of Plankton Research. 21: 1779- 1789.
17
18. Kumar, S., 2002. Role of water quality and food on survival, growth and digestive enzyme profile of carp larvae cultured in recirculating systems. Ph.D. Thesis, University of Delhi, Delhi, India.
18
19. Leandro, S. M., Tiselius, p., and Queiroga, H., 2006. Growth and development of nauplii and copepodites of the estuarine copepod Acartia tonsa from southern Europe (Ria de Aveiro, Portugal) under saturating food conditions. Marine Biology. 150: 121- 129.
19
20. Lumer, H., 1931. The reactions of certain cladocera to colored lights of equal intensity. Oxford University Press. 8: 396.
20
21. Martinez-Jeronimo, F., and Gutierrez-Valdivia, A., 1991. Fecundity, reproduction and growth of Moina macrocopa fed different algae. Hydrobiologia. 222: 49- 55.
21
22. Martinez[93] , M. P., and Chakroff, J. B. P., 1975. Direct phytoplankton counting technique using using the hemacytometer. Philippine Agriculture Science, 59: 43-50.
22
23. Nandini, S., and Sarma, S.S.S., 2003. Population growth of some genera of cladocerans in relation to algal food (Chlorella vulgaris) levels. Hydrobiologia, 491: 211- 219.
23
24. Nandini, S., and Sarma, S. S. S., 2000. Life table demography of four cladoceran species in relation to algal food (Chlorella vulgaris) density. Hydrobiologia, 435:117-126.
24
25. Nichols, H. W., and Bold, H. C., 1965. Trichorsarcina polymorpha gen. et sp. nov. Journal of phycology. 1: 34-38.
25
26. Omori, M., and Ikeda, T., 1984. Methods in zooplankton ecology. John Wiley and Sons Inc., New York, 332P.
26
27. Peck, M. A., Ewest, B., Holste, L., Kanstinger, P., and Martin, M., 2008. Impacts of light regime on egg harvests and 48-h egg hatching success of Acartia tonsa (Copepoda: Calanoida) within intensive culture. Aquaculture, 275: 102-107.
27
28. Peck, M. A., and Holste, L., 2006. Effects of salinity, photoperiod and adult stocking density on egg production and egg hatching success in Acartia tonsa (Calanoida: Copepoda): optimizing intensive cultures. Aquaculture, 255: 341-350.
28
29. Pena-Aguado, F., Nandidi, S., and Sarma, S. S. S., 2005. Differences in population growth of rotifers and cladocerans raised on algal diets supplemented with yeast, Limnologica 35: 298-303.
29
30. Richmond, A., 1986. Cell response to environmental factors. In A. Richmond, editor, Handbook of Microalgal Mass Culture. CRC, Boca Raton, PP: 69- 106.
30
31. Rodriguez, V., Guerreo, F., and Bautista, B., 1995. Egg production of individual copepods of Acartia graniSars from coastal waters: seasonal and diel variability. Journal of Plankton Research. 17: 2233- 2250.
31
32. Savas, S., and Erdogan, O., 2006. The effect of food (Scendesmus acuminatus (Von Lagerheim) R.H. Chodat) densities and temperature on the population growth of the cladoceran Ceriodaphnia quadrangula (Muller, 1785). Journal of Fisheries & Aquatic Sciences, 23:113- 116.
32
33. Segal, E., 1970. Light invertebrates. In: O. Kinne, editor, London, Wiley-Interscience. Marine Ecology 1: 159-211.
33
34. Seyfabadi, J., Ramezanpour, Z., and Amini Khoeyi, Z., 2010. Protein, fatty acid, and pigment content of Chlorella vulgaris under different light regimes. Journal of Applied Phycology 23:721-726.
34
35. SPSS., 2007. Statistical Pakage for Social Science. Version 16, SPSS Inc., Michigan Avenue, Chicago, Illinois, USA.
35
36. Starkweather, P. L., 1973. Influence of light regime on postembryonic development in two strain of Daphnia pulex. Limnology and Oceanography. 21:830-837.
36
37. Thompson, P. A., Guo, M., and Harrison, P. J., 1993. The influence of on the biochemical composition of three phytoplankton species and their nutritional value for larvae of the Pacific Oyster (Crassosstrea gigas). Marine Biology. 117: 259- 268.
37
38. Vandekerkhove[94] , J., Declerck, S., Vanhove, M., Brendonck, L., Jeppesen, E., Conde Porcuna, J. M., and De Meester, L., 2004. Use of ephippial morphology to assess richness of anomopods: potentials and pitfalls. Journal of Limnology. 63: 75-84.
38
39. Verbitsky, V. B., Verbitskaya, T. I., and Malysheva, O. A., 2009. The influence of various temperature regimes on the abundance dynamics and thermal tolerance of cladoceran Ceriodaphnia quadrangula (O.F. Muller, 1785). Inlang Water Biology, 2:67-71.
39
40. Watanabe, T., and Kiron, V., 1994. Prospects in larval fish dietetics. Aquaculture, 124: 223- 251.
40
41. Zar, J. H., 1984. Biostatistical Analysis, 2nd edition. Prentice Hall Inc., Engewood Cliffs, New York. 718.
41
42. Zhu, C. J., Lee, Y. K., Chao, T. M., and Lim, S. H., 1997. Diurnal changes in gross chemical composition and fatty acid profiles of Isochrysis galbana TK1 in outdoor closed tubular photobioreactors. Journal of Marine Biotechnology. 5:153–157.
42
ORIGINAL_ARTICLE
ویژگیهای زیستی شبپره خرنوب Ectomyelois ceratoniae ( Zeller) (Lepidoptera: Pyralidae) روی دو رقم تجاری پسته و غذای مصنوعی
شب¬پره خرنوب Ectomyielois ceratoniae ( Zeller) (Lepidoptera: Pyralidae)یکی از آفات جدی انار در ایران است. این حشره هم¬چنین روی تعداد زیادی از میوه¬ها و میوه¬های خشک در انبار مشاهده شده است. ویژگی¬های زیستی شب¬پره خرنوب (Ectomyielois ceratoniae) در شرایط دمایی 1±30 درجه سلسیوس، رطوبت نسبی 5±70 درصدو دوره نوری 16 ساعت روشنایی و 8 ساعت تاریکی روی دو رقم تجاری پسته (اکبری و کله¬قوچی ) و غذای مصنوعی بررسی شد.. کوتاه¬ترین دوره رشدی لارو مربوط به غذای مصنوعی و طولانی¬ترین آن مربوط به پسته کله¬قوچی بود. بیشترین مقادیر نرخ ذاتی افزایش جمعیت، نرخ متناهی افزایش جمعیت، نرخ خالص تولید¬مثل و نرخ ناخالص تولید¬مثل در حشرات پرورش یافته روی غذای مصنوعی مشاهده شد. این پارامترها در غذای مصنوعی به ترتیب 0064/0±1407/0روز 1-، 0075/0± 151/ 1روز 1- ، 44/10 ± 94/58 نتاج ماده و 09/2 ±02/95 تخم/ ماده به دست آمد. متوسط مدت زمان یک نسل آفت روی سه میزبان غذای مصنوعی، پسته اکبری و پسته کله¬قوچی به ترتیب 33/0± 05/29، 21/0 ± 92/31 و 27/0 ± 1/33 روز محاسبه شد. غذای مصنوعی به دلیل دوره زندگی کوتاهتر، درصد بالاتر بقا و مقدار تخم بیشتر میزبان مناسب¬تری برای آفت محسوب می¬شود. این اطلاعات اشاره به نقش میزبان در افزایش جمعیت آفت دارد.
https://animal.ijbio.ir/article_459_9e3c85adfd0c5e19db1064e7d9670da9.pdf
2014-08-23
207
218
2726
Ectomyelois ceratonia
پسته
دموگرافی
نعیمه
تیموری
1
دانشگاه گیلان
AUTHOR
جلال
جلالی سندی
jjsendi@gmail.com
2
عضو هیات علمی دانشگاه گیلان
LEAD_AUTHOR
علی
جعفری ندوشن
3
مرکز تحقیقات انار کشور
AUTHOR
پناهی، ب.، اسماعیل پور، ع.، فربود، ف.، موذن پور کرمانی، م.، و فریور میهن، ح.،1380. راهنمای پسته (کاشت، داشت، برداشت) گروه تکنولوژی آموزشی. 149ص.
1
شاکری، م.، و دانشور، م.،1383. گزارش همایش بررسی دستاوردها و مشکلات مدیریتی کرم گلوگاه انار، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان یزد، 94 ص.
2
مهرنژاد، م.، 1371. زیست شناسی شبپره خرنوب Apomyelois ceratonia آفت جدید پسته در رفسنجان. مجله آفات و بیماریهای گیاهی، جلد 60. شمارههای 1 و 2. صفحهی 11-1.
3
Amir-Maafi, M., and Chi, H., 2006. Demography of Habrobracon hebetor (Hym: Braconidae) on two pyralid hosts (Lep: Pyralidae). Annales of Entomological Society of America. 99 (1): 84-90.
4
Bellows, T. S. Jr., Van Driesche, R. G., and Elkinton, J. S., 1992. Life table construction and analysis in the evaluation of natural enemies. Annual Review of Entomology. 37: 587- 614.
5
Carey, J. R.,1993. Applied demography for biologists, with special emphasis on insects. Oxford University Press,U.K. 211P.
6
Carey, J. R., 2001. Insect biodemography.Annal Review of Entomology.46,79-110.
7
Chi, H., and Liu, H., 1985. Two new methods for the study of insect population ecology. Bulletin[91] of the Institute of Zoology. Academia Sinica. 24. 225–240.
8
Chi, H., 2005. TWOSEX-MSChart: computer program for age-stage, two-sex life table analysis. National Chung Hsing University Taichung, Taiwan (http://140.120.197.173/ Ecology/product 02.htm).
9
10. Fisher, R. A., 1930. The genetical theory of natural selection. pp: 227. Calrendon Press, Oxford.
10
11. Frel, A. G. H., Cardona, C., and Dorn., S., 2003. Antixenosis and antibiosis of common beans to Thrips palmi. Journal of Economic Entomology. 93.1577-1584.
11
12. Gothilf, S., 1968. The biology of the carob moth Ectomyelois ceratoniae (Zell) in Israel. I. Mass culture on artificial diet. Israel Journal Entomology 3: 109- 118.
12
13. Halperin, J., 1986. Occurrence of the carob moth in pistachio, Alon Hanotea, 40 (10).
13
14. Landahl, J. T., and Root, R. B., 1996. Differences in the life tables of tropical and temperate milkweed bugs, genus Oncopeltus (Hemiptera: Lygaeidae). Ecology. 50: 734-737.
14
15. Nay, J. E., and Perring, T. M., 2008. Influence of host plant stages on carob moth (Lepidoptera: Pyralidae) Development and fitness. Environmentall Entomology, 37(2): 568- 574.
15
16. Norouzi, A., Talebi, A. A., and Fathipour, Y., 2008. Development and demographic parameters of the carob moth Apomyelois ceratoniae on four diet regimes. Bulletin of Insectology. 61(2): 291-297.
16
17. Rice, R. E., 1978. Navel orange worm: a pest of pistachio nuts in California. Journal 0f Economic and Entomology. 71: 822-824.
17
18. SAS Institute, 1997. SAS/STAT User`s Guide for Personal Computers, SAS Institute, Cary, NC.
18
19. Southwood, T. R. E., and Henderson, P. A., 2000. Ecological methods. 3rd ed. 592 P. Blackwell Sciences,Qxford.
19
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین زمان بلوغ جنسی گونه Knipowitschia caucasica از خانواده گاوماهیان در تالاب گمیشان
روند تولید مثلی گونه Knipowitschia caucasica در طی دوره یک سال(آبان 1385 – مهر 1386) در تالاب گمیشان مورد بررسی قرار گرفت. از تخمدان ماهیان ماده بالغ نمونه برداری صورت گرفت. نمونه های تخمدان در محلول فرمالین بافر فسفات تثبیت شدند و سپس با استفاده از روش پارافینه کردن و رنگ آمیزی هماتوکسیلین-ائوزین از آنها مقاطع بافتی تهیه شد. در این مرحله تعداد ائوسیت های تمایز نیافته، ائوسیت مرحله پیش زرده ای، ائوسیت مرحله زرده سازی، ائوسیت مرحله پس زرده ای و تخمک گذاری نهایی بررسی و شمارش شد. قطر تخمدان، تعداد هستک، هسته و قطر هستک و هسته همگی مورد اندازه گیری قرار گرفت. سپس با کمک برنامه آنالیز آماری Systat مورد بررسی قرار گرفت و مشاهده گردید : در گونه Knipowitschia caucasica با توجه به 05/0>P تغییرات معنی دار : ائوسیت تمایز نیافته و پیش زرده ای و قطرلایه کوریونی و قطر لایه فولیکولی و با اندازه گیری GSI ملاحظه گردید که اوج رسیدگی جنسی در بهمن ماه است.
https://animal.ijbio.ir/article_451_dc9179e1bcaf74918abb1601b9a6ca50.pdf
2014-08-23
219
226
2727
واژه های کلیدی: ائوژنز
بلوغ جنسی
Knipowitschia caucasica
تالاب گمیشان
دریای خزر
شبنم
چاوشی
shabnam_chavoshi@yahoo.com
1
دانشگاه شهید بهشتی
LEAD_AUTHOR
اصغر
عبدلی
asabdoli@yahoo.com
2
دانشگاه شهید بهشتی
AUTHOR
کاظم
پریور
kazem_parivar@yahoo.com
3
دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران
AUTHOR
رحمان
پاتیمار
rpatimar@yahoo.com
4
دانشگاه گنبد
AUTHOR
افرایی بندپی، م.، حسننیا، م.، و رستمیان، م.، 1379. برخی از خصوصیات زیستی و پراکنش گاو ماهی (Knipowitschia caucasica Kawrajsky, in Berg 1916) در خلیج گرگان (سواحل جنوب شرقی دریای خزر). مجله پژوهش و سازندگی13. 4 (پی آیند 49):99-101.
1
بهادری، م.، 1379. فن بافت شناسی انتشارات دانشگاه تهران.
2
پریور، ک.، محسنی کوچصفهانی، ه.، 1372. اطلس جنینشناسی و جنین شناسی تجربی، انتشارات جهاد دانشگاهی دانشگاه تربیت معلم تهران.
3
عبدلی، ا.، 1378. ماهیان آبهای داخلی ایران، انتشارات موزه طبیعت و حیات وحش ایران.
4
عبدلی، ا.، نادری، م.، 1387. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر، انتشارات علمی آبزیان.
5
Corkum, L. D., 2004. The round goby, Neogobius melanostomus a fish invader on both sides of the Atlantic Ocean. Biological Invasion, 6:173-181.
6
Freyhof, J., and Kottelat, M., 2008. The IUCN Red list of theratend species 2010.
7
Kiabi, B. H., Abdoli, A., aderi, M., 1999Status of the fish fauna in south Caspian Basian of Iran, Zoology –in-the-middle-east, 18:57-65.
8
Kevrekedis, T., 2004. Seasonal Variation of the Macrozoobenthic Cimmunity Structure at Low Salinities in a Mediterranean Lagoon (Monolimni Lagoon, Northern Agean), Willy-VCH 1434-2944
9
10. Miller, P. J., 1983. ishes of north-eastern Atlantic and the Meditranean (FNAM), eds. Helm, London, 220P.
10
11. Sunobe, T., Nakamura, M., Kobayashi, Y., Kobayashi, T., Nagahama, Y. 2006. Aromatase immunoreactivity and the rol of enzymes in steroid pathways for index sex change in the hermaphrodite gobiid fish Trimma okinawae.CBP, PP:54-59
11
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه فرایند آبگیری تخمک ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) طی تکوین آن
در مطالعه حاضر، عوامل اسموتیکی موثر بر فرایند آبگیری اووسیت (سدیم، پتاسیم، کلسیم، کلر، فسفر غیرآلی و پروتئین تام) هم در بافت تخمدانی و هم در پلاسمای خون ماهی قزل آلای رنگین کمان طی تکوین بررسی شد. اووسیت بسیاری از ماهیان استخوانی طی رسیدگی نهایی، افزایش در حجم اووسیت و محتویات آب را نشان می دهند، فرایندی که بعنوان آبگیری اووسیت نامیده می شود. پلاسمای نمونه های در حال رسیدگی بعد از خونگیری و اووسیتها نیز بعد از هموژن شدن در oC20- جهت آنالیز نگهداری شدند. یونهای سدیم و پتاسیم با شعله سنجی، کلر، کلسیم و فسفر غیر آلی با رنگ سنجی و پروتئین تام به روش Bradford بهمراه میزان آب، اسمولاریته و قطر اووسیت در سه مرحله پیش زرده سازی، زرده سازی و رسیدگی اندازه گیری شدند. نتایج نشان داد که یونهای پتاسیم، سدیم، کلر و فسفر غیرآلی در اووسیت روند صعودی داشتند (P<0.05) در حالیکه پروتئین اووسیت و کلسیم پلاسما روند نزولی را نشان دادند (P<0.05). همبستگی مثبت به ترتیب بین میزان آب اووسیت و پتاسیم، فسفر غیرآلی، سدیم و کلر وجود داشت. بنظر می رسد که تغییرات مذکور، همگی نیروی لازم جهت کشش آب به داخل اووسیت جهت آبگیری ایجاد کرده اند. بطور کلی، بدلیل حضور تخمهای بنتوفیل در ماهی قزل آلا، آبگیری اووسیت درمقایسه با ماهیان دریایی کمتر رخ می دهد با این وجود استفاده از یونهایی همچون پتاسیم، سدیم و کلر با توجه به نقش مهم آنها در پدیده آبگیری جهت رسیدگی سریعتر تخمدان ماهی قزل آلا در محیطهای تکثیر مصنوعی می تواند مطالعه شود.
https://animal.ijbio.ir/article_446_a662c462bed5c505e5bf5511ba43ae18.pdf
2014-08-23
227
238
2728
آبگیری
رسیدگی
قزل آلا
بنتوفیل
بهروز
حیدری
behrooz1072@yahoo.com
1
هیئت علمی/ دانشگاه گیلان
LEAD_AUTHOR
نادر
شعبانی پور
nshabanipour@yahoo.com
2
دانشگاه گیلان
AUTHOR
فاطمه
زارع
fateme_9494@yahoo.com
3
دانشگاه گیلان
AUTHOR
حیدری، ب.، شعبانیپور، ن.، سواری، احمد.، 1389. تغییرات اسموتیکی پلاسمای خون طی مراحل تکوینی اووسیت ماهی سفید دریای خزر Rutilus frisii kutum. مجله زیست شناسی ایران، ج 23 (4): 560-572.
1
زارع، ف.، 1388. مقایسه فرایند آبگیری بین ماهی پلاژوفیل کفال طلایی(Liza aurata) ، ماهی بنتوفیل قزل آلا (Onchorhynchus myliss) و ماهی آنادروموس سفید(Rutilus frisii kutum) طی تکوین اووسیت. تز[91] پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه گیلان.
2
Bjornsson, B. J., and Haux, C., 1985. Distribution of calcium, magnesium and inorganic phosphate of estradiol-17b treated rainbowtrout. J. Comp. Physiol (B). 155:347-352.
3
Bradford, M. M., 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein dye binding. Anal. Biochem. 72:248-254.
4
Carnevali, O., Carletta, R., Cambi, A., Vita, A., and Bromage, N., 1999. Yolk formation and degradation during oocyte maturation in seabream Sparus aurata. Involvement of two lysosomal proteinases. Biol. Reprod. 60:140–146.
5
Carnevali, O., Mosconi, G., Cardinali, M., Meiri, I., and Polzonetti-Magni, A., 2001. Molecular components related to egg viability in the gilthead seabream, Sparus aurata. Mol. Reprod. Dev. 58:330–335.
6
Cerda, J., Fabra, M., and Raldua, D., 2007. Physiological and molecular basis of fish oocyte hydration. In: Babin PJ, Cerda J, Lubzens E (eds), The fish oocyte from basic studies to biotechnological applications. Springer, Dordrecht, The Netherlands. PP: 349-396.
7
Chen, Y-N., Hsieh, S-L., and Kuo, C. M., 2003. Changes in oocyte and blood plasma osmotic components of ayu, Plecoglossus altivelis Temminck and Schlegel during oocyte maturation. Aquacult. Res. 34:859–867.
8
Finn, R. N., 2007. The maturational disassembly and differential proteolysis of paralogous vitellogenins in a marine pelagophil teleost: A conserved mechanism of oocyte hydration. Biol. Reprod. 76:936-948.
9
10. Finn, R. N., Ostby, G. C., Norberg, B., and Fyhn, H. J., 2002. In vivo oocyte hydration in Atlantic halibut (Hippoglossus hipoglossus): proteolytic liberation of free amino acids, and ion transport, are driving forces for osmotic water influx. J. Exp. Biol. 205:211–224.
10
11. Fyhn, H. J., Finn, R. N., Reith, M., and Norberg, B., 1999. Yolk protein hydrolysis and oocyte free amino acids as key features in the adaptative evolution of teleost fishes to seawater. Sarsia, 84:451–456.
11
12. Greeley, M. S., Calder, D. R., and Wallace, R. A., 1986. Changes in teleost yolk proteins during oocyte maturation: correlation of yolk proteolysis with oocyte hydration. Comp. Biochem. Physiol. 84B:1–9.
12
13. Greeley, M. S., Hols, H., and Wallace, R. A., 1991. Changes in size, hydration and low molecular weight osmotic effectors during meiotic maturation of Fundulus oocytes in vivo. Comp. Biochem. Physiol. 100A:639–647.
13
14. Hart, N. H., 1990. Fertilization in teleost fishes: mechanisms of sperm-egg interactions. Int. Rev. Cyto. 121, 1-66.
14
15. Kjorsvik, E., Mangor-Jensen, A., and Holmefjord, I., 1990. Egg quality in fishes. Adv. Mar. Biol. 26:71–113.
15
16. Kolarevic, J., Nerland, A., Nilsen, F., and Finn, R. N., 2008. Goldsinny wrasse (Ctenolabrus rupestris) is an extreme vtgAa-type pelagophil teleost. Mol. Reprod. Dev. 75:1011-1020.
16
17. Kristoffersen, A. B., and Finn, R. N., 2008. Major osmolyte changes during oocyte hydration of a clupeocephalan marine benthophil: Atlantic herring (Clupea harengus). Mar. Biol. 154, 683-692.
17
18. LaFleur, G. J. Jr., Raldua, D., Fabra, M., Carnevali, O., Denslow, N., Wallace, R. A., and Cerda, J., 2005. Derivation of major yolk proteins from parental vitellogenins and alternative processing during oocyte maturation in Fundulus heteroclitus. Biol Reprod. 73:815-824
18
19. LaFleur, G. J. Jr., and Thomas, P., 1991. Evidence for a role of Na+, K+-ATPase in the hydration of atlantic croaker and spotted seatrout oocytes during final maturation. J. Exp. Biol. 258:126–136.
19
20. Lee, C. S., and Donaldson, E. M., 2001. General discussion on “Reproductive biotechnology in finfish aquaculture. Aquaculture, 197: 303-320.
20
21. Mangor-Jensen, A., Waiwood, K. G., and Peterson, R. H., 1993.Water balance in eggs of striped bass (Morone saxatilis). J. Fish Biol. 43:345–353.
21
22. Matsubara, T., Ohkubo, N., Andoh, T., Sullivan, C. V., and Hara, A., 1999. Two forms of vitellogenin, yielding two distinct lipovitellins, play different roles during oocyte maturation and early development of barfin flounder, Verasper moseri, a marine teleost that spawns pelagic eggs. Dev. Biol. 213:18-32.
22
23. Milla, S., Jalabert, B., Rime, H., Prunet, P., and Bobe, J., 2006. Hydration of rainbow trout oocyte during meiotic maturation and in vitro regulation by 17,20, beta-dihydroxy-4-pregnen-3-one and cortisol. J. Exp Biol. 209:1147-56.
23
24. Mommsen, T. P., and Walsh, P. L., 1988. Vitellogenesis and oocyte assembly. In: Hoar WS, Randall VJ (eds), Fish Physiology XIA. Academic Press, New York, USA. PP: 347–406.
24
25. Podrabsky, J. E., Carpenter, J. F., and Hand, S. C., 2001. Survival of water stress in annual fish embryos: dehydration avoidance and egg envelope amyloid fibers. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 280:R123–R131.
25
26. Ravaglia, M. A., and Maggese, M. C., 2002. Oogenesis in the swamp eel Synbranchus marmoratus (Bloch, 1975) (Teleostei: Synbranchidae). Ovarian anatomy, stages of oocyte development and micropyle structure. Biocell 26:325-337.
26
27. Reith, M., Munholland, J., Kelly, J., Finn, R. N., and Fyhn, H. J., 2001. Lipovitellins derived from two forms of vitellogenin are differentially processed during oocyte maturation in haddock (Melanogrammus aeglefinus). J. Exp. Zool. 291:58-67.
27
28. Sawaguchi, S., Kagawa, H., Ohkubo, N., Hiramatsu, N., Sullivan, C. V., and Matsubara, T., 2006. Molecular characterization of three forms of vitellogenin and their yolk protein products during oocyte growth and maturation in red seabream (Pagrus major), a marine teleost spawning pelagic eggs. Mol. Reprod. Dev. 73, 719-736.
28
29. Skoblina, M. N., 2010. Hydration of Oocytes in Teleost Fishes. Russian J. Dev. Biol. 41(1):1–12.
29
30. Taylor, M. H., 1984. Lunar synchronization of fish reproduction. Trans. Am. Fish. Soc. 113:484–493.
30
31. Thorsen, A., Kjesbu, O. S., Fyhn, H. J., and Solemdal, P., 1996. Physiological mechanisms of buoyancy in eggs from brackish water cod. J. Fish Biol. 48:457–477.
31
32. Tosti, E., 2006. Calcium ion currents mediating oocyte maturation events. Repro. Biol. Endocr. 4:1-9.
32
33. Wallace, R. A., Greeley, M. S. Jr, and McPherson, R., 1992. Analytical and experimental studies on the relationship between Na+, K+, and water uptake during volume increases associated with Fundulus oocyte maturation in vitro. J. Comp. Physiol. B 162:241-248.
33
34. Wallace, R. A., and Selman, K., 1985. Major protein changes during vitellogenesis and maturation of Fundulus oocytes. Dev. Biol. 110: 492–498.
34
35. Watanabe, W. O., and Kuo, C. M., 1986. Water and ion balance in hydrating oocytes of the grey mullet, Mugil cephalus (L.), during hormone-induced final maturation. J. Fish Biol. 28:425–437.
35
ORIGINAL_ARTICLE
اثر ایمپلنت هورمون 17 بتا- استرادیول بر روند توسعه گنادی فیل ماهیان پرورشی در مرحله پیش زرده سازی
مطالعه حاضر به بررسی اثر سطوح مختلف ایمپلنت هورمون استرادیول بر روند توسعه گنادی در 20 عدد از فیل ماهیان پرورشی سه ساله که در مرحله پیش زرده سازی بودند، می پردازد. فیل ماهیان این مطالعه به صورت داخل صفاقی هر 5/1 ماه با کپسول هایی که با 3، 6 و 12 میلی گرم به ازای هر کیلوگرم وزن بدن استرادیول و کره کاکائو به عنوان حامل پر شده بودند مورد ایمپلنت قرار گرفتند و ماهیان تیمار کنترل، کپسول هایی را که تنها محتوی حامل بود دریافت نمودند. ماهیان در پایان مدت مطالعه (پس از طی 190 روز) برای تعیین مرحله رسیدگی جنسی، اندازه گیری قطر تخمک و تهیه اسلایدهای بافت شناسی مورد بیوپسی قرار گرفتند. در اندازه گیری قطر تخمک ماهیان در پایان مدت مطالعه اختلاف معنی دار آماری در تیمارهای مختلف وجود نداشت (05/0P>). در بررسی هیستولوژیک به عمل آمده در پایان مدت مطالعه نیز هیچ اختلاف معنی داری به لحاظ مساحت تخمک، قطر تخمک، مساحت هسته، قطر هسته و نسبت مساحت هسته به مساحت تخمک مشاهده نشد (05/0P>). با تکیه بر مطالعات بافت شناسی و شاخص های اندازه گیری شده در تخمک فیل ماهیان می توان بیان داشت که به کارگیری هورمون سبب تغییر در تخمک فیل ماهیان شده است اما به دلیل رشد کند تخمک در این مرحله و مدت محدود استفاده از این هورمون، اختلاف معنی داری یافت نشد.
https://animal.ijbio.ir/article_448_96ef2e969b71199392a211279faa6d25.pdf
2014-08-23
239
250
2729
فیل ماهی
17- بتا استرادیول
پیش رسی جنسی
ایمپلنت هورمون
هیستولوژی گناد
بهرام
فلاحتکار
bfalahatkar@yahoo.com
1
دانشگاه گیلان
LEAD_AUTHOR
سبحان
رعنای اخوان
2
دانشگاه گیلان
AUTHOR
محمد حسین
طلوعی گیلانی
3
اداره کل شیلات استان گیلان
AUTHOR
باقر
مجازی امیری
bmamiri@ut.ac.ir
4
دانشگاه نهران
AUTHOR
پیکان حیرتی، ف.، 1388. مطالعه القای رشد تخمک فیل ماهی پرورشی در مرحله پیش زرده گیری با استفاده از کاشت هورمون. رساله دکتری شیلات، دانشکده منابع طبیعی دانشگاه تهران. 88 ص.
1
فلاحتکار، ب.، 1386. ساخت اسید اسکوربیک در سه گونه از ماهیان خاویاری (Acipenseriformes) و نقش آن در پارامترهای کمی رشد. مجله زیست شناسی ایران. جلد 20. شماره 1. صفحات 137-128.
2
یارمحمدی، م.، پورکاظمی، م.، قاسمی حسن زاده صابر، م.، نوروزفشخامی، م. ر.، و برادران نویری، ش.، 1390. بررسی تعیین مارکر جنسیت در تاسماهی ایرانی (Acipenser persicus) با استفاده از نشانگر مولکولی AFLP (Amplified Fragment Length Polymorphism). مجله زیست شناسی ایران. جلد 24. شماره 6. صفحات943-935.
3
Barannikova, I., Bayunova, L., and Semenkova, T., 2004. Serum levels of testosterone, 11-ketotestosterone and oestradiol-17β in three species of sturgeon during gonadal development and final maturation induced by hormonal treatment. J. Fish Biol. 64: 1330-1338.
4
Birstein, V. J., 1993. Sturgeons and paddlefishes: Threatened fishes in need of conservation. Conserv. Biol. 7: 773-787.
5
Chapman, F. A., Swallow, R. L., and Doroshov, S. I., 1987. Ovarian cycle of white sturgeon (Acipenser transmontanus). Proceeding of the 3rd International Symposium on Reproductive Physiology of Fishes. St. John S., Newfoundland, Canada, August 2-7.
6
Conte, F. S., Doroshov, S. I., Hung, S. S.O., and Strange, E. M., 1988. Hatchery manual for the white sturgeon Acipenser transmontanus Richardson with application to other North American acipenseridae. Publication no. 3322. Division of Agricultural and Natural Resource, University of California, USA, P: 104.
7
Doroshov, S. I., Moberg, G. P., and Van Eenennaam, J. P., 1997. Observations on the reproductive cycle of cultured white sturgeon, Acipenser transmontanus. Environ. Biol. Fish. 48: 265-278.
8
Falahatkar, B., Tolouei, Gilani, M. H., Falahatkar, S., and Abbasalizadeh, A., 2011. Laparoscopy, a minimally-invasive technique for sex identification in cultured great sturgeon Huso huso. Aquaculture. 321: 273-279.
9
10. Gur, G., Melamed, P., Gissis, A., and Yaron, Z., 2000. The pituitary–gonadal axis during maturation of the black carp, Mylopharyngodon piceus. J. Exp. Zool. 286: 405-413.
10
11. Hinton, D. E., 1990. Histological techniques. In Methods in Fish Biology. Eds. Schreck, C.B., Moyle, P.B. American Fisheries Society, Bethesda, Maryland, PP: 191-212.
11
12. Hochleithner, M., and Gessner, J., 1999. The Sturgeon and Paddlefish (Acipenseriformes) of the World: Biology and Aquaculture. Aqua Tech Publications, Kitzbuhl, P: 165.
12
13. Hurvitz, A., Jackson, K., Degani, G., and Levavi-Sivan, B., 2007. Use of endoscopy for gender and ovarian stage determinations in Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii) grown in aquaculture. Aquaculture. 270: 158-166.
13
14. Hurvitz, A., Jackson, K., Yom-Din, S., Degani, G., and Levavi-Sivan, B., 2008. Sexual development in Russian sturgeon (Acipenser gueldenstadtii) grown in aquaculture. Cybium, 32: 283-285.
14
15. Kortner, T. M., Rocha, E., and Arukwe, A., 2009. Previtellogenic oocyte growth and transcriptional changes of steroidogenic enzyme genes in immature female Atlantic cod (Gadus morhua L.) after exposure to the androgens 11- ketotestosterone and testosterone. Comp. Biochem. Physiol. A Mol. Integr. Physiol. 152: 304-313.
15
16. Lee, C. S., Tamaru, C. S., Banno, J. E., and Kelly, C. D., 1986. Influence of chronic administration of LHRH-analogue and/or 17α-methyltestosterone on maturation in milkfish, Chanos chanos. Aquaculture. 59: 147-159.
16
17. Lokman, P. M., George, K. A. N., Divers, S. L., Algie, M., and Young, G., 2007. 11- ketotestosterone and IGF-I increase the size of previtellogenic oocytes from short finned eel, Anguilla australis, in vitro. Reproduction. 133: 955-967.
17
18. Magri, M. H., Solari, A., Billard, R., and Reinaud, P., 1985. Influence of testosterone on precocious sexual development in immature rainbow trout. Gen. Comp. Endocrinol. 57: 411-421.
18
19. Martyniuk, C. J., Gallant, N. S., Marlatt, S. C., Woodhouse, A. J., and Trudeau, V. L., 2006. Current perspectives on 17β-estradiol action and nuclear estrogen receptors in teleost fish in Fish endocrinology. In Fish Endocrinology. Eds. Reinecke, M., Zaccone, G., Kapoor, B. G., Enfield. Vol. 2. Science Publishers, New Hampshire, PP: 625-663.
19
20. Menuet, A., Adrio, F., Kah, O., and Pakdel, F., 2005. Regulation and function of estrogen receptors: comparative aspects. In World Scientific Publishing Co. Pte. Ltd., Singapore. Eds. Melamed, P., Sherwood, N. Hormones and their Receptors in Fish Reproduction, PP: 224-253.
20
21. Moberg, G. P., Doroshov, S. I., Chapman, F. A., Kroll K, J., Van Eenennaam, J., and Watson, J. G., 1991. Effects of various hormone implants on vitellogenin synthesis and ovarian development in cultured white sturgeon, Acipenser transmontanus. Proceedings of the First International Symposium on Sturgeon. Bordeaux Gironde, France, 3-6 October 1989. Eds. Williot, PP: 389-399.
21
22. Mojazi Amiri, B., Maebayashi, M., Hara, A., Adachi, S., and Yamauchi, K., 1996. Ovarian development and serum sex steroid and vitellogenin profiles in the female cultured sturgeon hybrid, the bester. J. Fish Biol. 48: 1164-1178.
22
23. Pankhurst, N. W., Stacey, N. E., and Peter, R. E., 1986. An evaluation of techniques for the administration of 17β-estradiol to teleosts. Aquaculture. 52:145-55.
23
24. Pavlick, R., and Moberg, G., 1997. Dopaminergic on gonadotropin secretion in white sturgeon (Acipenser transmontanus). Fish Physiol. Biochem. 16: 35-43.
24
25. Thomas, P., Tubbs, C., Berg, H., and Dressin, G., 2007. Sex steroid hormone receptors in fish ovaries. In The Fish Oocyte: From Basic Studies to Biotechnological Applications. Springer, Netherlands. Eds. Babin, P. J., Cerda, J., Lubzens, E, PP: 203–233. U. S. Environmental Protection Agency (USEPA), 2002. Draft Detailed Review Paper on a Fish Two-Generation Toxicity Test. U.S. Environmental Protection Agency, Washington, DC (EPA/68/W-01/023).
25
26. Van Eenennaam, J. P., Doroshov, S. I., 1998. Effects of age and body size on gonadal development in Atlantic sturgeon (Acipenser oxyrinchus mitchill). J. Fish. Biol. 53: 624-637.
26
27. Wallace, R. A., 1985. Vitellogenesis and oocyte growth in nonmammalian vertebrates. In: Developmental Biology: a comprehensive synthesis Vol. 1, Oogenesis. L. W. Browder, ed. New York: Plenum Press, PP: 127-177.
27
28. Wallace, R. A., Selman, K., Greeley, M. S., Begovac, P. C., Lin, Y. W. P. C., McPherson, R. T., and Petrino, R., 1987. Current status of oocyte growth. In: Reproductive Physiology of Fish. Eds. D.R. Idler, L.W. Crim, J. M. Walsh,. St. John’s, Newfoundland: Memorial University, PP: 167-177.
28
29. Williot, P., Burn, R., 1998. Ovarian development and cycles in cultured Siberian sturgeon, Acipenser baeri. Aquat. Living. Res. 11: 111-118.
29
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه برخی جنبههای زیست شناسی تولید مثلی ماهی کفشک زبان گاوی درشت پولک (cynoglossus arel) خلیج فارس (سواحل بوشهر)
خانواده زبان گاوماهیان در آبهای ساحلی بوشهر با 5 گونه پراکنش نسبتاً خوبی دارند. گونه زبان گاوی درشت پولک Cynoglossus arel از لحاظ کیفیت گوشت و بازارپسند بودن از مصرف بیشتری برخوردار میباشد. در این بررسی 287 نمونه ماهی بطور ماهانه طی یکسال (از دیماه 1388 الی آذرماه 1389) از مراکز تخلیه صیدگاههای بوشهر جمعآوری گردید و تولید مثل آنها مورد بررسی قرارگرفت. شاخص گنادوسوماتیک (GSI)، شاخص کبدی (HSI)، هماوری مطلق و ضریب چاقی (K) مورد اندازه گیری قرارگرفتند. در این بررسی میزان هماوری مطلق 95765-15756 بدست آمد و رابطه هماوری با طول (86/0=r) و وزن (90/0=r) همبستگی بالایی داشتند. شاخص گنادی (GSI) در مادهها از مهرماه افزایش یافته و در اسفندماه به بالاترین مقدار میرسد ولی شاخص گنادی (GSI) در نرها از شهریورماه شروع به افزایش داشته و در فروردین ماه به اوج میرسد. مقدار ضریب چاقی در جنس ماده نسبت به جنس نر ارتباط نزدیکی با اندازه گناد دارد و این ضریب در زمان اوج تخمریزی (فروردین ماه) از کمترین میزان (497/0) دارا میباشد. نتیجه کلی از این مطالعه نشان داد که فصل تخمریزی این ماهی از فروردین ماه تا مردادماه ادامه داشته که عدم فعالیت صیادی در ماههای تخمریزی برای بازگشت شیلاتی توصیه میشود.
https://animal.ijbio.ir/article_457_d0dd0302908964864663ddb8f7c0061c.pdf
2014-08-23
251
259
27210
کفشک زبان گاوی
Cynoglossus arel
تولید مثل
خلیج فارس
محمدعلی
سالاری علی آبادی
salari@kmsu.ac.ir
1
عضو هیئت علمی گروه بیولوژی دریا و معاونت آموزشی دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
LEAD_AUTHOR
علی
منصوری
2
دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
AUTHOR
عبدالعلی
موحدی نیا
amovahedinia@yahoo.com
3
گروه بیولوژی دریا، دانشکدة علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
AUTHOR
مهرداد
نصری تجن
nasri_mehrdad@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندر انزلی
AUTHOR
امیر
وزیری زاده
amirvz@yahoo.com
5
مرکز مطالعات و پژوهش های خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس بوشهر
AUTHOR
چاوشی، ش.، عبدلی، ا.، پریور، ک.، و پاتیمار، ر.، 1390. تعیین زمان بلوغ جنسی گونه Neogobius melanostomus از خانواده گاوماهیان در تالاب گمیشان. مجله زیست شناسی ایران. جلد 25، شماره 1. صفحات 96-90.
1
عبدالهی، م.، و ایمانپور، م. ر.، 1390. مطالعه پارامترهای بیوشیمیایی سرم خون در ماهی دهان گرد Caspiomyzon wagneri دریای خزر. مجله زیست شناسی ایران. جلد 24، شماره 6. صفحات 924-915.
2
یاسمی، ی.، کیوان، ا.، وثوقی، غ.، و احمدی، م. ر.، 1385. شناسایی گونههای راسته کفشک ماهی شکلان آبهای ساحلی خلیج فارس محدوده استان خوزستان با استفاده از ویژگیهای مورفومتریک و مریستیک. مجله علمی شیلات ایران. شماره 2، صفحات 150-139.
3
4. یاسمی، ی.، کیوان، ا.، وثوقی، غ.، احمدی، م. ر.، فرزین گهر، م.، فاطمی، م. ر.، و ماهیانه، ع.، 1386. شناسایی گونههای راسته کفشک ماهی شکلان آبهای ساحلی خلیج فارس محدوده استان بوشهر با استفاده از ویژگیهای مورفومتریک و مریستیک. پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. شماره 76، صفحات 20-28.
4
Abowei, J. F. N., 2009. The Abundance, Condition Factor and Length-weight Relationship of Cynoglossus senegalensis (Kaup, 1858) from Nkoro River Niger Delta, Nigeria. Advance Journal of Food Science and Technology, 1 (1): 57-62.
5
Atabak, N., 2010. Survey on natural feeding of juvenile Cynoglossus arel and Solea elongata fishes (Cynoglossidae and Soleidae) in the north west of Persian Gulf coastal water. Fisheries Research, PP: 9-14.
6
Bagenal, T. B., 1978. Methods for assessment or fish production in freshwater. Blackwell Scientific Pub. oxford. london, U.K. 365P.
7
Bakare, O., 1970. Bottom deposits as food of inland freshwater fish. In Kainji: a Nigerian man-made lake: Kainji Lake studies Vol. 1. Ecology, edited by S.A. Visser. Ibadan, Ecology Published for the Nigerian Institute, PP: 65–85.
8
Biswas, S. P., 1993. Manual of methods in fish biology. SAP, 157 P.
9
10. Dalzell, P., Lindsay, S. R., and Patiale, H., 1991. Fisheries resources survey of the Island of Niue. Tech. Doc. Inshore Fish. Res. Proj. S. Pac. Comm 3. A report prepared in conjunction with the South Pacific Commission Inshore Fisheries Research Project, and the FAO South Pacific Aquaculture Development Project for the Government of Niue, July 1990.
10
11. Fagade, S. O., 1979. Observation of the biology of two species of Tilapia from the Lagos lagoon Nigeria. Bulletin Institute Fond Africa Nore (ser. A), 41: 627-658.
11
12. Kennedy, J., Witthames, P. R., Nash, R. D. M., and Fox, C. J., 2008. Is fecundity in Plaice (Pleuronectes platessa L.) down-regulated in response to reduce food intake during autumn? J. Fish Biol., 72: 78-92.
12
13. Munroe, T. A., 2001. Cynoglossidae Tonguesoles. pp 3890-3901. In: K.E. Carpenter and V. Niem (eds.) FAO species identification guide for fishery purposes. The living marine resources of the Western Central Pacific. Vol. 6. Bony fishes part 4 (Labridae to Latimeriidae), estuarine crocodiles. FAO, Rome, 6(4): 3890-3901.
13
14. Nikolsky, G.V., 1999. The Ecology of Fishes. Allied Scientific Publisher, 352 P.
14
15. Rajaguru, A., 1992. Biology of two co-occurring tonguefishes, Cynoglossus arel and C. lida (Pleuronectiformes: Cynoglossidae), from Indian waters. Fishery Bulletin, 90: 328–367.
15
16. Roberts, R. J., 1978. The pathophysiology of teleosts. IN: fish pathology (Robertys, R.J. (Ed.)). Baillier Tindall, London, PP: 55-91.
16
17. Trippel, E. A., 1995. Age at maturity as a stress indicator in fisheries. Bioscience, 45: 759-771.
17
18. Welcome[M1] , R. L., 1979. Fisheries Ecology of Flood Plain Rivers. Longman Press London, 317 P.
18
19. Witthames, P. R., Greer Walker, M., Dinis, M. T., and Whiting, C. L., 1995. The geographical variation in the potential annual fecundity of dover sole, Solea solea, from European shelf waters during 1991. Netherland J. Sea Res., 34: 45-58.
19
ORIGINAL_ARTICLE
ویژگیهایی از زیست شناسی کفشدوزک Hippodamia variegata (Col.: Coccinellidae) روی سه گونه شتهی غلات
کفشدوزکHippodamia variegata گونهای با پراکنش وسیع در ایران است. در این تحقیق ویژگیهای زیستی این کفشدوزک با تغذیه از شته سبز گندم Sitobion avenae، شته روسی گندم Diuraphis noxia و شته سمی گندم Schizaphis graminum در اتاقک رشد با دمای 1±25 درجه سلسیوس، رطوبت نسبی 5±65 درصد و دورهی نوری 16 ساعت روشنایی و 8 ساعت تاریکی مورد بررسی قرار گرفت. به منظور انجام آزمایش، از تخم¬های هم¬سن کفشدوزک استفاده شد. پس از تفریخ تخمها، لاروها به صورت انفرادی درون ظروف آزمایش قرار داده شده و روزانه با مراحل مختلف زیستی از هر شته تغذیه شدند و طول مراحل مختلف زیستی شکارگر ثبت گردید. بر اساس نتایج به دست آمده، طول کل دوره پیش از بلوغ حشرات نر و ماده روی شته سبز گندم به ترتیب 18/0±05/14 و 24/0±63/13 روز، روی شته روسی گندم به ترتیب 14/0±58/13 و 12/0±42/13 روز، روی شته سمی گندم به ترتیب 21/0±61/14 و 12/0±04/14 روز تعیین شد. طول عمر حشرات کامل نر و ماده روی شته سبز گندم به ترتیب 91/1±55/15 و 28/3±96/25 روز، روی شته روسی گندم به ترتیب 25/2±86/35 و 89/1±81/24 روز و روی شته سمی گندم به ترتیب 95/1±78/25 و 41/1±88/19 روز تعیین گردید. میانگین تخمریزی روزانه با تغذیه از شته سبز گندم، شته روسی گندم و شته سمی گندم به ترتیب 65/0±86/4، 79/1±37/23 و 66/0±95/13 عدد و میانگین تخمریزی در طول عمر حشرات کامل به ترتیب 2/11±4/55، 8/45±1/476 و 4/15±0/158 عدد تعیین شد. نتایج نشان داد شته روسی گندم میزبان مناسبتری برای کفشدوزک H. variegata است.
https://animal.ijbio.ir/article_463_1cdaf09b1138b06c8e38e134cd804a27.pdf
2014-08-23
260
269
27211
کفشدوزک Hippodamia variegata
شتهی سبز گندم
شتهی روسی گندم
شتهی سمی گندم
بیولوژی
علی اصغر
طالبی
talebia@modares.ac.ir
1
دانشیار . گروه حشره شناسی دانشکده کشاورزی دانشگاه تربیت مدرس
LEAD_AUTHOR
رضا
جریانی
r.jaryani66@gmail.com
2
دانشگاه تربیت مدرس
AUTHOR
حسین
اللهیاری
allahyar@ut.ac.ir
3
دانشگاه تهران
AUTHOR
امامی، م. س.، و اربابی، م.، 1384. مطالعه حشرات شکارگرکنه قرمز اروپایی در سمیرم اصفهان و بررسی زیست شناختی کفشدوزک Stethorus gilvifrons Mulsant در آزمایشگاه، مجله زیست شناسی ایران، جلد 18، شماره 2، صفحات 157-164.
1
جعفری، ر.، کمالی، ک.، شجاعی، م.، و استوان، ه.، 1387. پارامترهای زیستی کفشدوزک Hippodamia variegata با تغذیه از شته باقلاAphis fabae در شرایط آزمایشگاهی، مجله دانش نوین کشاورزی، جلد 10، صفحات 17-25.
2
جعفری، ر.، و وفایی شوشتری، ر.، 1388. تاثیر دماهای مختلف روی طول دورههای نشو و نمایی کفشدوزک Hippodamia variegata Goeze (Col.: Coccinellidae) با تغذیه از شته باقلا Aphis fabae Scopoli (Hem.: Aphididae). فصلنامه تخصصی تحقیقات حشرهشناسی، جلد 1، شماره4، صفحات 289-297.
3
جعفری، ش.، حاجیزاده، ج.، جلالی سندی، ج.، و حسینی، ر.، 1381. تاثیر دماهای مختلف روی پارامترهای زیستی کفشدوزک Hippodamia variegata (Col.: Coccinellidae) در شرایط آزمایشگاهی، نامهی انجمن حشرهشناسی ایران، جلد 22، شماره1، صفحات 13-28.
4
حقشناس، ع.، ملکی، ح.، و باقری، م. ر.، 1383. فون کفشدوزکهای شکارگر شته غلات و تغییرات گونه غالب در استان اصفهان. خلاصه مقالات شانزدهمین کنگره گیاهپزشکی ایران، 126ص.
5
رجبی، غ.، 1365. حشرات زیان آوردرختان میوهی سردسیری (شتهها، شپشکها و زنجرکها)، انتشارات سازمان تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی، 256 ص.
6
رضوانی، ع.، 1380. کلید شناسایی شتههای ایران، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، وزارت جهاد کشاورزی، 305 ص.
7
فرحبخش، ق.، 1340. فهرست آفات مهم نباتات و فرآوردههای کشاورزی ایران، سازمان حفظ نباتات، شماره 1، 153ص.
8
فرحی، س.، و صادقینامقی، ح.، 1388. تنوع گونهای شتهها و کفشدوزکهای مزارع گندم شهرستان مشهد، نشریه حفاظت گیاهان، جلد 23، شماره 2، صفحات 89-95.
9
مجیب حق قدم، ز.، جلالی سندی، ج.، صادقی، س. ا.، و یوسف پور، م.، 1388. معرفی کفشدوزکOenopia conglobata (L.) به عنوان شکارگر شته نارون Tinocallis saltans Nevsky در استان گیلان و بررسی زیست شناسی آن در شرایط آزمایشگاهی. مجله زیست شناسی ایران، جلد 22، شماره 2، صفحات 363-370.
10
ملاشاهی، م.، صحراگرد، ا.، و حسینی، ر.، 1383. تعیین پارامترهای جدول زندگی کفشدوزکHippodamia variegata (Col.: Coccinellidae) در شرایط آزمایشگاهی. پژوهشنامه علوم کشاورزی، جلد 1، شماره1، صفحات 47-59.
11
وجدانی، ص.، 1343. کفشدوزکهای سودمند و زیانآور ایران، انتشارات گروه گیاهپزشکی دانشگاه تهران، 101 ص.
12
13. Babenko, V. A., 1980. A test on the rational control of aphid. Zashchita Rastenii, 6: 14-15.
13
14. Dolati, L., Ghareyazie, B., Moharramipour, S., Noori-Daloii, M. R., 2005. Evidence for regional diversity and host adaptation in Iranian populations of the Russian wheat aphid. Entomologia Experimentalis et Applicata, 114:171–180.
14
15. El Habi, M., Sekkat, A., El Jadd, L., and Boumezzough, A., 2000. Biologie d'Hippodamia variegata Goeze (Col., Coccinellidae) et possibilites de son utilisation contre Aphis gossypii Glov. (Hom., Aphididae) sous serres de concombre. Journal of Applied Entomology, 124: 365-374.
15
16. Elhag, E. T. A., and Zaitoon, A. A., 1996. Biological parameters for four Coccinellid species in Central Saudi Arabia. Biological Control, 7: 316-319.
16
17. Farhadi, R., Allahyari, H., and Chi, H., 2011. Life table and predation capacity of Hippodamia variegata (Coleoptera: Coccinellidae) feeding on Aphis fabae (Hemiptera: Aphididae). Journal of Biological Control, 59: 83-89.
17
18. Fiebig, M., and Poehling, H. M., 1998. Host-plant selection and population dynamics of the grain aphid Sitobion avenae (F.) on wheat infected with Barley Yellow Dwarf Virus. IOBC/WPRS Bulletin, 21: 51-62.
18
19. Hajek, A. E., 2004. Natural enemies: an introduction to biological control. Cambridge University Press. 378 P.
19
20. Kontodimas, D., and Stathas. G., 2005. Phenology, fecundity and life table parameters of the predator Hippodamia variegata reared on Dysaphis crataegi. BioControl 50:223-233.
20
21. Hoelscher, C. E., and Teetts, G. L., 1983. Insect and mites pest of sorghum-management approaches. Texas: Agricultural Express Station. 24P.
21
22. Jafari, S. H., Hajizadeh, J., Jalali Sendi, J., Hoseini, R., 2002. Effect of temperature on biological factors of Hippodamia variegata (Col.: Coccinellidae) in laboratory conditions. Journal of Entomological Society of Iran. 22(1):13- 28.
22
23. Lanzoni, A., Accineli, G., Bazzocchi, G. G., and Burgic, G., 2004. Biological traits and life table of the exotic Harmonia axyridis compared with Hippodamia variegata, and Adalia bipunctata (Col., Coccinellidae). Journal of Applied Entomology, 128(4): 298-306.
23
24. Mitchels, G., and Bateman, A., 1986. Larval biology of two imported predators of the greenbug, Hippodamia variegata (Goeze) and Adalia flavomaculata Degeer,under constant temperatures. Southwestern Entomologist 11:23-30.
24
25. Mojib Hagh ghadam, Z., and Yousefpour, M., 2012. Effects of feeding from different hosts on biological parameters of the lady beetle Hippodamia variegata (Goeze) in the laboratory conditions. International Journal of Agriculture and Crop Sciences, 4 (12): 755-759.
25
26. Obrycki, J. J., and Orr, C. J., 1990. Suitability of three species for nearctic population of Coccinella septempunctata, Hippodamia variegata, and Propylea quatuordecimpunctata. Journal of Economic Entomology, 83: 1292-1297.
26
27. Pike, K. S., and Glazer, M., 1980. Compatibility of insecticide-fungicide wheat seed treatments with respect to germination, seedling emergence and green bug control. Journal of Economic Entomology, 73: 759-761.
27
28. Rakhshani, E., Tomanovic, Z., Stary, P., Talebi, A. A., Kavalieratus, N. G., and Zamani, A. A., 2008. Distribution and diversity of wheat aphid parasitoids (Hymenoptera: Braconidae: Aphidiinae) in Iran. European Journal of Entomology, 105: 863–870.
28
29. Rebolledo, R., Palma, R., Klein, C., and Aguilera, A., 2007. Coccinellini (Col. Coccinellidae) presentes en diferentes estratos vegetales en la IX Región de La Araucanía (Chile). Idesia 25:63-71.
29
30. Tolmay, V. L., 2006. Genetic variability for Russian wheat aphid, Diuraphis noxia resistance in South African wheat genotypes. PhD Dissertation, University of the Free State, South Africa, 147P.
30
31. William,. F. L., 2002. Lady beetles. Ohio State University Extension Fact Sheet, Horticulture and Crop Science. Division of Wildlife, 2021 Coffey Rd. Columbus, Ohio-43210-1086
31
32. Wu, X. H., Zhou, X. R., and Pang, B. P., 2010. Influence of five host plants of Aphis gossypii Glover on some population parameters of Hippodamia variegata (Goeze). Journal of Pest Science, 83(2): 77-83.
32
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تغییرات ترکیب بدن شاه میگوی آب شیرین ( Astacus leptodactylus ) در سنین و اوزان مختلف
به منظور بررسی ترکیب شیمیایی بدن شاه میگو در مراحل مختلف زندگی ، حدود 10 هزار عدد نوزاد در استخر خاکی رها سازی شدند. نمونه برداری در سه مرحله از شاه میگوهای 1 ماهه، 4 ( 4-3 گرم) ماهه و 16 ماهه انجام گرفت. پس از تفکیک جنس نر و ماده و تقسیم بدن شاه میگو به 6 قسمت چنگال ، پوست کاراپاس ، امعاء واحشاء ، گوشت شکم ، پوست شکم و دم، ترکیب شیمیایی قسمتهای مختلف تعیین شد. مقدار درصد چربی و خاکستر بدن در شاه میگوهای آزمایشی با افزایش سن افزایش پیدا کرد. میزان چربی در شاه میگوهای آزمایشی بین 2 تا 5/3 درصد ، مقدار پروتئین بین 37 تا 45 درصد و میزان فیبر بین 33تا 35 درصد نوسان داشت. میانگین مقدار ترکیب شیمیایی بدن در شاه میگوهای نر و ماده تفاوت معنی داری را نشان نداد(05/0 p>). بیشترین میزان پروتئین در گوشت شکم(درجنس نر و ماده به ترتیب 13/74 و 8/72 درصد) و بیشترین مقدار چربی در امعاء و احشاء(در جنس نر و ماده به ترتیب 43/8 و 49/10 درصد) این گونه بر آورد گردید. پوست شکم ، پوست کاراپاس و دم با مقدار حدود 16-15 درصد فیبر مهمترین اندام های حاوی فیبر در شاه میگو بودند. میزان خاکستر قسمت های مختلف بدن عمدتا از 30 تا 50 درصد متغییر بود و کمترین مقدار آن در گوشت شکم (حدود 8 درصد) تعیین گردید. بین میانگین اجزاء شیمیایی در اندام های مختلف بدن اختلاف معنی داری وجود داشت(05/0 p<).
https://animal.ijbio.ir/article_453_7ace36bb0bbdcfbe07c835f750ca4fc7.pdf
2014-08-23
270
281
27212
شاه میگوی آب شیرین
Astacus leptodactylus
رشد
ترکیب بدن
کتایون
کریم زاده
karimzadehkathy@yahoo.co.uk
1
عضو هیات علمی(استادیار) دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان
LEAD_AUTHOR
عسگر
زحمتکش کومله
aszahmat@yahoo.co.uk
2
عضو هیات علمی (استادیار) مرکز آموزش عالی علمی کاربردی علوم و صنایع شیلاتی میرزاکوچک خان رشت
AUTHOR
علیرضا
ولی پور
valipour32@yahoo.com
3
عضو هیات علمی(استادیار) پژوهشکده آبزی پروری آبهای داخلی کشور
AUTHOR
برادران نویری، شهروز.، 1372. بیولوژی و بررسی پراکنش خرچنگ دریای خزر. سازمان تحقیقات آموزش شیلات ایران.
1
برادران نویری، شهروز.، 1376. بررسی روابط طولی ـ طولی و طولی ـ وزنی در خرچنگ دراز دریای خزر منطقه بندرانزلی. مجله علمی شیلات ایران. سال ششم. شماره 2.
2
زحمتکش کومله، ع.، 1385. تأثیر مقادیر مختلف کلسیم و فسفر جیره بر شاخصهای پرورشی و زیستی شاه میگوی آب شیرینAstacus.leptodactylus. دانشگاه تربیت مدرس.
3
صمدزاده، م.، و رامین، م.، 1376. تعیین بیوتکنیک تکثیر و پرورش خرچنگ دراز آب شیرین سواحل جنوبی دریای خزر(Astacus.leptodactylus ). ( گزارش نهایی پروژه ). مرکز تحقیقات شیلاتی استان گیلان.
4
طاهر گورابی، ر.، 1382. خرچنگ دراز آب شیرین (بیولوژیکی، پرورش و تولیدمثل). انتشارات نسل نیکان.
5
کریمپور، م.، 1376. گزارش نهایی پروژه ارزیابی زی توده قابل برداشت پنجپایک (شاه میگو) و پویایی جمعیت آن در دریاچه مخزنی سد ارس. مرکز تحقیقات شیلاتی استان گیلان. بندرانزلی. 150 ص.
6
Ackefors, H., 1997. The development of crayfish culture in Sweden during the last decade. Freshwater Crayfish 11, 627-654.
7
Ackefors, H., 1999. The positive effects of established crayfish introductions in Europe. In Gherardi, F. and Holdich, D.M. (eds.) Crustacean Issues 11: Crayfish in Europe as Alien Species (How to make the best of a bad situation?) A.A. Balkema, Rotterdam, Netherlands: 49-62.
8
AOAC(Association of Official Analytical Chemists), 1990. Official Methods of Analysis. Fifth edition. Arlington, Virginia, U.S.A.
9
Cortes-Jacinto, E., Villarreal-Colmenares, H., Cruz-Suarez, L.E.,Civera-Cerecedo, R.,Nolasco-Soria, H., and Hernandez-Llamas, A., 2005. Effect of different dietary protein and lipid levels on growth and survival of juvenile Australian redclawcray¢sh, Cheraxquadricarinatus (von Martens). Aquaculture Nutrition11, 283-291.
10
FAO, Fishery Statistical Collections, 2011. Global production Statistics 1950-2008. Fisheries and Aquaculture Information and Statistics Service.
11
Fotedar, R., 2004. Effect of dietary protein and lipid source on the growth, survival, condition indices, and bodycomposition of marron, Cheraxtenuimanus (Smith). Aquaculture 230, 439 -455.
12
Grozev, G. K., andKovatcheva, N.P., 1996. Feeding of crayfish (Astacusleptodactylus L.) juveniles and summerlings in artificial conditions and ponds. Fish and Crustacean Nutrition Methodology and Research for Semi- Intensive Pond- Based Farming Systems. Proc. EIFAC workshop, 3-5 April 1996, Sarvas, Hungary, 2000.
13
Gu, H., Mather, P.B., and Capra, M.F., 1994. The relative growth of chelipeds and abdomen and muscle production in male and female redclaw crayfish, Cheraxquadricarinatus von Martens. Aquaculture 123, 249±257.
14
Guillaume, J., 1997. Protein and amino acids. In: Crustacean Nutrition (ed. by L.R. D’Abramo, et al.) PP: 26-40.World Aquaculture Society, Baton Rouge, USA.
15
10. Holdich, D. M., andLowery, R. S., 1988. Growth, Moulting and Reproduction. In Holdich, D. M. & R. S. Lowery (eds), Freshwater Crayfish: Biology, Management and Exploitation. Chapman & Hall, London: 83–113.
16
11. Holdich, D. M., 2002. Biology of Freshwater Crayfish, Holdich DM (ed), Blackwell Science Ltd, Oxford.
17
12. Hubbard, D.M.,Robinson, E.H., Brown, P.B., andDanlels, W. H., 1986. Dietary P:E ratio of red crawfish. Progressive Fish Cultureist.
18
13. Huner, J.V., 1994. Freshwater Crayfish Aquaculture inNorth America, Europe, and Australia. The Haworth Press Inc, New York.
19
14. Pavasovic,A., Anderson,A., Mather,P.B., and Richardson, N.A., 2007. Influence of dietary protein on digestive enzyme activity, growth and tail muscle composition in redclaw crayfish, Cheraxquadricarinatus (von Martens).Aqaculture Research 38,644-652.
20
15. Silva, J.L.,Marroquin, E., and Lai, Y.M., 1991. Yeild and textural properties of pond raised crayfish Procambarus clarkia during a harvest season. Program and Abstracts. 22nd Annual Conference and Exposition. World Aquaculture Society, San Juan, Puerto Rico.57-58.
21
16. Skurdal, J.,Westman, K., and Bergan, P.I., 1989. Crayfish culture in Europe. Report from the Workshop on Crayfish Culture, November 1987, Trondheim, Norway, 16-19.
22
17. Thompson, K. R.,Muzinic, L. A.,Yancey, D. H.,Webster, C. D.,Rouse, D. B., and Xiong, Y. L.,2004.Growth, processing measurements, tail meat yield, and tail meat proximate composition of male and female Australian red claw crayfish, Cheraxquadricarinatus, stocked into earthen ponds. J ApplAquac 16:117–29.
23
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه تغییرات در هموگلوبین، هماتوکریت و تعداد گلبول های سفید و قرمز در طول محرومیت غذایی بچه تاس ماهیان سیبری (Acipenser baeri) و بچه فیل ماهیان (Huso huso) پرورشی
به منظور مقایسه زمان های مختلف گرسنگی در بچه تاس ماهیان سیبری و فیل ماهیان پرورشی با میانگین وزنی به ترتیب 83/0± 71/19 و 5/1± 45 گرم آزمایشی در قالب طرح کامل تصادفی با سه تیمار به ترتیب 2، 4 و 8 روز گرسنگی و سه تکرار انجام شد. اثرات گرسنگی بر روی فاکتورهای خونی شامل هموگلوبین(Hb)، هماتوکریت(Ht)، تعداد گلبول های قرمز(RBC) و سفید(WBC) و شاخص های گلبولی(MCV,MCH,MCHC) بررسی شد. ماهیان به صورت کاملاً تصادفی در بین 9 تانک آزمایشی توزیع شدند. در پایان دوره های گرسنگی از هر یک از تیمارها خونگیری به عمل آمد و نمونه های خون به آزمایشگاه منتقل شدند. تعداد گلبول های سفید و قرمز در هر سه تیمار بین هر دو گونه اختلاف معنی دار (05/0 >P) نشان داد. غلظت هموگلوبین و شاخص MCHC در تیمار 2 و 3 در تاس ماهی سیبری به طور معنی داری (05/0 >P) بالاتر از فیل ماهی بود. میزان هماتوکریت و شاخص MCH نیز در تیمار 8 روز گرسنگی در فیل ماهی به صورت معنی دار (05/0 >P) بالاتر از تاس ماهی سیبری بود. مطالعه ی حاضر نشان می دهد که تعداد گلبول های سفید به طور معنی داری (05/0>P) در تاس ماهی سیبری بالاتر از فیل ماهی بود. نتایج حاصل مبین آن است که دوره های کوتاه مدت گرسنگی قادر است موجب کاهش توان سیستم ایمنی در فیل ماهیان پرورشی گردد اما گونه تاس ماهی سیبری طی دوره های گرسنگی کوتاه مدت توانایی مقابله و سازش داشته است.
https://animal.ijbio.ir/article_447_b3f6510a7f0edb73dcb9f19da24bdf5f.pdf
2014-08-23
282
290
27213
تاس ماهی سیبری (Acipenser baeri)
فیل ماهی(Huso huso)
محرومیت غذایی
شاخصهای خونی
وحید
مرشدی
v.morshedi@gmail.com
1
مرکز مطالعات و پژوهش های خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر
LEAD_AUTHOR
پریتا
کوچنین
PKochanian@gmail.com
2
دانشکده منابع طبیعی دریا دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، گروه شیلات، خرمشهر
AUTHOR
محمود
بهمنی
mahmoudbahmani@ymail.com
3
انستیتو تحقیقات بین المللی ماهیان خاویاری دکتر دادمان، رشت
AUTHOR
محمد علی
یزدانی
myazdanisadat@yahoo.com
4
انستیتو تحقیقات بین المللی ماهیان خاویاری دکتر دادمان، رشت
AUTHOR
حمید رضا
پورعلی
Pourali-882@yahoo.com
5
انستیتو تحقیقات بین المللی ماهیان خاویاری دکتر دادمان، رشت
AUTHOR
قاسم
عشوری
ashuri.gh@gmail.com
6
دانشکده منابع طبیعی دریا دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، گروه شیلات، خرمشهر
AUTHOR
مریم
عضدی
mary_azodi@yahoo.com
7
مرکز مطالعات و پژوهش های خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر
AUTHOR
حسنعلی پور اربوسرا، ع. ر.، بهمنی، م.، یاوری، و.، محسنی، م.، کاظمی، ر.، پاشا زانوسی، ح.، و مرشدی، و.، 1391. بررسی اثرات تراکمهای مختلف ذخیرهسازی بر روی سطوح کورتیزول تاسماهی سیبری (Acipenser baerii). مجله زیست شناسی ایران، در دست چاپ.
1
پوستی، ا.، و صدیق مروستی، ع.، 1378. اطلس بافت شناسی ماهی: اشکال طبیعی و آسیب شناسی. انتشارات دانشگاه تهران.
2
ستاری، م.، 1381. ماهی شناسی(1) تشریح و فیزیولوژی. انتشارات نقش مهر با همکاری دانشگاه گیلان.
3
محبوبی صوفیانی، ن.، حاجی مرادی، م.، علامه، س. ک.، و پیله وریان، ع. ا.، 1389. اثر گرسنگی بر پارهای از ویژگیهای مورفولوژیکی و هماتولوژیکی ماهی قزلآلای رنگین کمان. مجله زیستشناسی ایران، 23 (2)، 234-248.
4
Alykrinskyay, I. O., and Dolgova, S. N., 1984. Hematological feature of young sturgeon. Voprosy Ichtiol. 4: 135-139.
5
Anderson, R. A., and Karasov, W. H., 1988. Energetics of the lizard Cnemidophorus tigris and life history consequences of food-acquisition mode. Ecol. Monogr. 58, 79–110.
6
Barcellos, L. J. G., Marqueze, A., Trapp, M., Quevedo, R. M., and Ferreira, D.,2010. The effects of fasting on cortisol, blood glucose and liver and muscle glycogen in adult jundi´a Rhamdia quelen. Aquacult. 300: 231-236.
7
Benfey, T. J., and Biron, M., 2000. Acute stress response in triploid rainbow trout Oncorhynchus mykiss and brook trout SalÍelinus fontinalis. Aquacult. 184: 167–176.
8
Carvalho, W. F., 1994. Te´cnicas me´dicas de hematologia e imunohematologia. Coopmed Editora, Belo Horizonte.
9
10. Doucett, R. R., Booth, R. K., Power, G., and McKinley, R. S., 1999. Effects of the spawning migration on the nutritional status of anadromous Atlantic salmon Salmo salar: insights from stable-isotope analysis. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 56, 2172–2180. 11. Holcik, J., 1989. The freshwater fishes of Europe. Aula-Verlag Wiesbaden. 1(2): 227-262.
10
12. Hrubec, T. C., and Smith, S. A., 2000. Hematology of fish. In: Feldman, B.V., Zinkl, J.G., Jain, N.C. Eds. Schalm,s Veterinary Hematology. Lippincott Williamas and Wilkins, Philadelphia. p. 1120-1125.
11
13. Johansson-Sjobeck, M-L., Dave, J., Larsson, A., Lewander, K., and Lidman, U., 1974. Metabolic and hematological effects of starvation in the European eel, Anguilla anguilla.--II. Hematology. Comp. Biochem. Physiol. vol. 52A: 431- 434.
12
14. Kamara, S. K., 1966. Effect of starvation and refeeding on some liver and blood constituents of Atlantic cod Gadus morhua L. J. Fish. Res. Bd. Can. 27, 7: 975-982.
13
15. Kawatsu, H., 1966. Studies on the anemia of fish--l. Anemia of rainbow trout caused by starvation. Bull. Freshwater Fish. Res. Lab., Tokyo 15: 167-173.
14
16. McCue, M. D., 2010. Starvation physiology: Reviewing the different strategies animals use to survive a common challenge. Comp. Biochem. Physiol. vol. 156A: 1- 8.
15
17. Murachi, S., 1959. Hemoglobin content, erythrocyte sedimentation rate and haematocrit of the blood in the young of the carp Cyprinus carpio. J. Fac. Fish. Anita. Hush. Hiroshima Univ. 2: 241-247.
16
18. Navarro, I., and Gutierrez, I., 1995. Fasting and starvation. In: Hochachka, P.W.,Mommsen, T.P. Eds., Biochem. Mol. Biol. Fish. vol. 4. Elsevier, New York, pp. 393–434.
17
19. Pearson, M. P., Stevens, E. D., 1991. Size and hematological impact of the splenic erythrocyte reservoir in rainbow trout, Onchorynchus mykiss. Fish. Physiol. Biochem. 9: 39–50.
18
20. Randall, J. A., and King, D. K. B., 2001. Assessment and defense of solitary kangaroo rats under risk of predation by snakes. Anim. Behav. 61, 579–587.
19
21. Smirnov, L. J., 1965. Blood indices of the burbot during prolonged total fasting and subsequent feeding. Dokl. Acad. Sci. U.S.S.R. Biol. Sci. Sect. English translation. 160: 107 109.
20
22. Witters, H. E., Van Puymbroeck, S., Van Den Sande, I., and Vanderborght, O. L. J., 1990. Hematological disturbances and osmotic shifts in rainbow trout, Onchorynchus mykiss, Walbaum. Under acid and aluminium exposure. J. Comp. Physiol. B 160: 563–571.
21
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه زیستگاه، رفتار جفت گیری و تخم ریزی سه گونه از دوزیستان بی دم (قورباغه مردابیRana (Pelophylax) ridibunda ، قورباغه درختی Hyla savignyi و وزغ سبز Bufo (Pseudepidalea) variabilis) در استان لرستان
زیستگاه و عوامل تولید مثلی نقش مهمی در تشخیص گونه¬های همجای مختلف دارد. از اینروطی یک سال کار میدانی در 9 ایستگاه مختلف لرستان سه گونه قورباغه ¬مردابی، قورباغه¬ درختی و وزغ¬ سبز را از جنبه های تولید مثلی مانند زمان و مکان تخم¬ریزی، تعداد و نوع¬ تخم مقایسه قرار گرفت. قورباغه¬ی درختی (در بوته¬زارها و مزارع) در اوایل فروردین، قورباغه¬مردابی در اواسط فروردین (اغلب در مرداب¬ها و آب¬های راکد) بصورت توده¬ای و وزغ سبز در اویل اردیبهشت بیشتر در ایستگاه¬های نزدیک مناطق مسکونی بصورت رشته¬هایی طویل در سطح آب تخم ریزی می¬کنند، در نتیجه ناهم زمانی جفت¬گیری می¬تواند عامل جدایی تولیدمثل بین افراد این سه گونه¬ی هم جا باشد. وزن و تعداد تخم قورباغه مردابی نسبت به دو گونه¬ی دیگر بیشتر است. همچنین احتمالاً¬ تغییرات رنگی مشاهده شده در ¬جمعیت¬های گونه¬های مورد مطالعه بخصوص در دوگونه قورباغه درختی و مردابی بدلیل تغییرات زیستگاهی و تأثیر محیط بر جمعیت¬ها است.
https://animal.ijbio.ir/article_455_e08bce466b91ebbe483447f72d9efea4.pdf
2014-08-23
291
299
27214
تخم ریزی
تولیدمثل
قورباغه درختی
قورباغه مردابی
وزغ سبز
معصومه
نجیب زاده
masumnajibzadeh@gmail.com
1
داشگاه فردوسی مشهد
LEAD_AUTHOR
جمشید
درویش
darvish_j2001@yahoo.com
2
استاد گروه زیست شناسی دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
حاجی قلی
کمی
hgkami2000@yahoo.com
3
هیئت علمی گروه زیست شناسی دانشگاه گلستان
AUTHOR
فرشته
قاسم زاده
fghasemzd@yahoo.com
4
هیئت علمی گروه زیست شناسی دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
باباکردی، ف.، 1385. بررسی تخم و لاو قورباغۀ جنگلی (Rana macrocnemis pesudodalmatina) در استان گلستان، پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، 136ص.
1
بلوچ، م.، و کمی، ح.، 1373. دوزیستان ایران، دانشگاه تهران، موسسه انتشارات دانشگاه تهران، چاپ اول، 177ص.
2
پسرکلو، ع.، قارزی، ا.، کمی، ح.، و نجیب زاده، م.، 1391. مطالعه زیست شناسی تولیدمثل در قورباغه جنگلی (Rmana macrocnemis pesudodalmatina) در استان گلستان (مینودشت)، مجله زیست شناسی ایران، 25(1)، صفحات 63-55.
3
پسرکلو، ع.، قارزی، ا.، کمی، ح.، و همایونی، م.، 1390. مطالعه چند ریختی در قورباغه مردابیRana ridibunda در استان گلستان، مجله زیست شناسی ایران، 24(3)، 455-446.
4
حبیبی، ط.، و راعی، م.، 1373. جانورشناسی عمومی مهرهداران. انتشارات دانشگاه تهران، جلد چهارم، چاپ سوم،650 ص.
5
درویش، ج.، 1384. جمعیتها گونهها و تکامل، تألیف ارنست مایر، انتشارات دانشگاه فردوسی مشهد، چاپ دوم، 559 ص.
6
سازمان[91] هواشناسی استان لرستان، 1389. آمارنامه های اداره پیش بینی و تحقیقات اقلیم و هواشناسی کاربردی استان لرستان.
7
کمی، ح.، و ابراهیمی، م.، 1383. مطالعه ریزساختارهای سطحی دهان لارو قورباغه جنگلی با استفاده از میکروسکوپ الکترونی نگاره. دوازدهمین کنفرانس سراسری زیست شناسی ایران، دانشگاه بوعلی سینای همدان، 86ص.
8
مومنی، م.، زحمتکش، ی.، 1383. بررسی امکان تکثیر و پرورش گونهRana ribibunda در تالاب انزلی. اولین کنگرهی علوم دام و آبزیان کشور. دانشگاه تهران، صفحات1075- 1078.
9
10. میرزاجانی، ع.، کیابی، ب.، و باقری، س.، 1385. بررسی رشد لارو قورباغه مردابی و برآورد جمعیت گونه Rana ridibunda در تالاب انزلی، مجله زیست شناسی ایران، جلد 19، شماره2، صفحات 202-191.
10
11. Arak, P. A., 1988. Female mate selection in the natter jack toad: Active choice or passive attraction? Behavioral. Ecology and Sociobiology, 22, 317–27.
11
12. Blaustein, A. R., Walls, S. C, Bancroft, B. A, Lawler, J. J, Searle, C. L., and Gervasi, S. S., 2010. Direct and Indirect Effects of Climate Change on Amphibian Populations. Diversity, 2, 281-313.
12
13. Chu, J., and Wilczynski, W., 2001. Social influences on androgen levels in the southern leopard frog, Rana sphenocephala. Gen Comp Endocrinol, 121, 66-73.
13
14. Duellman, W. E., and Trueb, L., 1986. Biology of amphibians. New York: McGraw-Hill, 670 P.
14
15. Ebrahimi. M., Javanmoradi, S., Esmaeili, H., and Kami, H. g., 2008. Embryo and larval development of Iranian Near Eastern Brown frog, Rana macrocnemis pseudo dalmatina Eiselt & Schmidtler, 1971 (Amphibia: Ranidae), in AlangDareh Forest, north-eastern Iran. Zoology in Middle East, 43,75-84.
15
16. Gustavo, H. C. V., Wiederhecker, H. C., Colli, G. R., and Bao, S. N., 2001. Spermiogensis and testicular cycle of lizard Tropidurus torquatus (Squamata, Tropiduridae) in the Cerrado of Brazil. Amphibia-Reptilia, 22, 217-233.
16
17. Hoffmann, H., 2005. The tadpoles of Hyla rufitela (Anura: hylidae). Revista de Biologia Tropical, 53 (3-4), 561-568.
17
Hofrichter, R., 2000. the Encyclopedia of Amphibians. Key Porter Books, Toronto, Ontario, 264 P.
18
19. Rhen, T., Crews, D., 2002. Variation in reproductive behavior within a sex: neural systems and endocrine activation. Neuroendocrinal, 14, 517-531.
19
20. Russell, A. P., Bauer, A. M., and Johnson, M. K., 2005. Migration in Amphibians and Reptiles: An Overview of Patterns, and Orientation Mechanisms, In Migration of Organisms: Climate, Geography, Ecology. A.M.T. Elewa (Ed.), Springer-Verlag, Heidelberg, Germany, 15, 151-203.
20