In vitro quantification of fatty acid profile and evaluation of survival under salinity and temperature stress in Artemia franciscana fed with spirulina algae powder

Document Type : Research Paper

Authors
1 Department of Fisheries, Faculty of Natural Resources, Urmia University, Urmia, Iran
2 Department of Fishery, Faculty of Natural Resources, Urmia University
3 Patobiology,veterinary medicine faculty,Urmia university,Urmia,Iran
Abstract
Artemia is a small crustacean that is used as food for aquatic larvae .Years ago, a standard method for breeding Artemia was introduced by live Dunaliella algae and a special type of yeast, which was used both in laboratory research and in some breeding centers. Considering the difficulties of preparing and cultivating live food for breeding Artemia, in a 14-day study, Artemia was grown in several treatments and in laboratory conditions with spirulina algae powder and the profile of fatty acids and resistance to temperature and salinity stress of that study. The main goal of this research is to investigate the possibility of producing Artemia rich in PUFA and HUFA that can survive better in environmental stress conditions. For this purpose, A. franciscana was grown in laboratory conditions and with combination of yeast and Spirulina algae powder in 5 different treatments compared to Dunaliella algae in a total of 6 treatments. the fatty acids of each treatment were measured and the Artemia were subjected to salinity and temperature stress under controlled conditions, the results showed that the amount of PUFAs increased to more than 3 in the treatments fed with spirulina powder (p

Keywords

Subjects


تعیین کمیت پروفایل اسید­های چرب­ و ارزیابی بقاء تحت استرس شوری و دمایی در Artemia franciscana تغذیه شده با پودر جلبک اسپیرولینا در شرایط آزمایشگاهی

رضا روشندل1، رامین مناف­فر1 و سعید مشکینی2

1 ایران، ارومیه، دانشگاه ارومیه، دانشکده منابع طبیعی، گروه شیلات

2 ایران، ارومیه، دانشگاه ارومیه، دانشکده دامپزشکی، گروه بهداشت و کنترل کیفی مواد غذایی

تاریخ دریافت: 17/10/1402          تاریخ پذیرش: 12/09/1403

چکیده

آرتمیا سخت پوست کوچکیست که به عنوان غذا برای لارو­ آبزیان مورد استفاده قرار می­گیرد. سال­ها پیش روش استانداردی برای پرورش آرتمیا توسط جلبک زنده Dunaliella و نوع خاصی از مخمر معرفی شد که­ در تحقیقات آزمایشگاهی و در برخی مراکز تکثیر و پرورش مورد استفاده قرار می­گیرد. با توجه به مشکلات تهیه و کشت غذای زنده برای پرورش آرتمیا در یک تحقیق 14 روزه آرتمیا در چندین تیمار و در شرایط آزمایشگاهی با پودر جلبک اسپیرولینا پرورش داده شده و پروفایل اسید­های چرب و مقاومت در برابر استرس­های دمایی و شوری آن مطالعه شد. هدف اصلی تحقیق بررسی امکان تولید آرتمیاهای غنی از PUFA و HUFA ست که در شرایط استرسی محیطی بقاء بهتری داشته باشند. بدین منظور ابتدا Artemia franciscana در شرایط آزمایشگاهی کشت و با ترکیبی از مخمر و پودر جلبک اسپیرولینا در 5 تمیارهای مختلف در مقایسه با جلبک Dunaliella مجموعا در 6 تیمار پرورش داده شد. در انتهای دوره پرورش اسید­های چرب هر تیمار سنجیده و آرتمیاها در شرایط کنترل شده تحت استرس­های شوری و دما قرار گرفتند. نتایج نشان داد که تیمارهای تغذیه شده با پودراسپیرولینا مقادیر PUFAsها به بیش از 3 افزایش یافته است (p<0.05). همچنین آرتمیاهای تغذیه شده با تیمارهای مختلف پودر اسپیرولینا دارای بقاء بهتری در مقابل استرس­های اعمال شده داشتند. با توجه به بهبود ارزش غذایی و افزایش مقاومت به استرس­های محیطی و همچنین استفاده مقرون بصرفتر و ساده­تر از پودر اسپیرولینا در تغذیه آرتمیا از این پس می­توان از پودر جلبک اسپیرولینا در تغذیه ارتمیا بصورت انبوه استفاده نمود.

واژه های کلیدی: آرتمیا، اسپیرولینا، اسیدهای چرب، استرس دمایی، استرس شوری

* نویسنده مسئول، پست الکترونیکی: r.manaffar@urmia.ac.ir

مقدمه

 

آرتمیا به عنوان یک غذای زنده مفید و ضروری در تغذیه لارو انواع آبزیان در آبزی پروری شناخته می­شود. این موجود همچنین یک مدل آزمایشگاهی جالب در بوم سم شناسی می­باشد (21). آرتمیا ارزش غذایی بالایی دارد و اندازه آن با دهان تقریبا همه انواع ماهیان­ مطابقت دارد. آرتمیا را می­توان در انواع سیست گشایی­های ماهیان دریایی، سخت پوستان، مصرف ماهیان آب شیرین و ماهیان زینتی استفاده کرد (10). در حقیقت ارگانیسم­هایی که به عنوان غذای زنده مورد استفاده قرار می­گیرند علاوه بر آنکه می بایست حاوی تمام مواد مغذی مانند پروتئین­های ضروری، لیپید­ها، کربوهیدرات­ها، ویتامین­ها، مواد معدنی، اسید­های آمینه و اسید­های چرب ­باشند (30)، همچنینمی بایست هم از نظر اندازه برای لارو آبزیان مناسب باشند و هم اینکه تکثیر و پرورش آنها نسبتا" راحت باشد. آرتمیا به عنوان یک فیلتر کننده غیر انتخابی، می تواند ذرات غذایی بین 1 تا50 میکرون را مورد استفاده قرار دهد (41). با وجود اینکه گونه­های آرتمیا یکی از رایج­ترین خوراک­های زنده مورد استفاده در آبزی پروری هستند، اما حاوی مقادیر ناکافی مواد مغذی ضروری مورد نیاز لارو ماهی­ها هستند. اسید­های چرب غیر اشباع بلند زنجیر (با طول بیشتر از 20 زنجیر) و فسفولیپید­ها اغلب در آرتمیا در مرز بحرانی و پائین قرار دارد (34).

گونه­های آرتمیا از لحاظ میزان اسید­های چرب غیر اشباع بلند زنجیر فقیر هستند که لازم است غنی گردند و کیفیت تغذیه­ای آن­ها را می­توان از طریق غنی سازی با ریز جلبک­ها بهبود بخشید (1). مقدار اسید­های چرب (HUFA) از شاخص­های اصلی برای تعیین ارزش غذایی مواد مورد استفاده در لارو آبزیان به شمار می­رود. این اسید­های چرب نقش بسیار مهمی در سلامتی، رشد و بقای لارو آبزیان دارند. به طور طبیعی، آرتمیا حاوی سطوح پایین DHA وEPA  است. بنابراین هنگامی که به عنوان خوراک استفاده می­شود باید لیپید­های سرشار از اسید­های چرب ضروری نیز غنی شود تا نیاز­های غذایی لارو ماهی را برآورده کند (18). بنابراین چنین غنی سازی برای تولید خوراک زنده با مشخصات تغذیه­ای موثر حیاتی است (13). لیپید­ها پرانرژی­ترین مواد مغذی موجود برای ماهیان دریایی هستند ­و لارو­ها به سطوح بالایی از مواد خاص مثل آرشیدونیک اسید، دکوزا پنتنوئیک اسید، ایکوزا پنتنوئیک اسید و دکوزا هگزونیک اسید به دلیل ناتوانی در سنتز این اسید­های چرب از پیش ساز­های رایج­تر، زنجیره کوتاه­تر و غیراشباع­تر نیاز دارند (32). اسید­های چرب ضروری مانند ایکوزانوئیک اسید و دوکوزاهگزانوئیک اسید نقش مهمی در ساختار غشایی و عملکرد بافت­ها دارند و همچنین به عنوان منبع انرژی مهم در طول رشد اولیه لارو ماهی به ویژه در گونه­های دریایی عمل می­کنند (39).

به همین دلیل می باشد که لارو ماهی­­های دریایی نیز به  (Poly Unsaturated Fattyacid) PUFAو HUFA (Highly Unsaturated Fatty Acids) در جیره غذایی خود نیاز دارد (15). مطالعات نشان داده است لارو ماهیان مختلف باید به طور ایده آل لیپید­های جیره را به شکل لیپید­های قطبی، مانند فسفولیپید­ها که به نحو موثرتری جذب می­شوند، دریافت کنند (31). علاوه براین، امولسیون­های چربی گران هستند­ و از طرفی خوراک­های غنی از امولسیون­های لیپیدی برکیفیت آب تاثیر منفی می­گذارند (20).

میزان اسیدهای چـرب ضـروری مانند(Eicosa Pentaenoic Acid) EPA و DHA (Docosa Hexanoic Acid) در غذاهای زنده که در مراحل اولیه زندگی لارو مورد استفاده قرار می­گیرند به طور طبیعی کم اســت. بنــابراین غنــی ســازی آنهــا بــا امولســیون اسیدهای چرب غیـراشـباع امـری مهـم مـی باشـد (11). اهمیت EPA و DHA نیز توسط Lavens و همکاران 1996 به عنوان ترکیباتی برای تقویت رشد، مقاومت در برابر استرس و رنگدانه توصیف شده است. از آنجایی که بیش­تر آبزیان معمولا تحت شرایط استرس­های محیطی ( دما و شوری) قرار می­گیرند افزایش مقاومت و غنی سازی موجود­ها دربرابر استرس­ها اهمیت بخصوصی دارد. استرس حالتی است که در آن هموستاز موجود توسط عوامل استرس­زا درونی یا بیرونی تهدید یا قطع می­شود. شوری زیستگاه یکی از مهم­ترین عوامل غیرزیستی است که نه تنها بر توزیع و فراوانی سخت پوستان، بلکه بر فیزیولوژی و سلامت عمومی آنها تاثیر می­گذارد (27). بنابراین، در حال حاضر بیش­ترین توجه به افزایش حضور (PUFAS) به خصوص EPA و DHA در آرتمیا معطوف شده است. با توجه به ویژگی­های تغذیه ای آرتمیا ازجمله فیلترخواری غیر انتخابی ذرات زیر 50 میکرونی، دستکاری ارزش غذایی آن را می­توان از طریق رژیم غذایی انجام داد.

از جمله جایگزین­های مناسب برای ترمیم نیازهای غذایی لارو آبزیان و افزایش ارزش غذایی آرتمیا می­توان مستقیم یا غیر مستقیم از جلبک­هایی با ارزش غذایی بالا در رژیم غذایی استفاده کرد. ریزجلبک­ها می­توانند مواد مغذی مطلوبی مانند LC-PUFA را در قالب فسفولیپید­های بیولوژیکی در خوراک­های زنده تقویت کند (24). اسپیرولینا نوعی جلبک کم چرب است که میزان چربی آن تقریبا بین 6 تا 9 درصد می­باشد. اما این جلبک تقریبا حاوی بسیاری از اسید­های چرب غیر اشباع مهمی است که برای بدن انسان ضروری است. این اسید­های چرب غیر اشباع مشتمل بر گاما لینولئیک اسید، دوکوزاهگزانوئیک اسید و ایکوزاپنتانوئیک اسید می­باشد. همچنین اسپیرولینا دارای مقدار قابل توجهی PUFAS است. این امرکنجکاوی بسیاری از محققان را برانگیخته است تا مطالعاتی بر روی PUFAS جهت تعیین مقدار این ماده مغذی در اسپیرولینا انجام دهند. براساس یافته­های یک مطالعه PUFAS ها حدود30 درصد از کل چربی­ها را در اسپیرولینا تشکیل می­دهند، درحالی که سایر محققان گزارش کرده­اند که نسبت این اسید­های چرب بین 4/19و9/21 درصد از کل اسید­های چرب متغیر است. شایان ذکر است که اسپیرولینا تنها گیاهی است که در بین اتوتروف­ها غنی از گاما لینولئیک اسید می­باشد (29).  این پژوهش سعی دارد جایگزین غذایی بهتری را برای برنامه غذایی موجود آرتمیا (12) ارائه کند که ضمن حفظ سادگی در پرورش، آرتمیا بتوانند مقاومت بیشتری در برابر استرس­های محیطی داشته و در عین حال آرتمیایی با ارزش غذایی بالاتر از دیدگاه اسیدهای چرب تولید نمایند.

مواد و روشها

کشت اسپیرولینا و تهیه غذای ویژه اسپیرولینا: استوک جلبک Spirulina platensis از شرکت دانش بنیان زیست فن گستر اسپوتا- ارومیه تهیه شد. کشت این جلبک به روش آزمایشگاهی انجام شد. برای این کار ارلن‏های 5 لیتری در مقابل لامپ­های فلورسنت از فاصله cm 15 به صورت 24 ساعته با نوری معادلS-1 E M-2µ40 لوکس نوردهی ‏شدند. هوادهی از طریق لوله‏های هوادهی متصل به پمپ مرکزی انجام گرفت. دمای محیط کشت 28±1 درجه سانتیگراد کنترل شد. برای جلوگیری از ورود هرگونه آلودگی از طریق هوا، درب ارلن­ها با پنبه و سپس با فویل مسدود شد. pH محیط پرورش در حدود 1±10 حفظ گردید (2 و 5). از محیط کشت زاروک برای پرورش جلبک استفاده شد. ترکیبات مورد استفاده در محیط کشت زاروک بر اساس فرمول نویسنده تهیه شد (42). دوره کشت بر روی 14 روز تنظیم گردید. پس از اتمام دوره و رسیدن بیومس به حداکثر تراکم در انتهای دوره رشد تصاعدی بیومس جلبک توسط توری­های 30 میکرونی جداسازی و سپس آب شیر شسته شد. بیومس پس از آبگیری کامل در درون دستگاه خشک کن (انکوباتور ویژه) مجهز به فن در دمای 55 درجه سانتیگراد و در مدت 5 ساعت خشک و آنالیز شد (جدول 1). بیومس خشک تهیه شده سپس توسط آسیاب دستی کاملا پودر شد بطوری که اندازه ذرات آن حداقل کوچکتر از 50 میکرون باشد. پودر آماده شده در جای خشک و تاریک تا زمان آزمایش نگهداری شد. جهت تهیه غذای اسپیرولینا 2 گرم پودر جلبک (شکل 1) در 150 میلی لیتر آب شور 10 گرم درلیتر (محلول K&D) حل شد. محلول در دوره مصرف در یخچال نگهداری شد. استوک تهیه شده هر 3 روز یکبار بصورت تازه تهیه شد.

کشت جلبک Dunaliella و تهیه غذای ویژه آرتمیا: استوک جلبک Dunaliella salina از پژوهشکده آرتمیا و آبزیان دانشگاه ارومیه تهیه شد. کشت به روش ارائه شده توسط Lavens و Sorgeloos (1996) توسط محیط کشت Conway صورت گرفت. ترکیب شیمیایی و نحوه آماده سازی ترکیب شیمیایی طبق فرمول انجام شد (12 و 25). میزان نور لازم برای پرورش جلبک ثابت نبوده و با افزایش عمق و غلظت محیط پرورش، باید شدت نور افزایش یابد (mol/m-2/sµ15برای ارلن مایر، mol/m-2/sµ 75-15 برای حجم­های بیش­تر) تا بتواند به عمق محیط نفوذ کند. این نور توسط لامپ­های فلورسنت تامین شد. برای اینکار لوله­های ذخیره، لوله­های آزمایش و ارلن های مختلف توسط دو عدد لامپ فلورسنت از فاصله cm 30-40 نوردهی شدند. دورة نور مصنوعی بصورت 24 ساعته تامین شد (26). دمای‌ محیط کشت مابین‌ c˚±1 22 متغیر بود. شوری مورد نیاز برای پرورش جلبک بر حسب شوری استوک اولیه ppt 90-30 تنظیم شد. برای اینکار آب دریاچه ارومیه که قبلا توسط اتوکلاو استریل شده بود با اضافه کردن آب شیر بر روی این شوری و pH حدودا 5/8 -8 تنظیم گردید. هوادهی در مراحل‌ مختلف‌ توسط لوله‌های هوادهی‌ متصل‌ به‌ پمپ‌ مرکزی انجام‌ شد‌. برای‌ جلوگیری‌ از ورود هر گونه‌ آلودگی از طریق‌ هوا، یک‌ فیلتر اصلی‌ در ورودی‌ هوا به‌ لوله‌ مادر هوا قرارگرفت (26). هر گاه‌ غلظت‌ جلبک­ها در ارلن­ها به‌ حداکثر مقدار خود رسید عمل‌ هوادهی‌ را قطع‌ کرده‌ و جلبک‌ موجود در آن­ به­ کمک‌ سانتریفوژ خالص گردید. طبق فرمول غذاهیCoutteau و همکاران (1992)، جلبک‌ غلیظ شده‌ باید قبل‌ از استفاده‌ در تغذیه‌ آرتمیا تا حد معینی‌(Cell/ml106×18) رقیق‌ گردد. جلبک رقیق شده تا زمان مصرف درون یخچال نگهداری شد.

آماده سازی غذای مخمری : همچنین طبق پروتکل جدول غذادهی Coutteau و همکاران (1992) یک گرم پودر مخمر (Saccharomyces cerevisiae) در 150 میلی لیتر آب شور 10 گرم در لیتر حل زده شد و به عنوان غذا در تیمارهای مختلف استفاده شد (12). استوک مخمر تا زمان استفاده درون یخچال نگهداری شد.

 

 

جدول-1: جدول غذا دهی آرتمیا (Coutteau et al., 1992)

روز پرورش

جلبک Dunaliella (میلی لیتر از استوک جلبک)

مخمر (میلی لیتر از استوک مخمر)

حجم محیط کشت (میلی لیتر)

1

00209/0

00209/0

2

2،3،4

00413/0

00413/0

2

5،6

00625/0

00625/0

2

7

00826/0

00826/0

2

8

01060/0

01060/0

2

9

01700/0

01700/0

3

10،11

02000/0

02000/0

3

12،13

02500/0

02500/0

3

14،15

03000/0

03000/0

4

16،17

03500/0

03500/0

4

18،19

04250/0

04250/0

4

20 و بعد

05000/0

05000/0

4

 

 

مراحل تفریخ و پرورش آرتمیا: تفریخ سیست آرتمیا و پرورش لاروها تا مرحله بلوغ تحت شرایط استاندارد انجام شد (26 و 40). بدین منظور سیست‌ها در شرایط آزمایشگاهی استاندارد (نور: lux 3000 - 2000، دما: °c1±27، 1±8 = pH، هوادهی کافی و شوری 35 گرم در لیتر) از آب رقیق شده دریاچه ارومیه توسط آب شهری (در صورت ‌استفاده ‌از آب ‌شیر باید به مدت‌ یک‌ تا دو ساعت ‌هوادهی‌ کرد‌ تا کلر آب ‌خارج‌گردد)، تخم‌گشایی شدند. هوادهی برای هچ تا 24 ساعت ادامه یافت و نهایتاً لاروهای تفریخ شده با استفاده از نورگرایی مثبت توسط پیپت از پوسته جدا شدند. در مرحله بعد پرورش لاروها با تراکم 500 عدد ناپلیوس در 1000میلی لیتر آغاز شد. پرورش آرتمیا در درون مخروط های پلاستیکی ­­­­­­­­­­­­­­­­­­­­­­و بصورت همزمان در تمامی تیمارها و تکرارها انجام شد (تصویر-1). در تیماربندی آرتمیاها به غیر از تیمار شاهد که بصورت استاندارد بر اساس فرمول Coutteau و همکاران (1992) صورت گرفت )12) (جدول-1)، 5 تیمار غذایی شامل مخمر با درصدهایی از پودر اسپیرولینا (تصویر-2) (20، 40، 60، 80، 100 درصد) استفاده شد (جدول-2). پرورش به مدت 15روز تا انتهای مرحله بلوغ آرتمیا صورت گرفت. در روز 15 آرتمیا­ها بهمنظور آنالیز پروفایل اسید­های چرب و اعمال تیمارهای استرسی برداشت شدند.

 

تصویر-1: ظروف یک لیتری پلی اتیلنی با هوادهی برای پرورش آرتمیا در آزمایشگاه

 

جدول-2: تیمارهای غذایی اعمال شده در این تحقیق (منظور از درصد همان نسبت مقادیر به جدول استاندارد غذادهی Coutteau et al., 1992 می باشد).

تیمار 5

تیمار 4

تیمار 3

تیمار 2

تیمار 1

تیمار شاهد

 

100% پودر

Spirulina platensis

80% پودر

Spirulina platensis

60% پودر

Spirulina platensis

40% پودر

Spirulina platensis

20% پودر

Spirulina platensis

100% جلبک

Dunaliella

salina

درصد و گونه جلبک

100% طبق فرمول غذایی

(Coutteau et al., 1992)

100% طبق فرمول غذایی

(Coutteau et al., 1992)

100% طبق فرمول غذایی

(Coutteau et al., 1992)

100% طبق فرمول غذایی

(Coutteau et al., 1992)

100% طبق فرمول غذایی

(Coutteau et al., 1992)

100% طبق فرمول غذایی

(Coutteau et al., 1992)

مخمر

 

 

اعمال استرس به آرتمیا: در روز 15 و اتمام دوره ی پرورش، تعدادی از آرتمیاهای تغذیه شده در تیمارهای مختلف در درون ظروف پلی اتیلنی 150 میلی­لیتری تحت استرس قرار گرفتند (تصویر-2). برای انجام این کار 30 عدد آرتمیا از هر تیمار در هر ظرف پلی اتیلنی که پیشتر برای اعمال استرس آماده شده بودند انتقال داده شدند. برای اینکار بدون اعمال ترجیح این تعداد آرتمیا بصورت تصادفی از سه ظرف پرورشی برداشت و به آرامی درودن ظروف پلی اتیلنی که 24 ساعت قبل درون یک بن ماری قرار گرفته بودن انتقال داده شد. مدت زمان شرایط استرس 7۲ ساعت بوده و تیمارهای استرسی شامل دمای ۳۵ درجه ی سانتیگراد و شوری ۲۳۰ و ۲۸۰ گرم در لیتر اعمال شدند. در انتخاب این شرایط استرسی بر اساس منابع وتجربیات پیشین سعی شد شرایط نزدیک به بحران و مرگ آرتمیا در گونه A. franciscana انتخاب شود. میزان تلفات طی هشت ساعت اول هر دو ساعت یکبار، از هشت ساعت الی 24 ساعت اول هر چهار ساعت یکبار و پس از 24 ساعت تا انتهای 72 ساعت هر هشت ساعت یکبار ثبت شده و نهایتا" به درصد محاسبه گردید. آنالیز آماری توسط نرم افزار  26 SPSS ورژن 64 بیتی و آنالیز واریانس دانکن در سطح 05/0 انجام شد.

 


تصویر-2: ظروف 150 میلی لیتری اعمال استرس به آرتمیا در شرایط کنترل شده

نتایج

 

تصویر فلیکهای (Flake) خشک جلبک اسپیرولینا و پودر این جلبک در تصویر-3 آورده شده است. همچنین آنالیز کمی و کیفی محصول تولید شده در جداول 3 و 4 ارائه شده است. بر اساس این نتایج پودر جلبک دارای ویژگیهای فیزیکی و شیمیایی مورد قبول برای به عنوان غذای آرتمیا را اخذ کرده بود.

 

تصویر-3: ساختار فیزیکی پودر اسپیرولینای خشک شده.

(A بیومس جلبک خشک شده بصورت ورقه (Flake(B پودر تهیه شده از بیومس خشک جلبک

جدول-3: نتایج آنالیز کمی و کیفی پودر جلبک اسپیرولینا

نتیجه بررسی

ویژگی مطلوب بر اساس منابع

نوع آنالیز

سبز زیتونی

پودر سبز

ویژگی ظاهری

تائید نظری

طعم جلبک دریایی

بو/طعم

30/5

8.0%

خاکستر (درصد در وزن خشک)

85/6

8.0%

چربی کل (درصد در وزن خشک)

80/62

60%

پروتئین کل (درصد در وزن خشک)

50/12میکرون

10%

اندازه ذرات

Cfu/g 100

Cfu/g000/1

مخمر و کپک

 

 

جدول نتایج حاصل از آنالیز پروفایل اسید­های چرب آرتمیاهای رشد یافته در این سیستم پرورش نشان می­دهد (جدول-5) که اسید­های چرب امگا 3 (الفا لینولئیک اسید، ایکوزا پنتانوئیک اسید، دوکوزاهگزانوئیک اسید) نسبت به تیمار شاهد رشد چند برابری داشته است و در دسترس بودن مقدار حدود 3 برابر PUFA درA. franciscana تغذیه شده با پودر اسپیرولینا و مخمر نسبت به تغذیه با جلبک Dunaliella و مخمر را نشان می­دهد. همچنین مقدار گاما لینولئیک اسید و الفا لینولئیک اسید و دوکوزاهگزانوئیک اسید نسبت به تیمار شاهد رشد 3 برابری داشته است.(p<0.05).

 

جدول-4: نتایج آنالیز اسید­های چرب پودر جلبک اسپیرولینا (درصد از کل اسیدهای چرب)

نتایج(مقدار اسید چرب در پودر)

اسم مشترک

پروفایل اسیدچرب

 

 

اشباع شده

19/0±11/1

میرستیک

C14:0

55/1±28.32

پالمتیک

C16:0

0.98±6.80

ایستریک

C18:0

Nd

آرشیدیک

C20:0

 

 

اسید­های چرب تک غیر اشباع

Nd

میریستولئیک

C14:1n5

62/0±22/3

پالمیتولئیک

C16:1n7

41/1±54/5

اولئیک

C18:1N9

 

 

اسید­های چند غیر اشباع

62/2±47/11

لینولئیک

C18:2n6

15/0±79/3

الفا-لینولئیک

C18:3n3

48/1±31/12

گاما-لینولئیک

C18:3n6

38/0±55/1

استردونیک

C18:4n3

01/0±40/0

آرشیدونیک

C20:4n6

27/0±54/1

ایکوزاترینوئیک

C20:3n3

46/0±70/2

ایکوزاپنتانوئیک اسید

C20:5n3

51/0±51/1

دوکوزاپنتانوئیک اسید

C22:5N3

34/0±34/2

دوکوزاهگزانوئیک اسید

C22:6N3

 

جدول-5: آنالیز اسید­های چرب تیمارهای غذایی مورد استفاده در این تحقیق (درصد از کل اسیدهای چرب)

درصد گونه­های جلبک

 

 

نام اسید­های چرب

تیمار شاهد

تیمار 1

تیمار2

تیمار3

تیمار4

تیمار5

100% جلبک

Dunaliella salina

20%پودر

Spirulina platensis

40% پودر

Spirulina platensis

60% پودر

Spirulina platensis

80% پودر

Spirulina platensis

100% پودر

Spirulina platensis

C12:0

لوریک اسید

12/0±01/0b

36/0±08/0a

14/0±04/0b

12/0±02/0b

16/0±03/0b

16/0±04/0b

C16:0

میرستیک اسید

98/0±09/0c

10/2±21/0a

92/1±11/0b

44/1±12/0b

21/2±21/0a

12/2±24/0a

C14:1

میریستولئات

39/0±15/0c

27/2±42/0b

04/2±32/0b

65/1±21/0c

11/2±11/0b

39/3±40/0a

C16:0

پالمتیک اسید

04/14±01/1c

44/17±11/1a

4/19±31/1a

84/15±61/1b

58/20±21/1a

39/18±31/1ab

C16:1

پالمیتولئیک اسید

88/8±01/1b

62/10±02/1a

49/11±31/1a

26/7±51/1c

74/9±41/1b

32/9±72/1b

C17:0

هپتادکانوئیک اسید

62/9±01/0a

37/3±01/0c

13/4±01/0b

18/4±01/0b

54/3±01/0c

53/2±01/0d

C17:1

10 هپتادکانوئیک اسیدcis

85/0±22/0b

44/0±11/0c

81/1±31/0a

42/0±01/0c

48/0±01/0c

75/0±11/0b

C18:0

استئاریک اسید

61/13±01/1b

20/15±56/1a

18/7±30/1d

54/6±09/1e

97/8±04/1c

53/8±92/0c

C18:1n9c

اولئیک اسید

60/11±11/1c

47/12±61/0c

47/16±51/1a

93/15±71/1a

64/14±82/1b

76/13±35/1b

C18:1n9t

اکتادستونیکاسیدtrans9

20/5±61/0b

94/6±83/0a

47/7±88/0a

85/4±31/0c

77/5±26/0b

60/5±33/0b

C18:3n6

گامالینولئیک اسید

46/3±57/0e

88/6±72/0d

09/10±89/0c

79/17±01/1a

83/11±31/1b

90/11±71/0b

C18:3n3

الفا لینولئیک اسید

24/1±21/0d

19/2±12/0c

1/4±11/0a

40/3±11/0b

53/4±30/0a

93/4±23/0a

C20:0

آراشیدیک اسید

77/15±11/1a

57/0±01/0c

27/0±01/0d

86/8±61/0b

32/0±01/0d

05/0±01/0e

C20:1

ایکوزانوئیک اسیدcis11

45/1±05/0a

58/0±01/0b

17/0±02/0d

18/0±01/0d

09/0±01/0e

31/0±06/0c

C20:4n6

آراشیدونیک اسید

19/0±02/0b

82/0±05/0a

Nd.

Nd.

07/0±01/0c

Nd.

C20:5n3

ایکوزاپنتانوئیک اسید

28/0±01/0c

37/1±11/0a

73/0±08/0b

15/0±01/0d

24/0±01/0c

11/0±01/0d

C22:1n9

اروسیک اسید

11/0±01/0a

Nd.

29/0±01/0a

20/0±01/0a

16/0±04/0a

12/0±01/0a

C22:2n6

دوکوزادینوئیک اسید

22/0±01/0b

61/0±01/0a

18/0±01/0c

13/0±01/0d

14/0±01/0d

04/0±01/0e

C22:6n3

دوکوزاهگزانوئیک اسید

22/0±01/0c

7/0±01/0a

82/0±20/0a

51/0±01/0b

71/0±03/0a

72/0±04/0a

·         اعداد در هر ردیف با حروف لاتین یکسان فاقد اختلاف آماری می­باشند.

 

 

در پژوهش حاضر بعد از تغذیه آرتمیا با پودر جلبک اسپیرولینا، مخمر و جلبک Dunaliella به مدت 14 روز تیمار­های تحت شرایط استرس دمایی 34 درجه سانتی­گراد قرار گرفتند. برطبق نتایج بدست آمده تا 24 ساعت تغییرات خاصی در ارگانیسم­ها مشاهده نشد و تفاوت چندانی در استرس دمایی در بین تیمار­ها مشاهده نشد و بعد از 72 ساعت بیش­­ترین تلفات مربوط به تیمار شاهد و کم­ترین تلفات مربوط به تیمار 5 و 3 می­باشد.

 

جدول-6: درصد بقاء (نسبت به روز اول) در A. franciscana تحت استرس دمای 34 درجه سانتی گراد

درصد گونه­های جلبک

 

زمان( ساعت)

تیمار شاهد

تیمار 1

تیمار2

تیمار3

تیمار4

تیمار5

100% جلبک

Dunaliella salina

20%پودر

Spirulina platensis

40% پودر

Spirulina platensis

60% پودر

Spirulina platensis

80% پودر

Spirulina platensis

100% پودر

Spirulina platensis

0

100%

100

100

100

100

100

2

100

100

100

100

100

100

4

100

100

100

100

100

100

6

75/93

75/93

100

100

100

100

8

75/93

5/87

100

100

100

100

12

5/87

25/81

100

75/93

100

75/93

16

5/87

25/81

100

5/87

75/93

75/93

20

25/81

75/68

100

5/87

75/93

75/93

24

25/81

5/62

100

25/81

75

75/93

32

5/62

5/62

75/93

75

5/62

75/93

40

50

50

25/81

75

25/31

5/87

48

75/43

5/37

25/56

75/68

25

75/68

56

5/12

25/31

75/43

5/62

5/12

75/68

64

5/12

25

5/37

75/43

5/12

50

72

25/6

5/12

5/12

50

5/12

50

 

 

در تحقیق مربوطه پس از تغذیه A. franciscana با پودر جلبک اسپیرولینا و مخمر به مدت 14 روز تیمار­ها تحت شرایط استرس­های شوری 230، 280 گرم در لیتر قرار گرفتند. برطبق نتایج بدست آمده بعد از 16 ساعت تمامی تیمار­ها تلف شدند بیش­­ترین بازماندگی مربوط به تیمار 5 می­باشد. در شوری 280 در 4 ساعت اول تفاوت اصلی در تیمار شاهد وجود داشت ولی در طی گذشت 8 ساعت تقریبا تمامی تیمار­ها تلف شدند.

بحث و نتیجه­گیری

امروزه اهمیـت اسـیدهای چـربِ غیراشباع بلنـد زنجیر( امگا 3) مانند اسید ایکوزاپنتادوئیک (EPA) دوکوزاهگزادوئیــک (DHA) و الفا لینولئیک اسید، در تغذیــه انسان بر کسی پوشیده نیست. این ترکیبات بـه وفـور در روغـن ماهی یافت می­شود. ماهیان سرد ضمن اینکه قادر به تولید این اسیدهای چرب هستند بخش عمده ای از این ترکیبات باارزش را از ریزجلبکها بصورت مستقیم یا غیر مستقیم دریافت می­کنند. از آنجا که در سال هـای اخیر صید جهانی ماهیان دریایی کاهش یافته است، لذا محققین به فکر ایجـاد روش­هـای کشـت صـنعتی بـرای تولیـد ریزجلبـک­هـا و تامین نیاز به این اسیدهای چرب با ارزش از آن­ها افتاده­اند (35). از طرفی، استفاده مسـتقیم غـذایی از ریـز جلبک­هایی کـه تولیدکننده­های اولیـه­ی این اسیدهای چـرب غیراشـباع بلنـد زنجیر هستند، نیزمی­توانند کارآمـدترین روش، بـرای افـزودن این مواد غـذاییِ بـا ارزش بـه رژیـم غـذایی باشـد (22).

 

 

جدول-7: درصد بقاء (نسبت به روز اول) در A. franciscana تحت استرس شوری 230 گرم در لیتر

تیمارهای غذایی

 

       زمان( ساعت)

تیمار شاهد

تیمار 1

تیمار2

تیمار3

تیمار4

تیمار5

100% جلبک

Dunaliella salina

20%پودر

Spirulina platensis

40% پودر

Spirulina platensis

60% پودر

Spirulina platensis

80% پودر

Spirulina platensis

100% پودر

Spirulina platensis

0

100%

100

100

100

100

100

2

75/93

100

100

100

5/87

100

4

5/87

5/62

25/81

100

75/93

25/81

6

75

50

25/81

5/87

75/68

75/68

8

25/56

25

50

25/31

25

25

10

25/6

5/12

25/6

75/18

0

25/6

12

0

0

0

0

0

25/6

16

0

0

0

0

0

0

 

جدول-8: درصد بقاء (نسبت به روز اول) در A. franciscana تحت استرس شوری 280 گرم در لیتر

درصد گونه­های جلبک

 

زمان( ساعت)

تیمار شاهد

تیمار 1

تیمار2

تیمار3

تیمار4

تیمار5

100% جلبک

Dunaliella salina

20%پودر

Spirulina platensis

40% پودر

Spirulina platensis

60% پودر

Spirulina platensis

80% پودر

Spirulina platensis

100% پودر

Spirulina platensis

0

100%

100

100

100

100

100

2

25/81

5/87

100

100

75/93

5/62

4

25/6

5/12

5/62

75/68

75/68

5/62

6

0

0

25

25

0

0

8

0

0

0

0

0

0

 

 

غنی­سازی ناپلیوس آرتمیا با اسیدهای چرب غیراشباع زنجیر بلند (HUFA) جهت بالا بردن کیفیت آرتمیا با هدف تقویت لارو میگو و ماهی و تضمین درصد بقای لاروها و افزایش میزان تولید، یکی از فعالیتهای رایج در پرورش آبزیان می­باشد. عوامل متعددی در غنی­سازی ناپلیوس آرتمیا و نیز افزایش میزان جذب اسیدهای چرب جهت بهبود ارزش غذایی آن مؤثرند، از جمله می­توان  به مواردی نظیر نوع ماده غنی­سازی­کننده، مدت زمان غنی­سازی، شرایط محیطی برای غنی­سازی اشاره کرد (34).

اغلب گونه های آرتمیا از نظر اسید­های چرب غیر اشباع ضروری به خصوص ایکوزا پنتانوئیک و بویژه اسید دوکوزاهگزانوئیک نسبتا ضعیف است از سوی دیگر EPA و DHA به عنوان مهم ترین اسید­هایPUFA  برای بسیاری از گونه­های لارو دریایی در نظر گرفته می­شوند. بنابراین غنی سازی یا تغذیه عمومی گونه های آرتمیا قبل از استفاده به عنوان طعمه زنده لارو در چند دهه اخیر معمول شده است. با اینکه غلظت DHA، بویژهDHA/EPA ، نقش کلیدی در رشد و بقا و محافظت در برابر بیماری­ها در ماهیان دریایی و سخت پوستان دارد (10)، حتی عدم تعادل مناسب ممکن است منجر به پاسخ­های بیوشیمیایی نامطلوب هنگام تغذیه موجودات پرورشی شود (36).

می­توان گفت که بالا بودن میزان اسیدهای چرب غیر اشباع HUFA در ریز جلبک­ها، می­تواند عامل موثری در روند رشد محسوب گردد. ریزجلبک اسپیرولینا حاوی مقادیر زیادی مواد مغذی از جمله اسید­های آمینه مهم، پروتئین­های با کیفیت بالا، کربوهیدرات­ها، چربی­ها، ویتامین­ها و رنگدانه­های رنگی است. (23). با توجه به ارزش غذایی بالای جلبک اسپیرولینا و رشد روز افزون پرورش این جلبک پژوهش حاضر انجام شد و نتایج مطالعه حاضر در بین تیمار­های مختلف در این تحقیق، نشان داد که اضافه نمودن پودر اسپیرولینا منجر به افزایش مقادیر اسید­های چرب امگا3 در مقایسه با اضافه نمودن جلبک Dunaliella به جیره غذایی آرتمیا می­شود. توجه به نتایج به دست آمده از افزایش مقاومت در تیمار­های تغذیه شده با پودر جلبک اسپیرولینا در برابر استرس­های محیطی و غنی بودن پودر جلبک اسپیرولینا از اسید­های چرب امگا 3 و از آنجایی اسید­های چرب امگا 3 نقش کلیدی در بقا و مقاومت در برابر بیماری­ها و استرس­ها داشته و یکی از دلایل این افزایش مقاومت دربرابر استرس­ها در ارگانیسم­های تغذیه شده ناشی از اسید­های چرب امگا3 می­باشد.

ریز جلبک­ها می­توانند با دارا بودن انواع آنتی اکسیدانها سیستم استرس اکسیداتیو موجودات را تقویت کنند. بر همین اساس از گونه­های مختلف ریزجلبکها با موفقیت و بصورت وسیعی در تغذیه انواع زئوپلانکتونها استفاده می شود (3 و 6). از این رو این ارگانیسم­ها می­توانند به عنوان منبع بالقوه­ای از آنتی اکسیدان­های طبیعی کاربردهای زیادی در تغذیه موجودات داشته باشند (9). از طرفی مشخص شده است که فیکوسیانین موجود در اسپیرولینا رادیکال آلکوکسیل، هیدروکسیل و پراکسیل را مهار کرده، تولید نیتریت را کاهش داده و پراکسیداسیون لیپید در میکروزومهای کبد را مهار می­نماید، همچنین بسیاری از مطالعات برون و درون تنی نشان می­دهند که اسپیرولینا به طور موثری استرس اکسیداتیو را کاهش می­دهد. این تاثیرات ناشی از وجود فیکوسیانین، بتاکاروتن، سایر ویتامین­ها و مواد معدنی موجود در آن می­باشد (16). بنابراین می­توان نقش کلیدی قیکوسیانین را عامل دیگر افزایش مقاومت در برابر استرس­ها در این ارگانسیم­ها دانست.

در مطالعه­ای که بهمنظور بررسی اثر آرتمیاArtemia urmiana  غنی شده با ریز جلبک Chaetoceros sp. بر ترکیب اسید چرب و وضعیت آنتـی اکسیدانی میگوی پاسفید غربی (Litopenaeus vannamei) انجام شد. نتایج تحقیق نشان داد که تیمارهای تغذیه شده با ناپلیوس آرتمیا غنی شده با تراکم­های مختلف ریز جلبک Chaetoceros ، ترکیب اسید چرب و وضعیت آنتی اکسیدانی بهتری را در مقایسه با شاهد نشان دادند (4).

اکبری و همکاران در سال 1399 نشان دادند که ناپلیوس آرتمیا تغذیه شده با سطوح مختلف ریز جلبک Aphanothece halophytica ترکیب اسید­های چرب بهتری را در مقایسه با شاهد نشان داد و بیش­ترین میزان ایکوزا پنتانوئیک اسید (25/0±99/3) و دوکوزاهگزانوئیک اسید (02/0±44/1) در تیمار تغذیه شده با ریز جلبک با تراکم سلولی 106×13 سلول در هر میلی لیتر مشاهده شد (1).

 Millamena و همکاران 1998 با مقایسه عملکرد پست لارو میگوی ببری سیاه تغذیه شده با آرتمیای غنی شده با سبوس برنج و فاقد اسید چرب غیر اشباع با پست لاروهای تغذیه شده با گونه جلبک Ulva clathrata  حاوی سطوح مختلف اسیدهای چرب غیر اشباع نشان دادند که پست لاروهایی که به مدت 10 روز با غذای زنده جلبکی تغذیه شده بودند، نسبت به پست لاروهای تغذیه شده با سبوس برنج به علت اسیدهای چرب، رشد بالاتری داشت (28). در پژوهشی دیگر ظرفیت آنتی اکسیدانی ماهی قزل آلای رنگین کمان پس از تغذیه با جلبک اسپیرولینا مورد بررسی قرار گرفت. نتایج نشان داد که  این جلبک با افزایش سطح انزیم گلوتاتیون پراکسیداز قادر به بهبود ظرقیت آنتی اکسیدانی می­باشد (32). آنها نشان دادند که تغذیه ماهی قزل آلای رنگین کمان با مقادیر کم Arthrospira platensis پرووفایل اسید­های چرب اشباع را با کاهش میزان اسید­های چرب اشباع نامطلوب و افزایش مقدار برخی از PUFA­های زنجیره بلند مفید که دارای خاصیت ضد ترمبوژن و ضد آتروژنیک هستند، بهبود بخشید. در خصوص تحقیق حاضر نیز پیش از این اثبات شده بود که آنزیمهای گوارشی آرتمیا در تغذیه با رژیمهای غذایی مختلف به سرعت تغییر پیدا نموده و این تغییر بصورت ویژگیهای رشد و بقاء در آرتمیا بروز پیدا می­کند (8).

پیش از این گزارش شده بود که جیره­های حاوی Arthrospira platensis قادرند به طور قابل توجهی پروفایل اسید­های چرب ماهیچه­ها را در قزل آلای رنگین کمان تغییر دهند (38). حتی افزایش سطح Arthrospira platensis از 5/2 به 10 درصد به طور قابل توجهی باعث کاهش (p>0.05) مقدار میریستیک، اسید پالمیتیک، اسید پالمیتولئیک، اسید اولئیک و اسید لیگنوسریک در ماهیچه­های ماهی قزل آلای رنگین کمان شده بود در حالیکه میزان اسید ایکوزانوئیک، DHA و اسید نرونیک را به طور قابل توجهی افزایش میداد (p<0.05). علاوه بر این، ماهی قزل آلای رنگین کمان تغذیه شده با 10 درصد جیره­های تقویت شده با Arthrospira platensis  دارای درصد کمتری از اسید­های چرب تک غیر اشباع (MUFAs) و SFAs و غلظت­های بالاتر PUFAs نسبت به ماهی­هایی بود که با جیره شاهد تغذیه می­شدند.

در خصوص اسپیرولینا نیز گزارش شده است که پودر جلبک اسپیرولینا در جیره کپور معمولی (Cyprinus carpio) منجر به افزایش بقا می­گردد (19). علاوه بر این افزودن پودر اسپیرولینا در مرحله­ی لاروی میگوی وانامی  Penaeus vannamei (17) و میگوی سفید (Litopeneaus schmitti) با درصد مختلف و همراه سایر غذا­های استفاده شده، آثار مثبت در شاخص­های تغذیه و بازماندگی آنها داشته است. درمطالعه­ای که اثر پودر جلبک اسپیرولینا بر روی اسید­های چرب لاشه ماهی کفال خاکستری انجام شد، میزان اسید­چرب چند زنجیر غیر اشباع (PUFA) در گروه­های تغذیه شده با پودر جلبک اسپیرولینا به طور معنی دار بیش­تر از تیمار شاهد بود (p<0.05). این گزارش­ها با نتایج حاضر در این تحقیق همخوانی دارد لذا می­توان تاکیدکرد که تغذیه با پودر اسپیرولینا می­تواند اثر زیادی بر بقاء و مقاومت در مقابل استرس­های محیط داشته باشد. بنابراین می­توان گفت که خوراک تقویت شده با اسپیرولینا می­تواند چربی پروفایل اسیدهای چرب آرتمیا را تغییر داده و موجب شود موجوداتی مقاوم نسبت به استرس­های محیط تولید شوند اما در خصوص دیگر آبزیان مطالعات مورد نیاز است.

تقدیر و تشکر

از مسئولین آزمایشگاه مرکزی دانشگاه ارومیه، جهاد دانشگاهی ارومیه و شرکت زیست فن گستر اسپوتا (دانش بنیان) بابت تمامی زحماتشان تشکر و قدردانی می­گردد.

 

1.    اکبری، پ.، امینی خویی، ز. و عرفانی فر، ا. 1399. اثر ریزجلبک Aphanothece halophytica  بر ترکیب اسید‌‌های چرب و اسید‌‌های آمینه  ناپلیوس آرتمیا ارومیانا
 (Artemia urmiana).  مجله علمی شیلات ایران.  doi: 10.22092/isfj.2021.12319229(5), 27-3،  
2.    پاک­نژاد، م.، ملک­احمدی، ف. و سلطانی، ن. 1397. بررسی اثر مقادیر مختلف نیتروژن و pH بر تولید بیومس، محتوی لیپید و ترکیب اسیدچرب در اسپیرولینا ماژور. مجله بوم شناسی آبزیان. 8(2): 30-14. doi: 20.1001.1.23222751.1397.8.2.2.6
3.    پیری، ح. و عنایت غلام پور، ط. 2013. بررسی نقش جلبکهای سبز آبی آنابنافلوس-آکوا (Anabaena flos-aquae) و اسیلاتوریا آفریکانوم (Oscillatoria africanum) در تغذیه دافنی ماگنا (Daphnia magna). مجله پژوهشهای جانوری (مجله زیست شناسی ایران). (3)26،  275-265. doi: 20.1001.1. 23832614.1392.26.3.5.0
4.    ریگی گونک، ش. و اکبری پ. 1400. اثر آرتمیا Artemia urmiana غنی شده با ریزجلبک کیتوسروس (Chaetoceros sp.) بر ترکیب اسیدهای چرب و وضعیت آنتی‌اکسیدانی میگوی پاسفید غربی (Litopenaeus vannamei)مجله علمی شیلات ایران. 30 (5):13-23. doi: 10.22092/isfj.2021.125318
5.    شیخی­نژاد، ع.، لباب­پور، ع. و معظمی، ن. 1394. افزایش تولید سیانو باکتری اسپیرولینا با کنترل هم زدن و ترکیب شیمیایی محیط کشت. مجله  پژوهشهای گیاهی (مجله زیست شناسی ایران). 28(2): 344-353.doi: 20.1001.1.23832592.1394.28.2.12.9
6.    فرهادیان، ا.، خرامان نیا، ر.، محبوبی صوفیانی، ن. و ابراهیمی، ع. 1394. میزان بلع پاروپای آب شیرین Eucyclops serrulatus با جلبکهای سبز Chlorella vulgaris و Scenedesmus quadricauda. مجله پژوهشهای جانوری (مجله زیست شناسی ایران)،(4) 28، 494 -481. doi: 20.1001.1.23832614. 1394.28.4.10.1
7.    مناف فر, ر., ابطحی, بهروز. و آق, ناصر. 1384. غنی سازی ناپلیوس آرتمیا ارومیانا با امولسیون اسیدهای چرب و بررسی متابلیسم HUFA  تحت انکوباسیون سردمجله منابع طبیعی ایران (منتشر نمی شود)، (2) 58.
8.    نجدگرامی، ا.، عسگری، ث.، زارع، ص. و مناف فر، ر.  2016. تاثیر مخمر غنی شده با نانو ذرات اکسید مس بر پارامترهای رشد، فعالیت آنزیمهای گوارشی و متابولیسم چربی در آرتمیا ارومیانا (Artemia urmiana) و آرتمیا فرانسیسکانا (Artemia franciscana).  مجله پژوهشهای جانوری (مجله زیست شناسی ایران)، (3) 29، 379-369.  doi: 20.1001.1.23832614.1395.29.3.12.8
 
9.     Assunção, M.F.G., Amaral, R., Martins, C.B., Ferreira, J.D., Ressurreição, S., Santos, S.D., Santos, L.M.A. 2017. Screening microalgae as potential sources of antioxidants. Journal of Applied Phycology, 29: 865-877. doi:10.1007/s10811-016-0980-7.
10.  Bahr, A. S., Isroni, W., Maulida, N. 2021. Hatching and harvesting techniques for Artemia cysts with different effects of salinity in the district of Situbondo, East Java. In IOP Conference Series: Earth and Environmental Science (Vol. 718, No. 1, p. 012037). IOP Publishing. doi:10.1088/1755-1315/718/1/012037.
11.  Copeman, L. A., Parrish, C. C., Brown, J. A., Harel. M. 2002. Effects of docosahexaenoic, eicosapentaenoic, and arachidonic acids on the early growth, survival, lipid composition and pigmentation of yellowtail flounder (Limanda ferruginea): a live food enrichment experiment. Aquaculture, 210(1-4), 285-304. doi:10.1016/S0044-8486(01)00849-3.
12.  Coutteau, P., Brendonck, L., Lavens, P., Sorgeloos. P. 1992. The use of manipulated baker's yeast as an algal substitute for the laboratory culture of Anostraca. Journal of Hydrobiologia, 234, 25–32. doi:10.1007/BF00010776.
13.  Fehér, M., Baranyai, E., Simon, E., Bársony, P., Szűcs, I., Posta, J.,  Stündl, L. 2013. The interactive effect of cobalt enrichment in Artemia on the survival and larval growth of barramundi, Lates calcarifer. Aquaculture, 414, 92-99. doi:10.1016/j.aquaculture.2013.07.031.
14.  Furuita, H., Takeuchi, T., Watanabe, T., Fujimoto, H., Sekiya, S., Imaizumi, K. 1996. Requirements of larval yellowtail for eicosapentaenoic acid, docosahexaenoic acid, and n-3 highly unsaturated fatty acid. Fisheries science, 62(3), 372-379. doi:10.2331/fishsci.62.372.
15.  Glencross, B.D., 2009. Exploring the nutritional demand for essential fatty acids by aquaculture species. Rev. Aquacult. 1, 71-124. doi:10.1111/j.1753- 5131.2009.01006.
16.  Gupta, M., Dwivedi, U. N., Khandelwal, S. 2011. CPhycocyanin: An effective protective agent against thymic atrophy by tributyltin. Toxicol Lett. 204(1). 2–11. doi:10.1016/j.toxlet.2011.03.029.
17.  Hanel, H., Broekman, D., De Graaf, S., Schnack, D., 2007. Partial replacement of fishmeal by lyophilized powder of the microalgae Spirulina platensisin pacific white shrimp diets. The Open Marine Biology Journal, 5:1- 10. doi:10.2174/1874450800701010001.
18.  Hawkyard, M., Stuart, K., Langdon, C., Drawbridge, M. 2016. The enrichment of rotifers (B rachionus plicatilis) and Artemia franciscana with taurine liposomes and their subsequent effects on the larval development of California yellowtail (Seriola lalandi). Aquaculture Nutrition, 22(4), 911-922. doi:10.1111/anu.12317.
19.  Hironobu, W., Kazuki, O., Asmi, Citra. M., Tassakka, A.R., Toshimitsu, K., Masahiro, S. 2006. Immunostimulant effects of dietary Spirulina platensis on carp, Cyprinus carpio. Aquaculture, 258, 157-163. doi:10.1016/j.aquaculture.2006.05.003.
20.  Høj, L., Bourne, D. G., Hall, M. R. 2009. Localization, abundance and community structure of bacteria associated with Artemia: Effects of nauplii enrichment and antimicrobial treatment. Aquaculture, 293(3-4), 278-285. doi:10.1016/j.aquaculture.2009.04.024.
21.  Hwang, C. Y., Jung, S., Hwang, Y. S., Cho, B. C. 2010. Lethal effects of pulsed high-voltage discharge on marine plankton and Escherichia coli. Water, Air, and Soil Pollution, 213(1), 161-169. doi:10.1007/s11270-010-0375-3.
22.  Isnansetyo, A., Kamei, Y. 2009. Bioactive substances produced by marine isolates of Pseudomonas. Journal of industrial microbiology and biotechnology,vol. 36(10),pp.1239- 1248. doi:10.1007/s10295-009-0611-2.
23.  Karimzadeh, K. 2022. Synthesis of spirulina loaded chitosan nanoparticles from prawn, Macrobrachium nipponense shell for extending the shelf life of pike-perch (Sander lucioperca) fillet during refrigerated storage. J. Sci. Food Agric., 103:92–107. doi:10.1002/jsfa.1211.
24.  Koiso, M., Yoshikawa, M., Kuwada, H., Hagiwara, A. 2009. Effect of maternal diet on survival and life history parameters of next generations in the rotifer Brachionus plicatilis sp. complex. Nippon Suisan Gakkaishi 75, 828–833. doi:10.2331/suisan.75.828.
25.  Laing, I., Verdugo, C. G. 1991. Nutritional value of spray-dried Tetraselmis suecica for juvenile bivalves. Aquaculture, 92, 207-218. doi:10.1016/0044-8486(91)90022-Y.
26.  Lavens, P., Sorgeloos, P. 1996. Manual on the production and use of live food for aquaculture (No. 361). Food and Agriculture Organization (FAO). URL : ftp://ftp.fao.org/.../w3732e00.pd.
27.  Lv, J., Liu, P., Wang, Y., Gao, B., Chen, P., Li, J. 2013. Transcriptome analysis of Portunus trituberculatus in response to salinity stress provides insights into the molecular basis of osmoregulation. PLoS One, 8(12), e82155. doi:10.1371/journal.pone.0082155.
28.  Millamena, O.M., Bom beo, Rf., Jumalon, Na. and Simpson, K.I. 1998. Effects of various diets onthe   nutritional value of Artemia sp. As food for the prawn Peneusmonodon. Marine Biology, 98: 211- 221. doi: org/10.1007/BF00391197.
29.  Nascimento Sassano,C. E., Gioielli, L. A., Converti, A., de Oliveira Moraes, I., Sato, S., de Carvalho,J. C. M. 2014. Urea increases fed‐batch growth and γ‐linolenic acid production of nutritionally valuable Arthrospira (Spirulina) platensis cyanobacterium. Engineering in Life Sciences, 14(5), 530-537. doi:10.1002/elsc. 201400020.
30.  New, M. B., 1998. New, M. B. 1999. Global aquaculture: current trends and challenges for the 21st century. World Aquaculture-Baton Rouge, 30, 8-13.
31.  Olsen, Y., Evjemo, J.O., Kjørsvik, E., Larssen, H., Li, K., Overrein, I., Rainuzzo, J. 2014. DHA content in dietary phospholipids affects DHA content in phospholipids of cod larvae and larval performance. Aquaculture 428, 203-214. doi:10.1016/j.aquaculture. 2014.03.002.
32.  Onofrejová,, L., vasickova, J.V., Klejdus, B., Stratil, P., Misurcova, L., Kracmar, S., Kopecky, J., Vacek, J. 2010. Bioactive phenols in algae: the application of pressurized-liquid and solid-phase extraction techniques. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 51, 464-470. doi:10.1016/j.jpba.2009.03.027
33.  Parrish, C. C., Whiticar, M.,  Puvanendran, V. 2007. Is ω6 docosapentaenoic acid an essential fatty acid during early ontogeny in marine fauna?. Limnology and Oceanography, 52(1), 476-479. doi:10.4319/lo.2007. 52.1.0476.
34.  Rainuzzo, J.R., Reitan, K.I., Olsen, Y. 1997. The significance of lipids at early stages of 715 marine fish: a review. Aquaculture 155, 103-115. doi:10.1016/s0044- 716 8486(97)00121-x.
35.  Robert, S.S., Singh SP., Zhou, X-R., Petrie, JR., Blackburn, SI., Mansour PM. 2005. Metabolic engineering of Arabidopsis to produce nutritionally important DHA in seed oil. Functional Plant Biology,vol. 32(6),pp. 473-479. doi:10.1071/FP05084.
36.  Sargent, J. R. 1995. Origins and functions of egg lipids: Nutritional implications. In N. Bromage, and R. Roberts (Eds.), Management and egg and larval quality (p. 1). Oxford: Blackwell Science. doi:10.2331/fishsci. 63.816.
37.  Sorgeloos, P., Min, H. 2001. use of Lipid emulsion for bio encapsulation of highly unsaturated fatty acids in the brine shrimp Artemia. Artemia Reference center, University of Gent.
38.  Teimouri, M., Yeganeh, S., Amirkolaie, A.K. 2016. The effects of Spirulina platensis meal on proximate composition, fatty acid profile and lipid peroxidation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) muscle. Aquaculture Nutrition 22 (3): 559–566. doi:10.1111/ anu.12281.
39.  Tocher, R. D. 2003. Metabolism and functions of lipids and fatty acids in Teleost fish. Reviews of Fisheries Science, 11, 107. doi:10.1080/713610925.
40.  Triantaphyllidis, G.V., Poulopoulou, K., Abatzopoulos, T.J., Pinto Perez, C.A., Sorgeloos, P. 1995. International Study on Artemia. XLIX. Salinity effects on survival, maturity, growth, biometrics, reproductive and lifespan characteristics of a bisexual and a parthenogenetic population of Artemia. Hydrobiologia 302: 215-227. doi:10.1007/BF00032111.
41.  Zarrouk, C., 1966. Contribution to the study of cyanobacteria, influence of various physical and chemical factors on growth and photosynthesis is Spirulina maxima. PhD thesis, University of Paris.
Volume 38, Issue 1
Spring 2025
Pages 47-62

  • Receive Date 07 January 2024
  • Revise Date 03 November 2024
  • Accept Date 02 December 2024